甕杰慧,方艷偉,邱文娜,張麗元,焦保華
酪氨酸蛋白激酶受體(receptor tyrosine kinases,RTKs)家族成員中的促紅細(xì)胞生成素肝細(xì)胞(Eph)受體及其配體ephrin在胚胎發(fā)育尤其是中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育中的作用是目前的熱點(diǎn)研究之一。近年來,學(xué)者們對EphA2和ephrinA1誘導(dǎo)惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程產(chǎn)生了極大的興趣。早在1990年,篩選上皮細(xì)胞cDNA文庫時EphA2首次被發(fā)現(xiàn),同年,ephrinA1作為一種新型腫瘤壞死因子-α被發(fā)現(xiàn),可誘導(dǎo)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞基因產(chǎn)物產(chǎn)生,但后來才發(fā)現(xiàn)ephrinA1是EphA2的一個配體。此后又發(fā)現(xiàn)EphA2和ephrinA1在惡性腫瘤的發(fā)病機(jī)制中經(jīng)常同時出現(xiàn)共同發(fā)揮作用,具體機(jī)制至今還未完全闡明。現(xiàn)就EphA2和ephrinA1在惡性腫瘤中的表達(dá)、功能及信號轉(zhuǎn)導(dǎo),及其在不同惡性腫瘤發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中的多效性做一綜述,EphA2、ephrinA1系統(tǒng)有望成為惡性腫瘤診斷和特異靶向治療的新靶點(diǎn)。
1.1EphA2在腫瘤中的表達(dá)EphA2受體是一種相對分子質(zhì)量為130 000、由976個氨基酸組成的跨膜糖蛋白,在人類多種實(shí)體腫瘤中過表達(dá),如:乳腺癌[1]、卵巢癌[2]、前列腺癌[3]、胰腺癌[4]、腦膠質(zhì)瘤[5-8]、腎細(xì)胞癌[9]、肺癌[10]、黑色素瘤[11]、胃癌[12]、喉癌[13]、結(jié)腸直腸癌[14]、子宮內(nèi)膜癌[15-16]等。有研究證實(shí),在已確立的細(xì)胞株和人類腫瘤組織中無論是mRNA水平還是蛋白水平,EphA2均呈過表達(dá)。EphA2的表達(dá)位于染色體1p36,局限在能夠高度分辨上皮細(xì)胞的正常組織中,如:皮膚、肺和小腸,但迄今為止,關(guān)于EphA2蛋白在正常組織中的表達(dá)還沒有系統(tǒng)分析。免疫組化實(shí)驗(yàn)顯示EphA2在61%的多形膠質(zhì)母細(xì)胞瘤(multiforme glioblastoma,GBM)[5]、76%的卵巢癌中、85%的前列腺癌中呈強(qiáng)陽性表達(dá),EphA2是一種膜定位受體,易與配體結(jié)合。而且,EphA2的表達(dá)與患者的不良預(yù)后、轉(zhuǎn)移和低生存率密切相關(guān)?;贓phA2的表達(dá)模式、定位特性及功能重要性等特點(diǎn),EphA2很可能是一種非常有價值的抗惡性腫瘤治療的新靶點(diǎn)。
1.2ephrinA1在腫瘤中的表達(dá)ephrinA1由205個氨基酸組成,是腫瘤壞死因子-α早期介導(dǎo)的基因產(chǎn)物,位于染色體1q21~q22,相對分子質(zhì)量約為22 000。ephrinA1的表達(dá)方式與EphA2不同,ephrinA1在GBM和乳腺癌細(xì)胞中低表達(dá)時,而EphA2則過表達(dá)[7,17];相反,GBM、乳腺癌細(xì)胞高表達(dá)ephrinA1時,EphA2則呈低表達(dá),這種差異性表達(dá)可通過小RNA敲低ephrinA1的表達(dá)來實(shí)現(xiàn)逆轉(zhuǎn)。而且,GBM EphA2表達(dá)細(xì)胞產(chǎn)生的異位ephrinA1導(dǎo)致EphA2的表達(dá)極大下調(diào)[17]。
