董 楠,王 強(qiáng),雷丹丹,劉 宏,劉 嘉,趙國(guó)華,4,*
(1.西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,重慶 400715;2.重慶第二師范學(xué)院生物與化學(xué)工程系,重慶 400067;3.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)信息研究所,北京 100081; 4.重慶市特色食品工程技術(shù)研究中心,重慶 400715)
胭脂蘿卜紅色素是以胭脂蘿卜肉質(zhì)根為原料提取的一種天然食用色素,屬于類黃酮系,主要由花色素苷構(gòu)成[1]。隨著近年來(lái)天然食用色素的開(kāi)發(fā)利用,胭脂蘿卜紅色素以其安全、無(wú)毒、資源豐富的優(yōu)點(diǎn)逐漸為人們所關(guān)注。同時(shí),作為花色苷類色素又具有一定營(yíng)養(yǎng)和生理功能如抗氧化、抗輻射、抗腫瘤、預(yù)防糖尿病等,是國(guó)家添加劑標(biāo)準(zhǔn)委員會(huì)允許使用的天然色素之一[2]。因此,加強(qiáng)胭脂蘿卜紅色素的研究和利用對(duì)促進(jìn)食品行業(yè)的發(fā)展有深遠(yuǎn)的意義。天然花色苷類色素的穩(wěn)定性較差,容易受到諸多因素的影響。例如:溫度、pH值、壓強(qiáng)、光照等,其中受溫度的影響最為顯著[3-4],食品工業(yè)中常用的殺菌方法(如巴氏殺菌等)所引起的溫度變化均會(huì)影響花色苷類色素穩(wěn)定性,從而影響食品感官特性[5-6]。同時(shí),溶液中的VC質(zhì)量濃度對(duì)花色苷穩(wěn)定性也有一定的影響[7]。本實(shí)驗(yàn)對(duì)胭脂蘿卜紅色素在不同溫度、不同VC質(zhì)量濃度的色素溶液中的降解動(dòng)力學(xué)進(jìn)行研究,以期為胭脂蘿卜紅色素的在食品行業(yè)中的開(kāi)發(fā)利用提供參考。
胭脂蘿卜紅色素、花青素E163,由重慶市武隆仙女天然色素有限責(zé)任公司提供。
抗壞血酸(優(yōu)級(jí)純) 天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所;蔗糖、檸檬酸、山梨酸鉀、苯甲酸鈉等均為國(guó)產(chǎn)分析純。
UV-2450紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 日本島津公司;722紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 上?,F(xiàn)科儀器有限公司;HWS-24電熱恒溫水浴鍋 上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;PB-10酸度計(jì) 德國(guó)Sartorius公司。
1.3.1 色素的最大吸收波長(zhǎng)的測(cè)定
配制質(zhì)量濃度為0.01g/100mL的色素溶液,用pH 3.0的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液定容,紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)在波長(zhǎng)400~700nm范圍內(nèi)掃描圖譜,確定該色素的最大吸收波長(zhǎng)λmax。
1.3.2 緩沖溶液中的熱降解動(dòng)力學(xué)[8]
1.3.2.1 緩沖溶液中貯藏過(guò)程的熱降解動(dòng)力學(xué)
配制質(zhì)量濃度為0.01g/100mL的色素溶液,用pH 3.0的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液定容,于85℃處理5min,然后取適量于具塞塑料管(無(wú)頂隙空間)在4、25℃條件下避光放置1、2、3、4、6、8、12、16、20、28d,然后,取樣測(cè)定其λmax并計(jì)算花色苷保留量、降解的速率常數(shù)、半衰期和活化能。
1.3.2.2 緩沖溶液中熱處理過(guò)程的熱降解動(dòng)力學(xué)
