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        發(fā)酵木糖產(chǎn)酒精菌株的篩選和馴化

        2013-08-10 09:59:14李力群陳英偉王德信姜海靜唐志濤
        吉林化工學院學報 2013年7期
        關鍵詞:木糖發(fā)酵液轉(zhuǎn)化率

        李力群,陳英偉,王德信,姜海靜,唐志濤

        (1.吉林化工學院環(huán)境與生物工程學院,吉林 吉林132022;2.吉林沱牌農(nóng)產(chǎn)品開發(fā)有限公司 技術部,吉林 吉林132000)

        生物資源是地球上最豐富的可再生資源.隨著礦產(chǎn)資源日漸枯竭,開發(fā)高效轉(zhuǎn)化可再生纖維素物質(zhì)的微生物技術,煉制生物燃料,具有極其重要的意義和廣闊的發(fā)展前景.我國農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中形成的各種秸稈,每年約有7億噸.在玉米秸稈等植物纖維水解液中木糖約占25% ~30%,木糖的充分利用是植物纖維資源生產(chǎn)酒精經(jīng)濟可行性的關鍵之一[1].將木糖轉(zhuǎn)化為酒精,在理論上可提高酒精產(chǎn)量25%[2],因此選育優(yōu)良的木糖發(fā)酵酒精菌種勢在必行.

        本文從土壤中篩選出了可發(fā)酵木糖為酒精的菌株M-12#,對其進行了初步研究,為后續(xù)研究奠定了基礎.

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 土樣

        分別采自吉林市九站經(jīng)濟技術開發(fā)區(qū)農(nóng)田和吉林化工學院校園.

        1.1.2 培養(yǎng)基

        YEPD液體培養(yǎng)基:酵母粉10 g/L,蛋白胨20 g/L,木糖 20 g/L,蒸餾水1 L,pH 為 5.0,120 ℃滅菌30 min.

        YEPD固體培養(yǎng)基:酵母粉10 g/L,蛋白胨20 g/L,木糖20 g/L,瓊脂粉20 g/L,蒸餾水1 L,pH為5.0,120℃滅菌30 min.

        發(fā)酵培養(yǎng)基:木糖20 g/L,酵母粉10 g/L,蛋白胨 15 g/L,(NH4)2SO41 g/L,KH2PO41 g/L,MgSO4·7H2O 0.5 g/L,CaCl2·2H2O 1 g/L,H2O 1 L,120℃滅菌30 min.

        1.1.3 主要儀器、試劑和測定方法

        主要儀器和設備 YP-600型精密電子天平,UV-2000型紫外可見光分光光度計,生化培養(yǎng)箱,高壓蒸汽滅菌鍋,SW-CJ-2F型生物超凈工作臺,HYG-A型回轉(zhuǎn)恒溫調(diào)速搖瓶柜,SA23031型數(shù)碼生物顯微分析系統(tǒng)等.

        主要試劑酵母浸粉,蛋白胨,木糖,瓊脂粉、酵母膏、磷酸二氫鉀、尿素、硫酸鎂等試劑.

        主要測定方法酒精含量測定采用重鉻酸鉀比色法[5].木糖含量測定采用直接滴定法.生物量的測定采用血球計數(shù)板計數(shù)法和比濁法,在比濁法中,將發(fā)酵液混合均勻后稀釋至一定倍數(shù),測定其吸光度OD600.

        2 實驗方法與實驗結(jié)果

        2.1 木糖發(fā)酵酒精菌株的篩選

        2.1.1 菌種初篩

        取10 g土樣加入到裝有90 mL帶有玻璃珠的無菌水三角瓶中,震蕩30 min,吸取5份10 mL懸濁液分別加入至90 mL YEPD液體培養(yǎng)基中放置搖床培養(yǎng)48 h,搖速140 r/min,溫度30℃.富集后的菌液依次稀釋至10-6、10-7、10-8濃度,每個稀釋度吸取1 mL菌液均勻涂布到Y(jié)EPD固體平板上,30℃培養(yǎng)48 h,對長出的菌落,進行復篩.

        2.1.2 菌種復篩

        TTC(2,3,5-氯化三苯基四氮唑)上層培養(yǎng)基:TTC 0.05 g,木糖0.5 g,瓊脂1.5 g,H2O 100 mL.

