丁鵬,周長勝,戴孝森,陸斌,王崇謙,王偉民,王進(jìn)昆
20世紀(jì)90年代初,Reynolds和Richards等先后從成年鼠的紋狀體和海馬中分離出神經(jīng)干細(xì)胞(neural stem cells,NSCs)[1-2],打破了成體哺乳動(dòng)物神經(jīng)細(xì)胞不能再生的傳統(tǒng)觀念。NSC除在特定的胚胎發(fā)育期存在外,在成年哺乳動(dòng)物大腦中也分布廣泛,其中側(cè)腦室壁的腦室下區(qū)和海馬齒狀回的顆粒下區(qū)是NSCs分布的兩個(gè)主要區(qū)域[3]。研究表明,中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)生病理改變后,NSCs會(huì)特異性地向損傷部位遷移,并可替代缺失的細(xì)胞,從而恢復(fù)受損腦組織結(jié)構(gòu)和功能[4-8]。我們先前通過體外實(shí)驗(yàn)證實(shí),單核細(xì)胞趨化蛋白-1(monocyte chemoattractant protein-1,MCP-1)體外可趨化神經(jīng)干細(xì)胞遷移,其趨化遷移作用與濃度正相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)探討MCP-1在體對NSCs遷移的趨化作用。
健康雄性Sprague-Dawley大鼠36只,鼠齡4~5個(gè)月,體重(300±25)g,購于昆明醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。實(shí)驗(yàn)過程對動(dòng)物的處理符合2006年科技部《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)意見》的規(guī)定[9]。
兔抗大鼠nestin多克隆抗體、兔抗大鼠MCP-1多克隆抗體、兔SP Kit、DAB Kit、HE染色試劑盒購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;革蘭氏陰性菌胞壁脂多糖(LPS)購自SIGMA公司;大鼠腦立體定向儀購自中西遠(yuǎn)大科技有限公司。
參照文獻(xiàn)腦皮質(zhì)微量注射內(nèi)毒素建立腦損傷模型[10]。分為:①對照組:顱內(nèi)注射生理鹽水5μl;②實(shí)驗(yàn)組:顱內(nèi)注射脂多糖5μl(脂多糖5μg溶于生理鹽水5μl)。兩組均再分為3 d、5 d、7 d組,每組6只。實(shí)驗(yàn)過程死亡者,按相同數(shù)量補(bǔ)充。
按文獻(xiàn)方法于造模后3 d、5 d、7 d取材[10]。3%H2O2去離子水(無色液體)孵育8 min,PBS沖洗5次,每次3 min;滴加山羊血清工作液室溫孵育10 min,傾去;滴加1∶100一抗(兔抗大鼠nestin多克隆抗體、兔抗大鼠MCP-1多克隆抗體、兔SP Kit),4℃冰箱過夜,PBS沖洗5次,每次5 min;滴加生物素標(biāo)記二抗工作液,37℃孵育15 min。PBS沖洗5次,每次5 min;滴加辣根酶標(biāo)記鏈霉卵白素工作液,37℃孵育15 min,PBS沖洗5次,每次5 min;顯色劑顯色(DAB),自來水充分沖洗,蘇木素復(fù)染,常規(guī)脫水,透明,封片。
切片高倍鏡下采用圖像分析軟件ImagePro-Plus 6.0分析,記錄累積吸光度值(IA值)表示,免疫反應(yīng)產(chǎn)物的IA值減去背景的IA值,得到矯正IA值(CIA值)即免疫反應(yīng)產(chǎn)物的實(shí)際累積吸光度值。
MCP-1陽性產(chǎn)物為棕黃色點(diǎn)狀或顆粒狀沉積,主要分布細(xì)胞胞質(zhì)中。各時(shí)間點(diǎn)對照組MCP-1在皮質(zhì)、海馬、腦干部位均有少量表達(dá)。實(shí)驗(yàn)組造模后3 d時(shí),MCP-1除了在上述部位表達(dá)外,主要在損傷邊緣表達(dá);造模后5 d表達(dá)到峰值,范圍擴(kuò)大至損傷周圍;造模后7 d表達(dá)量和范圍較前減少(圖1)。
對照組各時(shí)間點(diǎn)MCP-1 CIA值無顯著性差異(P>0.05)。實(shí)驗(yàn)組MCP-1各時(shí)間點(diǎn)CIA值均顯著高于對照組(P<0.001)。見表1。