配制質(zhì)量濃度為0.01g/100mL的色素溶液,裝入具塞試管中,分別在75、80、85、90、95℃條件下恒溫水浴連續(xù)加熱6.5h,在10、20、30、40、50min和1、1.5、2、2.5、3、4、5、6.5h時(shí)分別取出一個(gè)樣品在冰水中迅速冷卻后測(cè)定其λmax并計(jì)算色素降解的速率常數(shù)、半衰期和活化能。
1.3.3 軟飲料模型中的熱降解動(dòng)力學(xué)研究[9]
1.3.3.1 無(wú)CO2型軟飲料的配制
1000g色素溶液中含蔗糖86g、苯甲酸鈉0.14g、山梨酸鉀0.18g、檸檬酸1.52g,色素質(zhì)量濃度0.01g/100mL,VC添加量分別為0、0.04、0.12、0.36g,pH值調(diào)至3.0。
1.3.3.2 軟飲料模型中貯藏過(guò)程的熱降解動(dòng)力學(xué)
將上述不同VC添加量的無(wú)CO2型軟飲料于85℃處理5min,然后取適量于具塞塑料管(無(wú)頂隙空間)4、25℃條件下避光放置1、2、3、4、6、8、12、16、20、28d時(shí)取出樣品測(cè)定其λmax并計(jì)算色素降解的速率常數(shù)、半衰期和活化能。
1.3.3.3 軟飲料模型中熱處理過(guò)程中熱降解動(dòng)力學(xué)
將上述不同VC添加量的無(wú)CO2型軟飲料分別在75、80、85、90、95℃條件下恒溫水浴連續(xù)加熱6.5h,在10、20、30、40、50min和1、1.5、2、2.5、3、4、5、6.5h時(shí)分別取出一個(gè)樣品在冰水中迅速冷卻后測(cè)定其λmax并計(jì)算色素降解的速率常數(shù)、半衰期和活化能。
1.3.4 花色苷降解速率常數(shù)、半衰期和活化能的計(jì)算
1.3.4.1 零級(jí)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)參數(shù)的計(jì)算[10]
零級(jí)動(dòng)力學(xué)的降解速率可由下式表示:
式中:ρ是降解后花色苷含量/(g/100mL);ρ0是初始時(shí)刻花色苷含量/(g/100mL);ρt是一定溫度下加熱t(yī)min或貯藏td后花色苷含量/(g/100mL);t1/2是花色苷降解的半衰期;k是降解動(dòng)力學(xué)反應(yīng)速率常數(shù)。
1.3.4.2 一級(jí)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)參數(shù)的計(jì)算[11-12]
按公式(4)、(5)計(jì)算一級(jí)反應(yīng)速率常數(shù)(k)、半衰期(t1/2)。
式中:ρ0是初始時(shí)刻花色苷含量/(g/100mL);ρt是一定溫度下加熱t(yī)min或貯藏td后花色苷含量/(g/100mL);ρ0和ρt可用A0和A代替,A0為初始時(shí)刻花色苷樣品液在最大吸收波長(zhǎng)處的吸光度;A是一定溫度下加熱t(yī)min后花色苷樣品液在最大吸收波長(zhǎng)處的吸光度?;ㄉ諉误w實(shí)驗(yàn)中,A0和A分別為初始時(shí)刻和加熱t(yī)min后各花色苷在λmax檢測(cè)波長(zhǎng)下的色譜峰面積。
反應(yīng)活化能(Ea)按式(6)計(jì)算:
式中:k為熱降解速率常數(shù);R為氣體常數(shù),為8.314×10-3kJ/(mol·K);k0為頻率常數(shù);T為絕對(duì)溫度/K。
當(dāng)Arrhenius方程(式(6))兩邊同時(shí)取對(duì)數(shù)時(shí),得lnk=lnk0-Ea/RT,由式(5)可得不同溫度下的熱降解反應(yīng)常數(shù)k,根據(jù)不同溫度下的k值,以lnk對(duì)1/T作線性回歸,直線的斜率為-Ea/R,截距為lnk0,由直線的斜率即可求出活化能Ea。
1.3.4.3 色素保留量的計(jì)算[13]
式中:A為一定條件處理后的吸光度;A0為初始吸光度。
2.1.1 pH3.0檸檬酸緩沖液中胭脂蘿卜紅色素的熱降解動(dòng)力學(xué)