        TTC下層培養(yǎng)基:木糖10.1 g,蛋白胨2 g,酵母膏1.5 g,KH2PO41 g,MgSO4·7H2O 0.4 g,檸檬酸 0.27 g,瓊脂 20 g,H2O 1 L[3].

        將純化的菌株接入到TTC下層培養(yǎng)基平板,30℃倒置培養(yǎng)兩天,在長出的菌落上倒入TTC上層培養(yǎng)基覆蓋,于30℃下避光保存3 h,根據(jù)不同的菌落顏色等差異進行篩選[4].

        將篩選出來的菌株接入裝有100 mL發(fā)酵培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中,在30℃、120 r/min條件下進行發(fā)酵,48 h后挑出酒精濃度高的搖瓶,將菌液稀釋到相應的濃度,重復TTC法篩選,經(jīng)過不斷的發(fā)酵馴化和篩選,選育出酒精產(chǎn)量高的菌落.

        2.2 菌種鑒定

        經(jīng)過復篩得到的菌株形態(tài)學特征:菌落質(zhì)地均勻,正反面和邊緣、中央部位的顏色均一,乳白色,表面光滑,容易挑起,不透明.液體培養(yǎng)形成菌膜和沉淀,細胞形態(tài)為卵圓柱形,主要以出芽方式繁殖,形成假菌絲,初步鑒定為霉菌,見圖1~2.

        圖1 菌株形態(tài)

        圖2 菌落形態(tài)

        2.3 生長曲線的測定

        將菌株接入不同濃度木糖的發(fā)酵培養(yǎng)基中,在28℃,120 r/min條件下培養(yǎng).利用血球計數(shù)板法和濁度法測定霉菌濃度.使用UV-2000型紫外可見光分光光度計,以滅菌的培養(yǎng)基為空白,比色皿厚度為5 mm,測定樣品的OD600值 (注:空白與樣品的稀釋倍數(shù)一致).菌株的生長曲線測定結(jié)果見圖3.

        圖3 菌株在不同木糖濃度培養(yǎng)基中的生長曲線

        圖3中的曲線表明,木糖濃度變化對霉菌的生長速度有明顯的影響.

        2.4 木糖發(fā)酵菌株的馴化

        將菌株接種到木糖濃度30 g/L的100 mL發(fā)酵培養(yǎng)基中,在培養(yǎng)溫度28℃,搖床轉(zhuǎn)速為120 r/min條件下培養(yǎng)96 h.將TTC法篩選出發(fā)酵性能較高的菌株,再次接入木糖質(zhì)量濃度為30 g/L的液體培養(yǎng)基中,同樣條件下連續(xù)培養(yǎng)96 h.經(jīng)過不斷的發(fā)酵馴化和TTC方法篩選過程,不斷提高菌株的木糖發(fā)酵酒精能力和發(fā)酵效率.

        2.5 木糖發(fā)酵酒精性能實驗

        發(fā)酵培養(yǎng)基木糖濃度分別為20 g/L、30 g/L、40 g/L、50 g/L、60 g/L、70 g/L、80 g/L.250 mL 三角瓶中裝量為100 mL.接種量為2 mL,pH 5.5,28℃,120 r/min搖床培養(yǎng),每隔24 h測一次酒精度和殘?zhí)橇?測實結(jié)果如圖4~5所示.

        圖4 菌株木糖發(fā)酵酒精性能曲線

        圖5 菌株木糖發(fā)酵酒精時殘?zhí)橇孔兓€

        圖5曲線趨勢表明,當發(fā)酵液中的木糖濃度不高于3%時,殘?zhí)橇枯^少,當木糖濃度高于3%時,殘?zhí)橇颗c木糖濃度成正比.

        其中木糖濃度30 g/L實驗產(chǎn)酒精最多,其主要數(shù)據(jù)列于表1.

        表1 木糖30 g/L時菌株酒精發(fā)酵實驗數(shù)據(jù)

        表1數(shù)據(jù)表明,當發(fā)酵至120 h時,酒精度達到峰值,為0.147%(v/v),木糖轉(zhuǎn)化率為0.045 g/g,為理論轉(zhuǎn)化率的9.85%.