表1 各組MCP-1表達(dá)(CIA值)
圖1 各組MCP-1表達(dá)(免疫組化染色,200×)
nestin陽性產(chǎn)物為棕黃色點(diǎn)狀或顆粒狀沉積,主要在細(xì)胞內(nèi)。各時(shí)間點(diǎn)對照組大鼠nestin陽性細(xì)胞在海馬區(qū)表達(dá),量較少。實(shí)驗(yàn)組造模后3 d見中等量nestin陽性細(xì)胞在海馬區(qū)表達(dá);5 d海馬區(qū)大量表達(dá),并向損傷區(qū)遷移;7 d損傷區(qū)可見nestin陽性細(xì)胞(圖2)。
對照組各時(shí)間點(diǎn)nestin CIA值無顯著性差異(P>0.05)。實(shí)驗(yàn)組各時(shí)間點(diǎn)均顯著高于對照組(P<0.001)。見表2。
表2 各組nestin表達(dá)(CIA值)
圖2 實(shí)驗(yàn)組nestin表達(dá)(免疫組化染色)
在腦損傷、癲癇、神經(jīng)細(xì)胞變性等[4-8]時(shí),NSCs可被激活,發(fā)生增殖、遷移和分化,恢復(fù)神經(jīng)系統(tǒng)的正常結(jié)構(gòu)和功能。目前調(diào)控NSCs增殖和遷移的機(jī)制還不完全清楚,可能與以下因素有關(guān)[11-15]:細(xì)胞周圍環(huán)境、細(xì)胞代謝產(chǎn)物、細(xì)胞因子、黏附分子、激素和遞質(zhì)等。
有學(xué)者認(rèn)為以MCP-1為代表的趨化因子可能發(fā)揮著重要作用[16]。MCP-1屬于CC類趨化因子,由Yoshimura于1989年首次從神經(jīng)膠質(zhì)瘤系U-105MG分離純化得到[17],是一種具有多種生物學(xué)功能的趨化因子。它通過與表面受體CCR2結(jié)合,激活細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,引起與細(xì)胞遷移或激活相關(guān)的一系列細(xì)胞內(nèi)變化[18-19]。腦內(nèi)MCP-1主要在星形膠質(zhì)細(xì)胞、小膠質(zhì)細(xì)胞和神經(jīng)元表達(dá)。正常腦組織MCP-1維持在較低水平,當(dāng)受到損傷時(shí),表達(dá)水平上調(diào)。
Yamagami等的研究顯示,在小鼠局灶性腦缺血模型中,缺血區(qū)皮質(zhì)和基底節(jié)MCP-1表達(dá)上調(diào),腦室下區(qū)的NSCs向缺血區(qū)定向遷移[20]。Belmadani等的研究顯示,敲除小鼠MCP-1或CCR2基因后,NSCs向損傷區(qū)的遷移顯著減少[21]。本課題組先前證實(shí),MCP-1在體外可趨化神經(jīng)干細(xì)胞遷移,其趨化作用與濃度成正相關(guān),并發(fā)現(xiàn)NSCs表達(dá)趨化因子MCP-1的特異性受體CCR2[22]。以上研究提示,MCP-1-CCR2軸可能參與了神經(jīng)修復(fù)的過程。但是其在體內(nèi)促進(jìn)NSCs的增殖與遷移的機(jī)制尚不清楚。
本實(shí)驗(yàn)通過制備腦皮質(zhì)微量注射脂多糖腦損傷模型,應(yīng)用冰凍切片免疫組織化學(xué)染色法,動(dòng)態(tài)監(jiān)測MCP-1和nestin陽性細(xì)胞的時(shí)相變化。發(fā)現(xiàn)損傷后,MCP-1表達(dá)的量和范圍增加,5 d時(shí)達(dá)到高峰;同時(shí)觀察到海馬區(qū)nestin陽性細(xì)胞增殖,7 d時(shí)損傷區(qū)可見nestin陽性細(xì)胞。考慮可能是趨化因子MCP-1的升高趨化表達(dá)其特異性受體的NSCs向損傷區(qū)遷移,即在腦皮質(zhì)微量注射脂多糖腦損傷模型中,MCP-1有一過性增加,而升高的MCP-1對NSCs從海馬區(qū)向損傷區(qū)遷移可能具有正性誘導(dǎo)作用。
[1]Reynolds BA,Weiss S.Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system[J].Science,1992,255(5052):1707-1710.
