任路平,宋光耀,霍麗靜,劉娜,陳樹(shù)春
(河北省人民醫(yī)院1.內(nèi)分泌科;2.檢驗(yàn)科,石家莊 050051)
近年來(lái),非酒精性脂肪肝(nonalcoholic fatty liver disease,NAFLD)的發(fā)病率逐年升高,膳食因素中糖的過(guò)量攝入可促進(jìn)脂肪肝發(fā)生發(fā)展[1],NAFLD具體的發(fā)病機(jī)制尚不明確,研究表明可能與肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激等有關(guān)[2],目前尚缺乏有效治療NAFLD的藥物。
氧化苦參堿是苦參堿類(lèi)生物堿之一,常用于治療慢性肝炎,既往研究發(fā)現(xiàn),苦參堿可降低實(shí)驗(yàn)性大鼠脂肪肝的肝損傷[3],但具體機(jī)制尚未闡明。本研究應(yīng)用氧化苦參堿干預(yù)慢性高果糖喂養(yǎng)誘導(dǎo)的大鼠脂肪肝,觀察氧化苦參堿對(duì)大鼠胰島素抵抗和肝臟脂質(zhì)沉積影響;觀察高果糖喂養(yǎng)和氧化苦參堿干預(yù)對(duì)肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(endoplasmic reticulum stress,ERS)標(biāo)志物的影響,旨在探討高果糖攝入引起脂肪肝的機(jī)制及氧化苦參堿改善脂肪肝的可能機(jī)制。
成年雄性Wistar大鼠由河北醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。按照隨機(jī)分組的原則分為對(duì)照組、高果糖組和氧化苦參堿組,每組大鼠為15~16只,體質(zhì)量250~280 g,對(duì)照組進(jìn)食普通飼料;果糖組果糖占總熱量34.5%,高果糖飼料配方參考文獻(xiàn)[4],具體為:果糖34.5%,淀粉34.5%,脂肪9%,蛋白質(zhì)21%;喂養(yǎng)4周后,氧化苦參堿組每日灌胃給予氧化苦參堿(苦參素膠囊,江蘇正大天晴藥業(yè)股份有限公司,40 mg/kg);3組每日進(jìn)食熱量基本相等,喂養(yǎng)16周后處死大鼠,采血測(cè)定相關(guān)指標(biāo)及肝總質(zhì)量,留取肝組織。
1.2.1 血液學(xué)指標(biāo)測(cè)定:各組大鼠喂養(yǎng)16周后禁食10 h,采用快速血糖測(cè)定儀測(cè)定空腹血糖(FBG);頸動(dòng)脈取血,分離血清,用放射免疫法測(cè)定空腹血胰島素(FINS);HOMA 胰島素抵抗指數(shù)(HOMA index of insulin resistance,HOMA-IR)計(jì)算方法:HOMA-IR=空腹血糖(mmol·L-1)×空腹胰島素(μIU·mL-1)/22.5。全自動(dòng)生化分析儀測(cè)定大鼠血清谷丙轉(zhuǎn)氨酶(ALT)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)。
1.2.2 肝臟甘油三酯(TG)測(cè)定:取肝臟組織30 mg經(jīng)氯仿/甲醇抽提甘油三酯后,加入0.6%NaCl分離水相和有機(jī)相,吸取有機(jī)相待干燥后溶于100%乙醇 (500 μL),應(yīng)用 GPO-PAP 試劑盒(boehringer mannheim,Germany)測(cè)定 TG 含量。
1.2.3肝臟病理變化檢查——油紅O染色步驟:新鮮肝組織冰凍切片7 μm,風(fēng)干載玻片30 min,10%中性甲醛中固定10~15 min,然后水洗;置于密封容器盛裝的脂肪染色劑內(nèi)(稀釋后的油紅染液)10~15 min;用60%乙醇分色、水洗;蘇木精淡染核30 s,1%磷酸氫二鈉沖洗至變藍(lán);稍干后甘油明膠封固。
1.2.4 肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子標(biāo)志物基因表達(dá)測(cè)定:采用Trizon提取組織總RNA,采用SYBR Green實(shí)時(shí)檢測(cè)的逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)檢測(cè)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子標(biāo)志物糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose-regulated protein,GRP78)和 C/EBP 同源蛋白(C/EBP-homologous protein,CHOP)基因的表達(dá)(PE9600熒光定量?jī)x,美國(guó) Perkin Elmer)[5]。PCR 體系 50 μL,5×SYBR Green10 μL,2 U/μLTaq 酶 1.5 μL,25 mmoL/L 脫氧核苷三磷酸 0.5 μL,10 μmoL/L 上游引物 10 μmoL/L下游引物 1 μL,cDNA 模板 5 μL,雙蒸水 30 μL。