圖 1 0.1mol/L、pH3.0檸檬酸緩沖液中胭脂蘿卜紅色素的熱降解Fig.1 Degradation for raddish red pigment in citric acid-sodium buffer at different heating temperatures
由圖1可知,不同加熱溫度條件下,-ln(ρ/ρ0)與時(shí)間呈良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)均大于0.99,說(shuō)明胭脂蘿卜紅色素?zé)峤到夥弦患?jí)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)規(guī)律,降解速率隨溫度升高而增大,降解的動(dòng)力學(xué)參數(shù)計(jì)算結(jié)果見(jiàn)表1?;ㄉ盏亩交讲⑦拎?yáng)離子(AH+)的失電子過(guò)程AH+→A是放熱反應(yīng),水解反應(yīng)AH+→B(甲醇假堿)和開(kāi)環(huán)反應(yīng)B→C(查爾酮)是吸熱反應(yīng)并且伴隨著熵的增大。因此,溫度升高時(shí),平衡向著無(wú)色的甲醇假堿和查爾酮形式轉(zhuǎn)化,并顯著影響花色苷的熱降解速率[14-15]。有學(xué)者研究了熱處理溫度變化對(duì)藍(lán)莓花色苷熱降解速率的影響,結(jié)果顯示,70~90℃范圍內(nèi),隨著溫度升高,藍(lán)莓花色苷降解反應(yīng)速率常數(shù)增大[16]。以lnk對(duì)1/T作線性回歸,檸檬酸緩沖液中胭脂蘿卜紅色素?zé)崽幚磉^(guò)程中的活化能線性回歸方程為:Y=13053.0X-28.1(R2=0.9643)。
表 1 檸檬酸緩沖液中胭脂蘿卜紅色素?zé)崽幚磉^(guò)程中的熱降解參數(shù)Table 1 Kinetic parameters for raddish red pigment in citric acidsodium buffer (0.1 mol/L, pH 3.0) at different heating temperatures
2.1.2 不同VC添加量的軟飲料模型中胭脂蘿卜紅色素的熱降解動(dòng)力學(xué)
圖 2 不同VC添加量飲料中胭脂蘿卜紅色素的熱降解Fig.2 Degradation for raddish red pigment in soft drink with various vitamin C concentrations at different heating temperatures
表 2 不同VC添加量下軟飲料中胭脂蘿卜紅色素的熱降解參數(shù)Table 2 Kinetic parameters for raddish red pigment in soft drink with various vitamin C concentrations at different heating temperatures
由圖1、2可知,不同加熱溫度條件下,胭脂蘿卜紅色素在緩沖溶液中-ln(ρ/ρ0)與時(shí)間所得直線斜率明顯小于飲料中-ln(ρ/ρ0)與時(shí)間所得直線斜率,即緩沖溶液中色素降解速率小于飲料中色素降解速率,可能是由于飲料中的VC、蔗糖等添加對(duì)其穩(wěn)定性有較大影響;由圖2可知,不同VC添加量對(duì)胭脂蘿卜紅色素的降解速率有一定影響,但胭脂蘿卜紅色素在軟飲料模型中的熱降解均符合一級(jí)動(dòng)力學(xué),隨溫度升高,胭脂蘿卜紅色素?zé)峤到馑俾试龃?。各溫度下-ln(ρ/ρ0)與時(shí)間的線性關(guān)系擬合相關(guān)系數(shù)均大于0.95,結(jié)果見(jiàn)表2。有研究表明,VC對(duì)花色苷穩(wěn)定性的影響與VC的質(zhì)量濃度有關(guān),熱處理?xiàng)l件下,低質(zhì)量濃度的VC能提高花色苷的穩(wěn)定性,高質(zhì)量濃度VC則能夠加速花色苷降解[17-18]。研究證明,70~90℃范圍內(nèi),添加360mg/L的抗壞血酸能顯著促進(jìn)血橙花色苷熱降解[7]。80℃條件下,添加100mg/L的抗壞血酸使紫薯花色苷的活化能減小,熱穩(wěn)定性顯著下降[19]。以lnk對(duì)1/T作線性回歸,不同VC質(zhì)量濃度下軟飲料中胭脂蘿卜紅色素的活化能線性回歸方程為:0mg/L時(shí)Y=5281.4X-5.4(R2=0.9931);40mg/L時(shí)Y=4434.6X-3.6 (R2=0.9816);120mg/L時(shí)Y=7164.9X-12.7(R2=0.9862);360mg/L時(shí)Y=3828.2X-7.9(R2=0.9765)。