[2]Richards LJ,Kilpatrick TJ,Bartlett PF.De novo generation of neuronal cells from the adult mouse brain[J].Proc Natl Acad Sci USA,1992,89(18):8591-8595.
[3]Temple S.The development of neural stem cells[J].Nature,2001,4140(6859):112-117.
[4]Yu TS,Zhang G,Liebl DJ,et al.Traumatic brain injury-induced hippocampal neurogenesis requires activation of early nestin-expressing progenitors[J].J Neurosci,2008,28(48):12901-12912.
[5]Mazurek GH,Reddy V,Marston BJ,et al.DNA fingerprinting by infrequent-restriction-site amplification[J].J Clin Microbiol,1996,34(10):2386-2390.
[6]Guo Y,Shi D,Li W,et al.Proliferation and neurogenesis of neural stem cells enhanced by cerebral microvascular endothelial cells[J].Microsurgery,2008,28(1):54-60.
[7]Jessberger S,Zhao C,Toni N,et al.Seizure-associated,aberrant neurogenesis in adult rats characterized with retrovirus-mediated cell labeling[J].J Neurosci,2007,27(35):9400-9407.
[8]Galvan V,Bredesen DE.Neurogenesis in the adult brain:implications for Alzheimer's disease[J].CNS Neurol Disord Drug Targets,2007,6(5):303-310.
[9]中華人民共和國科學(xué)技術(shù)部.關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)性意見[S].2006-09-30.
[10]戴孝森,丁鵬,董岳,等.基質(zhì)細(xì)胞衍生因子1及其受體CXCR4在內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞遷移中的作用[J].中國組織工程研究,2012,16(23):4237-4241.
[11]Nakatomi H,Kuriu T,Okabe S,et al.Regeneration of hippocampal pyramidal neurons after ischemic brain injury by recruitment of endogenous neural progenitors[J].Cell,2002,110(4):429-441.
[12]Leker RR,Soldner F,Velasco I,et al.Long-lasting regeneration after ischemia in the cerebral cortex[J].Stroke,2007,38(1):153-161.
[13]Hoglinger GU,Rizk P,Muriel MP,et al.Dopamine depletion impairs precursor cell proliferation in Parkinson disease[J].Nat Neurosci,2004,7(7):726-735.
[14]Lemkine GF,Rai A,Alfama G,et al.Adult neural stem cell cycling in vivo requires thyroid hormone and its alpha receptor[J].FASEB J,2005,19(7):863-865.
[15]Robin AM,Zhang ZG,Wang L,et al.Stromal cell-derived factor 1 alpha mediates neural progenitor cell motility after focal cerebral ischemia[J].J Cereb Blood Flow Metab,2006,26(1):125-134.
[16]Itoh T,Satou T,Ishida H,et al.The relationship between SDF-1 alpha/CXCR4 and neural stem cells appearing in damaged area after traumatic brain injury in rats[J].Neurol Res,2009,31(1):90-102.
[17]Yoshimura T,Robinson EA,Tanaka S,et al.Purification and amino acid analysis of two human glioma-derived monocyte chemoattractants[J].J Exp Med,1989,169(4):1449-1459.
[18]Gong JH,Clark-Lewis I.Antagonists of onocytechemoattractant protein-1 identified by modification of functionally critical NH2-terminal residues[J].J Exp Med,1995,181(2):631-640.
[19]Hemmerich S,Paavola C,Bloom A,et al.Identification of residues in the monocyte chemotactic protein-1 that contact the MCP-1 receptor,CCR2 [J].Biochemistry,1999,38(40):13013-13025.
[20]Yamagami S,Tamura M,Hayashi M,et al.Differential production of MCP-1 and cytokine induced neutrophil chemoattractant in the ischemic brain after transient focal ischemia in rats[J].J Leukoc Biol,1999,65(6):744-749.
[21]Belmadani A,Tran PB,Ren D,et al.Chemokines regulate the migration of neural progenitors to sites of neuroinflammation[J].J Neurosci,2006,26(12):3182-3191.
[22]董岳,康波,丁鵬,等.單核細(xì)胞趨化蛋白1與神經(jīng)干細(xì)胞的體外遷移[J].中國組織工程研究,2012,16(23):4279-4283.