于循環(huán)延伸反應(yīng)最后時(shí)刻收集熒光信號(hào)。標(biāo)準(zhǔn)曲線制備:10倍梯度稀釋標(biāo)準(zhǔn)品,各取2.5 μL做定量模板,反應(yīng)體系及條件同上,同時(shí)設(shè)陰性對(duì)照。以稀釋倍數(shù)的對(duì)數(shù)為橫坐標(biāo),循環(huán)域值(Ct)為縱坐標(biāo),軟件分析系統(tǒng)可自動(dòng)繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線,并得到相應(yīng)各待測(cè)樣本的值和起始拷貝數(shù)。每組隨即選取6只小鼠進(jìn)行基因檢測(cè)。GRP78基因檢測(cè)引物序列:上游5′-AGGACAAGAAGGAGGATGTGGG-3′,下游 5′ACCG AAGGGTCATTCCAAGTG-3′;CHOP 基因檢測(cè)引物序列:上游 5′-TTCACTACTCTTGACCCTGCGTC-3′,下游 5′-CACTGACCACTCTGTTTCCGTTTC-3′。 內(nèi)參GAPDH的引物序列:上游5′-CATCACCATCTTCC AGGAGCG-3′,下游:5′-TCACCTTGCCCACAGCCTT G-3′。
1.2.5 肝臟ERS標(biāo)志物蛋白表達(dá)測(cè)定:采用Western blot法測(cè)定磷酸化胰腺內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(phosphorylated pancreatic ER kinase,p-PERK)、磷酸化山梨醇要求激酶1(phosphorylated inositol-requiring enzyme 1,p-IRE1)和活化轉(zhuǎn)錄因子 6(activating transcription factor-6,ATF-6)蛋白表達(dá)。于肝臟組織勻漿中加入10倍裂解液,13 000 r/min離心15 min,BCA法測(cè)蛋白含量。取20 μg蛋白進(jìn)行10%聚丙烯凝膠電泳,濕法電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h后,加入1∶1 000稀釋的抗體,4℃搖床過(guò)夜,TTBS緩沖液洗膜后加入1∶10 000稀釋的辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔抗體,室溫孵育1 h,最后用ECL化學(xué)發(fā)光法檢測(cè),膜與化學(xué)發(fā)光底物孵育,經(jīng)X膠片曝光顯影。用IMAGEJ軟件分析,以目的蛋白的灰度值除以?xún)?nèi)參14-3-3的灰度值以校正誤差,所得結(jié)果代表某樣品的目的蛋白相對(duì)含量。每組隨機(jī)選6例樣本進(jìn)行蛋白表達(dá)分析。p-PERK抗體(磷酸化位點(diǎn):Thr980)由 cell signaling 公司提供,p-IRE1(磷酸化位點(diǎn):Ser724)抗體、總IRE-1抗體由ABCAM公司提供,ATF-6由Santa Cruz公司提供。內(nèi)參抗體GADPH由Kangchen公司提供。
各組大鼠實(shí)驗(yàn)起始體質(zhì)量無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),飼料喂養(yǎng)16周后高果糖組大鼠體質(zhì)量高于對(duì)照組(P<0.01);氧化苦參堿組體質(zhì)量較高果糖組大鼠體質(zhì)量明顯減輕(P<0.01),而與對(duì)照組比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)。高果糖組的血葡萄糖、血胰島素及HOMA指數(shù)較對(duì)照組明顯增加(P<0.01),經(jīng)氧化苦參堿干預(yù)后血葡萄糖、血胰島素及HOMA指數(shù)較高果糖組顯著降低(P<0.01)。與對(duì)照組比較,高果糖組的血清ALT、AST、肝質(zhì)量及肝臟TG水平顯著增高(P均<0.01),氧化苦參堿組上述指標(biāo)均顯著低于高果糖組(P均<0.01),見(jiàn)表1。
表1 各組大鼠喂養(yǎng)16周時(shí)的基本指標(biāo)(±s)Tab.1 Basic characteristics in rats after 16-week feeding(±s)
表1 各組大鼠喂養(yǎng)16周時(shí)的基本指標(biāo)(±s)Tab.1 Basic characteristics in rats after 16-week feeding(±s)
1)P < 0.05,2)P < 0.01 vs control group;3)P<0.05,4)P<0.01 vs high fructose group.