由表2可知,當(dāng)VC添加量為40mg/L和360mg/L時(shí),色素?zé)峤到獾幕罨茌^小,穩(wěn)定性最差;120mg/L時(shí),胭脂蘿卜紅色素?zé)峤到獾幕罨茏畲?,半衰期最長(zhǎng),即穩(wěn)定性為最好。這說(shuō)明,添加適量的VC,對(duì)提高色素穩(wěn)定性有一定的作用,VC添加超過(guò)一定質(zhì)量濃度范圍,則會(huì)加速的色素的降解。
圖3 4℃和25℃條件下檸檬酸緩沖溶液(0.1mol/L, pH3.0)中胭脂蘿卜紅色素的保留量Fig.3 Residual amounts of raddish red pigment in citric acid-sodium buffer during storage at 4 ℃ and 25 ℃
由圖3可知,0.1mol/L、pH3.0檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖溶液中4、25℃貯藏條件下,胭脂蘿卜紅色素穩(wěn)定性較好,4周之內(nèi)仍能保持穩(wěn)定。4℃條件下,胭脂蘿卜紅色素?zé)峤到夥狭慵?jí)動(dòng)力學(xué),其降解速率只與降解時(shí)間有關(guān),與物質(zhì)質(zhì)量濃度無(wú)關(guān)。由表3可知,以不加VC的軟飲料為例做對(duì)比,4℃條件下色素的半衰期為66.0d,25℃條件下色素半衰期為15d,25℃常溫貯藏的降解半衰期明顯小于4℃低溫貯藏的降解半衰期。因此,該色素溶液在低溫下保藏,其穩(wěn)定性更好。
圖 4 25℃條件下飲料中胭脂蘿卜紅色素的降解Fig.4 Degradation for raddish red pigment in soft drink during storage at 25 ℃
由圖4可知,25℃條件下,胭脂蘿卜紅色素?zé)峤到夥弦患?jí)動(dòng)力學(xué)。由表3可知,其降解速率及半衰期如VC添加量為120mg/L時(shí),半衰期最長(zhǎng),說(shuō)明適量的VC添加,有利于胭脂蘿卜紅色素在25℃貯藏的穩(wěn)定性。
表 3 不同VC添加量胭脂蘿卜色素在貯藏過(guò)程中的降解參數(shù)Table 3 Kinetic parameters for raddish red pigment in soft drink with various vitamin C concentrations
本實(shí)驗(yàn)對(duì)胭脂蘿卜紅色素加在緩沖溶液和軟飲料中的降解進(jìn)行了研究。在熱處理?xiàng)l件下(75~95℃),其在不同溶液體系的降解均符合一級(jí)反應(yīng)動(dòng)力學(xué)模型,熱處理?xiàng)l件下色素降解速率隨溫度升高而增大。當(dāng)VC添加量為120mg/L時(shí),溶液中色素降解速率最小,其活化能為59.57kJ/mol。色素溶液在4℃低溫條件下貯藏,其降解動(dòng)力學(xué)符合零級(jí)動(dòng)力學(xué),穩(wěn)定性良好,VC質(zhì)量濃度不對(duì)其穩(wěn)定性產(chǎn)生影響;25℃條件下貯藏,其降解動(dòng)力學(xué)符合一級(jí)動(dòng)力學(xué),且VC添加量對(duì)其穩(wěn)定性的影響作用與高溫處理情況下結(jié)果一致,即添加量為120mg/L時(shí)降解速率最小,色素穩(wěn)定性最好,360mg/L時(shí)降解速率最大。因此,在工業(yè)運(yùn)用中該色素適合低溫貯藏,如在25℃常溫條件下貯藏及75℃以上熱處理時(shí),添加適量VC能有效降低色素降解速率提高穩(wěn)定性。
[1] 王曉梅, 徐為民, 鄭永華. 紅心蘿卜花色苷穩(wěn)定性的研究[J]. 食品科學(xué), 2008, 29(7): 98-100.