1.3EphA2在腫瘤中過表達(dá)可能的機(jī)制調(diào)控EphA2過表達(dá)和EphA2功能的確切機(jī)制尚未完全闡明,但已證明EphA2是絲裂原激活蛋白激酶通路的直接轉(zhuǎn)錄靶子,EphA2在Ras轉(zhuǎn)化細(xì)胞和Ras過表達(dá)轉(zhuǎn)基因鼠中均呈過表達(dá)。但是通過同樣的通路,腫瘤細(xì)胞中,ephrinA1的表達(dá)卻被抑制,在同樣的細(xì)胞中出現(xiàn)了受體和配體截然不同的差異性表達(dá)。EphA2在腫瘤惡性轉(zhuǎn)化和進(jìn)展中轉(zhuǎn)錄上調(diào),很可能是另一個RTKs發(fā)射了異常的生長因子信號造成的,例如EphA2誘導(dǎo)細(xì)胞黏附依賴于表皮生長因子(EGFR)的激活,在基因和蛋白水平EphA2表達(dá)上調(diào)[18]。研究表明EphA2和ErbB2聯(lián)合作用促進(jìn)乳腺癌進(jìn)展,可能是EphA2干擾其他RTKs的結(jié)果[19]。而且,EphA2啟動子有DNA破壞-應(yīng)答p53-結(jié)合點(diǎn),EphA2受體上調(diào)以適應(yīng)p53-獨(dú)立體中的紫外線照射及MAPK調(diào)節(jié)[20],為EphA2的過表達(dá)提供了其他可能的機(jī)制。促使EphA2過表達(dá)的另一種因素可能是基因突變或擴(kuò)增,目前,促進(jìn)EphA2顯著過表達(dá)的機(jī)制尚缺乏足夠的證據(jù)。在一些起源于神經(jīng)外胚層的惡性腫瘤中檢測到EphA2位于染色體區(qū)。完全闡明EphA2在實(shí)體腫瘤中過表達(dá)的機(jī)制尚需進(jìn)一步研究。
2.1EphA2在腫瘤中的功能多項(xiàng)研究證實(shí),EphA2的致癌作用的確存在。EphA2在非轉(zhuǎn)移細(xì)胞中過表達(dá)預(yù)示著正在轉(zhuǎn)化或傳遞轉(zhuǎn)移特性。EphA2是惟一不完全依賴于配體結(jié)合和酪氨酸磷酸化發(fā)揮激酶活性的Ephs受體。EphA2在體外腫瘤細(xì)胞中具有配體獨(dú)立激酶活性,這可用來解釋非磷酸化受體的致癌作用。近年來研究表明EphA2受體酪氨酸587和593突變可極大降低上皮細(xì)胞激酶活性,說明這些酪氨酸殘基的磷酸化對增加EphA2的激酶活性是非常重要的,具有潛在的細(xì)胞依賴性[21]。
有研究表明,EphA2的過表達(dá)可充分促進(jìn)乳腺上皮細(xì)胞惡化,這種過表達(dá)在非酪氨酸磷酸化的癌細(xì)胞中存在,并且集中在侵襲性癌細(xì)胞前緣的胞膜縐褶中;在酪氨酸磷酸化的非腫瘤上皮細(xì)胞中,EphA2呈低水平表達(dá),并且集中在細(xì)胞間接觸點(diǎn)上。早期研究把惡性腫瘤上皮細(xì)胞中EphA2酪氨酸磷酸化缺陷歸因于EphA2與其膜結(jié)合配體ephrinA1交互作用障礙。EphA2在調(diào)節(jié)腫瘤細(xì)胞黏附和細(xì)胞骨架重排作用中起關(guān)鍵作用[22],EphA2磷酸化和細(xì)胞間定位點(diǎn)依賴于上皮性鈣黏蛋白(epithelial-cadherin,E-cadherin)的表達(dá)和功能,E-cadherin介導(dǎo)細(xì)胞黏附功能缺失導(dǎo)致癌細(xì)胞減少,進(jìn)而相鄰細(xì)胞EphA2受體與ephrinA1配體交互作用機(jī)會相應(yīng)減少。ephrinA1的表達(dá)降低或缺乏可導(dǎo)致EphA2磷酸化降低,抑制配體ephrinA1的內(nèi)陷及降解功能,可增加蛋白的穩(wěn)定性,促進(jìn)EphA2的磷酸化。
2.2ephrinA1在腫瘤中的功能關(guān)于ephrinA1的功能研究主要集中在惡性腫瘤中ephrinA1作為EphA受體的膜定位配體介導(dǎo)juxtacrine信號?;趀phrins的膜定位功能,一些ephrins特別是ephrinA1在膜結(jié)合時使Eph受體完全激活,ephrinA1的膜定位功能已經(jīng)被學(xué)者們廣泛的接受。近年來實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),ephrinA1可與GBM異位ephrinA1表達(dá)細(xì)胞和內(nèi)源性乳腺癌ephrinA1表達(dá)細(xì)胞的胞膜分離[17]。呈非聚合狀態(tài)、摩爾濃度與重組二聚ephrinA1近似的可溶性ephrinA1可與EphA2和其他EphA受體發(fā)生交互作用。總之,這些研究表明ephrinA1的功能不一定依賴于juxtacrine的交互效應(yīng),一些ephrins配體的旁分泌作用尚未完全闡明,ephrinA1與EphA2交互作用時表現(xiàn)出類似肽的功能。