GroupBody mass(g)FBG(mmol/L)FINS(mIU/L)HOMA indexSerum ALT(IU/L)Serum AST(IU/L)Liver weight(g)Liver TG(μmol/g)Control group 434±23 5.4±0.4 11.5±3.4 2.76±0.36 38.2±4.8 82.5±10.1 12.2±0.3 8.6±0.2 High fructose group 489±201) 6.6±0.52) 17.9±2.12) 5.26±0.342) 54.1±3.92) 104.8±8.22) 16.4±0.72) 28.2±2.32)Oxymatrine group 452±183) 5.9±0.64) 12.8±1.84) 3.36±0.414) 48.6±3.54) 94.3±9.84) 13.9±0.32),4) 16.1±1.81),4)
對(duì)照組大鼠肝細(xì)胞排列緊密,邊緣清晰,胞質(zhì)未見(jiàn)脂滴;高果糖組大鼠肝細(xì)胞內(nèi)可見(jiàn)大量脂滴;而氧化苦參堿組大鼠肝細(xì)胞脂滴較對(duì)照組明顯減少(圖1)。
與對(duì)照組比較,高果糖組GRP78、CHOPmRNA水平顯著增高(P<0.01),而氧化苦參堿組的GRP78、CHOPmRNA水平較對(duì)照組顯著下降(P<0.01),見(jiàn)表2。
與對(duì)照組比較,高果糖組p-PERK、p-IRE-1/t-IRE-1和ATF-6蛋白表達(dá)均明顯增加(P<0.01),而氧化苦參堿組大鼠的上述蛋白表達(dá)水平較高果糖組顯著下降(P<0.01),見(jiàn)圖 2,表 3。
表2 各組大鼠內(nèi)質(zhì)網(wǎng)伴侶分子GRP78和CHOP的基因表達(dá)(±s)Tab.2 Gene expression of ER chaperonsGRP78andCHOPin rats(±s)
表2 各組大鼠內(nèi)質(zhì)網(wǎng)伴侶分子GRP78和CHOP的基因表達(dá)(±s)Tab.2 Gene expression of ER chaperonsGRP78andCHOPin rats(±s)
1)P < 0.05,2)P < 0.01 vs control group;3)P<0.01 vs high fructose group.
Group GRP78/GADPH CHOP/GADPH Control group 1.00±0.16 1.00±0.13 High fructose group 2.01±0.242) 1.83±0.122)Oxymatrine group 1.43±0.121),3) 1.41±0.161),3)
NAFLD是一組和代謝綜合征相關(guān)的脂質(zhì)沉積肝病的疾病,包括單純性脂肪肝、非酒精性脂肪性肝炎、肝硬化甚至肝細(xì)胞癌[6]。近年來(lái),NAFLD是西方國(guó)家最常見(jiàn)的慢性肝病,在我國(guó)也較常見(jiàn),尚缺乏特效的治療藥物。本研究通過(guò)16周的慢性高果糖喂養(yǎng)誘導(dǎo)出大鼠肝臟脂質(zhì)沉積和肝細(xì)胞損傷(表現(xiàn)為血 AST、ALT升高),同時(shí)伴有 FBG、FINS、HOMA 指數(shù)增高等胰島素抵抗的表現(xiàn),表明了果糖過(guò)量攝入對(duì)機(jī)體代謝的危害,與既往的研究一致[7]。同時(shí),研究發(fā)現(xiàn),通過(guò)氧化苦參堿的干預(yù),高果糖喂養(yǎng)的大鼠肝臟TG顯著減少,肝損傷減輕,并伴有糖代謝指標(biāo)的顯著改善,表明氧化苦參堿是一個(gè)治療NAFLD和改善IR的藥物。
表3 各組大鼠肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子標(biāo)志物蛋白表達(dá)比較(±s)Tab.3 Protein expression in ERS molecular markers in liver in rats(±s)
表3 各組大鼠肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分子標(biāo)志物蛋白表達(dá)比較(±s)Tab.3 Protein expression in ERS molecular markers in liver in rats(±s)
1)P < 0.01,2)P < 0.05 vs control group;3)P<0.01vs high fructose group.