[2] 凌關(guān)庭. 食品添加劑手冊(cè)[M]. 3版. 北京: 化學(xué)工業(yè)出版社, 2008: 955-1012.
[3] VERBEYST L, OEY I, VANDER I, et al. Kinetic study on the thermal and pressure degradation of anthocyanins in straw berries[J]. Food Chemistry, 2010, 123(2): 269-274.
[4] BUCKOW R, KASTELL A, TEREFE N S, et al. Pressure and temperature effects on degradation kinetics and storage stability of total anthocyanins in blueberry juice[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2010, 58(18): 10076-10084.
[5] HARBOURNE N, JACQUIER J C, MORGAN D J, et al. Determination of the degradation kinetics of anthocyanins in a model juice system using isothermal and non-isothermal methods[J]. Food Chemistry, 2008, 111(1): 204-208.
[6] PATRAS A, BRUNTONA N P, O’DONNELL C, et al. Effect of thermal processing on anthocyanin stability in foods: mechanisms and kinetics of degradation[J]. Trends in Food Science and Technology, 2010, 21(1): 3-11.
[7] CAO Shaoqian, LIU Liang, LU Qi, et al. Integrated effects of ascorbic acid, flavonoids and sugars on thermal degradation of anthocyanins in blood orange juice[J]. European Food Research Technology, 2009, 228(6): 975-983.
[8] WROLSTAD R E, GIUSTI M M, RODRIGUEZ-SAONA L E, et al. Anthocyanins from radishes and red-fleshed potatoes[M]// AMES J, MHOFMANN T F. Chemistry and physiology of selected food colorants. Washington, DC: American Chemical Society, 2001: 66-89.
[9] DYRBY M, WESTERGAARD N, STAPELFELDT H. Light and heat sensitivity of red cabbage extract in soft drink model systems[J]. Food Chemistry, 2001, 72(4): 431-437.
[10] WANG Weidong, XU Shiying. Degradation kinetics of anthocyanins in blackberry juice and concentrate[J]. Journal of Food Engineering, 2007, 82(3): 271-275.
[11] KIRA A, CEMEROGLU B. Degradation kinetics of anthocyanins in blood orange juice and concentrate[J]. Food Chemistry, 2003, 81(4): 583-587.
[12] VERBEYST L, OEY I, VANDER P I, et al. Kinetic study on the thermal and pressure degradation of anthocyanins in strawberries[J]. Food Chemistry, 2010, 123(2): 269-274.
[13] 董楠, 宋會(huì)歌, 趙國(guó)華, 等. 咖啡酸對(duì)胭脂蘿卜紅色素輔色作用及穩(wěn)定性的影響[J]. 食品科學(xué), 2011, 32(7): 61-64.
[14] ANTELO F S, COSTA A V, KALIL S J. Thermal degradation kinetics of the phycocyanin from Spirulina platensis[J]. Biochemical Engineering Journal, 2008, 41(1): 43-47.
[15] TIWARI B K, O’DONNELL C P, CULLEN P J. Effect of non-thermal processing technologies on the anthocyanin content of fruit juices[J]. Trends in Food Science and Technology, 2009, 20(3/4): 137-145.
[16] BUCKOW R, KASTELL A, TERE N S, et al. Pressure and temperature effects on degradation kinetics and storage stability of total anthocyanins in blueberry juice[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2010, 58(18): 10076-10084.
[17] OZKAN M. Degradation of anthocyanins in sour cherry and pomegranate juices by hydrogen peroxide in the presence of added as corbic acid[J]. Food Chemistry, 2002, 78(4): 499-504.
[18] ROSSO V V D, MERCADANTE A Z. The high ascorbic acid content is the main cause of the low stability of anthocyanin extracts from acerola[J]. Food Chemistry, 2007, 103(3): 935-943.
[19] REYES L F, CISNEROS-ZEVALLOS L. Degradation kinetics and colour of anthocyanins in aqueous extracts of purple-and red-flesh potatoes (Solanum tuberosum L.)[J]. Food Chemistry, 2007, 100(3): 885-894.