        2.6 主要影響因素的探索實驗

        2.6.1 實驗設計

        分別以木糖濃度、發(fā)酵溫度和發(fā)酵液pH值初值為影響因子,設計三因素三水平的正交實驗,探索影響酒精發(fā)酵的主要因素之間的關系,因素和水平的設計見表2.

        表2 因素水平設計表

        2.6.2 實驗數(shù)據(jù)

        按實驗的設計要求,每個實驗有五個平行發(fā)酵培養(yǎng)基瓶,115℃下滅菌30 min.然后接入菌種進行發(fā)酵實驗,測定不同時間的殘?zhí)橇亢途凭龋瑢嶒灲Y(jié)果見圖6.

        圖6 菌株木糖發(fā)酵酒精正交實驗曲線

        2.6.3 正交實驗數(shù)據(jù)處理

        采用直觀分析法處理對圖5中的酒精發(fā)酵正交實驗數(shù)據(jù)進行極差分析,得到各因素的極差值:RA=1.908 7,RB=0.284 7,RC=0.078 5.通過比較極差數(shù)值的大小可知,最終影響霉菌木糖發(fā)酵酒精因素的強弱順序為:

        A(木糖濃度)>B(發(fā)酵溫度)>C(發(fā)酵液pH初值).各因素的R值差異表明:木糖濃度對實驗結(jié)果的影響最大,木糖濃度過高時有將產(chǎn)生嚴重的底物抑制;發(fā)酵溫度的影響次之,而發(fā)酵液pH初值對實驗結(jié)果的影響相對最小.

        2.7 選育后的菌株發(fā)酵性能實驗

        采用L9(34)正交實驗優(yōu)化菌株的木糖發(fā)酵酒精工藝條件,因素和水平設計列于表3.

        表3 因素和水平設計表

        發(fā)酵溫度:28℃;發(fā)酵時間:66 h;搖床速度:145 r/min;木糖3%,酵母膏0.1%,磷酸二氫鉀0.05%,無水氯化鈣0.025%,實驗結(jié)果列于表4.

        表4中實驗4的發(fā)酵酒份最高,達到0.48%(v/v),殘?zhí)?1.8%,搖瓶裝量:90 mL/250 mL.木糖轉(zhuǎn)化率為 0.316 g/g,達到理論轉(zhuǎn)化率的68.6%.

        表4 馴化后菌株發(fā)酵工藝優(yōu)化正交實驗

        3 結(jié) 論

        本工作從土壤是篩選得到了一株霉菌M-12#,其主要性能如下:

        (1)該霉菌的菌落呈白色,邊緣有缺刻,隆起,表面絲狀向外散射,在顯微鏡下的菌株呈短粗桿狀或棒狀,兩端比較圓滑.

        (2)在馴化之前,當木糖濃度為30 g/L,發(fā)酵120 h,發(fā)酵酒精度達到峰值,為0.147%(v/v),木糖轉(zhuǎn)化率為0.045 g/g,為理論轉(zhuǎn)化率的9.85%.

        (3)經(jīng)過二個月地不斷馴化,篩選出來的菌株在木糖濃度為30 g/L的發(fā)酵液中,發(fā)酵66 h,酒精濃度提高了226%,達到0.48%(v/v),轉(zhuǎn)化率為0.316 g/g,為理論轉(zhuǎn)化率的68.6%.

        [1]Rodney JB,NancyN,Brace SD.Fermentations with new recombinant organisms [J].Biotechnol.Prog,1999(15):867-875.

        [2]曹秀華,阮奇城,林海紅,等.纖維燃料酒精生產(chǎn)中木糖發(fā)酵的研究進展,中國麻業(yè)科學[J].2010,32(3):166-169.

        [3]祖若夫,胡寶龍,周德慶.微生物學實驗教程[M].上海:復旦大學出版社,1993.

        [4]王梅,張澎湃,帥桂蘭.TTC在黃酒酵母選育中的應用[J].釀酒,2001(5):62-64.

        [5]林仁權,胡文蘭,陳國亮.重鉻酸鉀氧化分光光度法測定酒中酒精含量[J].浙江預防醫(yī)學,2006,18(3):78-79.

        [6]杜連祥.工業(yè)微生物學試驗技術[M].天津:天津科學技術出版社.1992,10.

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