2.3腫瘤細(xì)胞中ephrinA1對EphA2的調(diào)節(jié)功能EphA2的獨(dú)立配體ephrinA1在影響惡性腫瘤的進(jìn)展中起著關(guān)鍵性作用,而且調(diào)控著受體酶的活性,認(rèn)為ephrinA1使EphA2的磷酸化下調(diào)是因?yàn)橛绊懥伺c腫瘤細(xì)胞內(nèi)EphA2受體交互作用的胞內(nèi)蛋白的定位和功能。含有ephrinA1-Fc(由可溶性ephrinA1和IgG的Fc部分重組融合而成)的腫瘤細(xì)胞激活以后,可抑制EphA2的磷酸化,誘導(dǎo)EphA2的內(nèi)陷和退化,消除癌蛋白的影響[23-24]。在許多腫瘤細(xì)胞系中發(fā)現(xiàn)ephrinA1的激活,可抑制體內(nèi)外惡性腫瘤細(xì)胞EphA2過表達(dá)的特性,引起細(xì)胞結(jié)構(gòu)深刻變化導(dǎo)致細(xì)胞極性缺失,抑制腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移和侵襲[4,18],抑制體內(nèi)惡性腫瘤生長。因此ephrinA1抑制腫瘤生長的機(jī)制可能是基于ephrinA1的雙重作用過程:(1)ephrinA1信號直接作用于EphA2受體使其表達(dá)下調(diào),誘發(fā)腫瘤抑制信號;(2)清除處于非配體激活狀態(tài)癌蛋白(強(qiáng)效癌蛋白)細(xì)胞。
EphA2-ephrinA1信號軸在調(diào)節(jié)正常細(xì)胞惡性變中起著關(guān)鍵作用,其中下游信號分子PI3K[25]、Src[26]、Slit2[27]、RhoA GTPases[28]、MAPK[20]和EGFR[18]等調(diào)控細(xì)胞黏附、細(xì)胞骨架的變化、細(xì)胞增殖、遷移和血管的發(fā)生、發(fā)展。
在腫瘤進(jìn)展中關(guān)于EphA2-ephrinA1信號機(jī)制和結(jié)果的研究認(rèn)為其具有復(fù)合作用傾向。有假說認(rèn)為:細(xì)胞內(nèi)信號蛋白氨基酸殘基特定磷酸化與EphA2直接相關(guān)或間接影響。例如,Src-FAK復(fù)合物的形成促進(jìn)細(xì)胞排斥和攣縮,與ephrinA1參與Tyr576/577上FAK的磷酸化相適應(yīng)。相反,EphA2誘導(dǎo)FAK Tyr397自磷酸化,方便FAK與其他的SH2區(qū)-包含蛋白交互作用,誘導(dǎo)下游信號來增加細(xì)胞黏附和擴(kuò)展[26]。EphA2或ephrinA1通過激活beta2-chimaerin調(diào)節(jié)細(xì)胞遷移[29],而且EphA2可以抑制免疫細(xì)胞遷移,阻止宿主免疫應(yīng)答[30]。實(shí)際上,EphA2-ephrinA1下游交互效應(yīng)或EphA2獨(dú)立配體激酶活性很可能是包括細(xì)胞種類和微環(huán)境在內(nèi)的多種因素綜合作用的結(jié)果。最新研究表明,PEG-ephrinA1在微血管形成中調(diào)節(jié)細(xì)胞黏附和遷移,有望成為惡性腫瘤診斷和特異靶向治療的新靶點(diǎn)[31]。EphA2-ephrinA1信號在腫瘤細(xì)胞中的作用是復(fù)雜的,但毫無疑問,EphA2-ephrinA1參與信號通路、密切參與惡性腫瘤的發(fā)病。EphA2在促進(jìn)腫瘤進(jìn)展的功能依賴于EphA2的過表達(dá)和ephrinA1激酶活性缺陷,EphA2受體和相應(yīng)蛋白交互作用保證信號順利通過重要通路發(fā)揮腫瘤細(xì)胞的生物學(xué)行為,促進(jìn)腫瘤惡性進(jìn)展。
綜上所述,EphA2和ephrinA1在惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起著關(guān)鍵性作用,但他們參與腫瘤的發(fā)生、惡性進(jìn)展過程中確切的作用是非常復(fù)雜的,并且受許多因素影響。將來的研究焦點(diǎn)將是:在惡性腫瘤的發(fā)生和血管發(fā)生機(jī)制研究中,使用天然的ephrin配體而不是人工重組的ephrin,EphA2和ephrinA1所起的特異性作用機(jī)制可能會更明確;而且,關(guān)于EphA2和ephrinA1在其他生長因子受體及其配體環(huán)境中的功能需要進(jìn)一步闡明,希望EphA2-ephrinA1系統(tǒng)影響惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展的病理機(jī)制能夠形成理論,并且不斷改進(jìn),為合理設(shè)計(jì)針對EphA2和ephrinA1系統(tǒng)的靶向治療策略提供理論依據(jù)。
1Hochgr?fe F,Zhang L,O′Toole SA,et al.Tyrosine phosphorylation profiling reveals the signaling network characteristics of basal breast cancer cells[J].Cancer Res,2010,70(22):9391-9401.
2Han LP,Liu JF,Liu XR,et al.Expression and prognostic significance of EphA2 and EphrinA-1 in ovarian serous carcinomas[J].Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban,2011,42(2):179-184.
3Taddei ML,Parri M,Angelucci A,et al.EphA2 induces metastatic growth regulating amoeboid motility and clonogenic potential in prostate carcinoma cells[J].Mol Cancer Res,2011,9(2):149-160.
4Chang Q,Jorgensen C,Pawson T,et al.Effects of dasatinib on EphA2 receptor tyrosine kinase activity and downstream signalling in pancreatic cancer[J].Br J Cancer,2008,99(7):1074-1082.
5Wykosky J,Gibo DM,Stanton C,et al.Interleukin-13 receptor A2,EphA2,and Fos-related antigen 1 as molecular denominators of high-grade astrocytomas and specific targets for combinatorial therapy[J].Clin Cancer Res,2008,14(1):199-208.
6Wang LF,F(xiàn)okas E,Bieker M,et al.Increased expression of EphA2 correlates with adverse outcome in primary and recurrent glioblastoma multiforme patients[J].Oncol Rep,2008,19(1):151-156.
7Li X,Wang L,Gu JW,et al.Up-regulation of EphA2 and down-regulation of EphrinA1 are associated with the aggressive phenotype and poor prognosis of malignant glioma[J].Tumour Biol,2010,31(5):477-488.
8Zhou N,Zhao WD,Liu DX,et al.Inactivation of EphA2 promotes tight junction formation and impairs angiogenesis in brain endothelial cells[J].Microvasc Res, 2011,82(2):113-121.
9Xu JS,Zhang JX,Geng TH,et al.Expression of EphA2 and EphrinA1 in human renal cell carcinoma and its relationship with angiogenesis[J].Zhonghua Zhong Liu Za Zhi,2009,31(6):438-441.
10St?hl S,Branca RM,Efazat G,et al.
Phosphoproteomic profiling of NSCLC cells reveals that ephrin B3 regulates pro-survival signaling through Akt1-mediated phosphorylation of the EphA2 receptor[J].Proteome Res,2011,10(5):2566-2578.
11Udayakumar D,Zhang G,Ji Z,et al.
EphA2 is a critical oncogene in melanoma[J].Oncogene,2011,13(10):1038.
12Yuan WJ,Ge J,Chen ZK,et al.Over-expression of EphA2 and EphrinA-1 in human gastric adenocarcinoma and its prognostic value for postoperative patients[J].Dig Dis Sci,2009,54(11):2410-2417.
13Liu Y,Zhang X,Qiu YZ,et al.Correlation of EphA2 protein expression with clinicopathological characteristics and prognosis in laryngeal squamous cell carcinoma[J].Zhonghua Zhong Liu Za Zhi,2011,33(3):197-201.
14Bogan C,Chen J,O′Sullivan MG,et al.Loss of EphA2 receptor tyrosine kinase reduces ApcMin/+ tumorigenesis[J].Int J Cancer,2009,124(6):1366-1371.
15Fujii H,F(xiàn)ujiwara H,Horie A,et al.EphrinA1 stimulates cell attachment and inhibits cell aggregation through the EphA receptor pathway in human endometrial carcinoma-derived Ishikawa cells[J].Hum Reprod, 2011,26(5):1163-1170.
16Merritt WM,Kamat AA,Hwang JY,et al.Clinical and biological impact of EphA2 overexpression and angiogenesis in endometrial cancer[J].Cancer Biol Ther,2011,10(12):1306-1314.
17Wykosky J,Palma E,Gibo DM,et al.Soluble monomeric ephrinA1 is released from tumor cells and is a functional ligand for the EphA2 receptor[J].Oncogene,2008,27(58):7260-7273.
18Larsen AB,Stockhausen MT,Poulsen HS.Cell adhesion and EGFR activation regulate EphA2 expression in cancer[J].Cell Signal,2010,22(4):636-644.
19Brantley-Sieders DM,Zhuang G,Hicks D,et al.The receptor tyrosine kinase EphA2 promotes mammary adenocarcinoma tumorigenesis and metastatic progression in mice by amplifying ErbB2 signaling[J].J Clin Invest,2008,118(1):64-78.
20Zhang G,Njauw CN,Park JM,et al.
EphA2 is an essential mediator of UV radiation-induced apoptosis[J].Cancer Res,2008,68(6):1691-1696.
21Fang WB,Brantley-Sieders DM,Hwang Y,et al.Identification and functional analysis of phosphorylated tyrosine residues within EphA2 receptor tyrosine kinase[J].J Biol Chem,2008,283(23):16017-16026.
22Taddei ML,Parri M,Angelucci A,et al.Kinase-dependent and -independent roles of EphA2 in the regulation of prostate cancer invasion and metastasis[J].Am J Pathol,2009,174(4):1492-1503.
24Dries JL,Kent SD,Virag JA.Intramyocardial administration of chimeric ephrinA1-Fc promotes tissue salvage following myocardial infarction in mice[J].J Physiol,2011,589(7):1725-1740.
25Chen LX,He YJ,Zhao SZ,et al.Inhibition of tumor growth and vasculogenic mimicry by curcumin through down-regulation of the EphA2/PI3K/MMP pathway in a murine choroidal melanoma model[J].Cancer Biol Ther,2011,11(2):229-235.
26Parri M,Buricchi F,Taddei ML,et al.Ephrin A1 repulsive response is regulated by an EphA2 tyrosine phosphatase[J].J Biol Chem,2005,280(40):34008-34018.
27Brantley-Sieders DM,Dunaway CM,Rao M,et al.Angiocrine factors modulate tumor proliferation and motility through EphA2 repression of Slit2 tumor suppressor function in endothelium[J].Cancer Res,2011,71(3):976-987.
28Parri M,Taddei ML,Bianchini F,et al.EphA2 reexpression prompts invasion of melanoma cells shifting from mesenchymal to amoeboid-like motility style[J].Cancer Res,2009,69(5):2072-2081.
29Takeuchi S,Yamaki N,Iwasato T,et al.Beta2-chimaerin binds to EphA receptors and regulates cell migration[J].FEBS Lett,2009,583(8):1237-1242.
30Khounlotham M,Subbian S,Smith R 3rd,et al.Mycobacterium tuberculosis interferes with the response to infection by inducing the host EphA2 receptor[J].J Infect Dis,2009,199(12):1797-1806.
31Saik JE,Gould DJ,Keswani AH.et al.Biomimetic Hydrogels with Immobilized EphrinA1 for Therapeutic Angiogenesis[J].Biomacromolecules,2011,12(7):2715-2722.