Group p-PERK GADPH p-IRE-1 t-IRE-1 ATF-6 Control group 124.22±18.60 180.03±14.32 198.61±15.62 257.94±20.19 154.82±20.42 High fructose group 286.12±16.121) 182.67±21.09 336.93±29.741) 245.83±13.52 452.44±43.011)Oxymatrine group 133.69±28.293) 173.01±17.44 212.75±23.773) 242.37±24.59 241.02±19.992),3)
近年研究證明ERS與脂肪肝的發(fā)生發(fā)展有關(guān),通過(guò)對(duì)ERS的抑制可改善ob/ob小鼠的脂肪肝[8]。當(dāng)病毒感染、飲食因素失調(diào)等引起非折疊蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔內(nèi)堆積時(shí),即出現(xiàn)ERS,同時(shí)伴有非折疊蛋白反應(yīng)(unfolded protein response,UPR)。UPR 是ERS的保護(hù)機(jī)制,目前尚無(wú)直接反應(yīng)ERS的標(biāo)志物,UPR的通路激活即標(biāo)志了ERS的發(fā)生。UPR有3條途徑,分別為磷酸化細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶-真核細(xì)胞轉(zhuǎn)錄起始因子α亞單位(p-PERK-eIF2α)通路、肌醇要求酶1-X盒連接蛋白1(IRE-1-XBP-1)通路和ATF-6通路[9]。本研究檢測(cè)了慢性高果糖喂養(yǎng)后大鼠肝內(nèi)3條UPR通路的上游標(biāo)志物p-PERK、IRE-1和ATF-6,經(jīng)過(guò)16周高果糖飲食喂養(yǎng),大鼠肝內(nèi)3種蛋白表達(dá)均明顯升高,提示反映ERS的UPR的3條途徑均被激活,并伴隨ERS伴侶分子GRP78和CHOP基因表達(dá)的增加,表明高果糖喂養(yǎng)誘導(dǎo)的脂肪肝的發(fā)生發(fā)展與ERS有關(guān)。然而,根據(jù)本研究結(jié)果,尚不能明確脂肪肝發(fā)生與ERS的因果關(guān)系,ERS介導(dǎo)果糖誘導(dǎo)的脂肪肝可能有兩種機(jī)制:一種可能是果糖首先刺激脂質(zhì)合成[10],繼之出現(xiàn)ERS。ER是脂質(zhì)合成的器官,當(dāng)果糖誘發(fā)肝內(nèi)大量脂質(zhì)合成時(shí),ER的工作負(fù)荷加重,從而出現(xiàn)ERS;另一個(gè)可能是果糖本身在肝臟的大量存在改變了細(xì)胞內(nèi)的營(yíng)養(yǎng)狀態(tài),出現(xiàn)ERS,繼之ERS直接促進(jìn)了脂質(zhì)沉積。
與高果糖組比較,氧化苦參堿組大鼠的UPR上游標(biāo)志物的蛋白表達(dá)和ERS伴侶分子表達(dá)均減少,ERS較高果糖組改善,提示氧化苦參堿減輕高果糖喂養(yǎng)大鼠肝脂質(zhì)沉積和肝損傷與其改善ERS有關(guān)。ERS的改善可能是氧化苦參堿改善大鼠肝臟脂質(zhì)沉積的始動(dòng)機(jī)制,亦有可能是苦參堿通過(guò)其他機(jī)制改善肝臟脂質(zhì)沉積后,脂質(zhì)沉積減輕后ERS相應(yīng)緩解,具體的機(jī)制尚待進(jìn)一步研究。
值得提出的是,本研究中慢性高果糖喂養(yǎng)引起小鼠肝臟CHOP基因表達(dá)增高。CHOP是反應(yīng)細(xì)胞凋亡的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)伴侶分子,ERS時(shí)CHOP經(jīng)上游轉(zhuǎn)錄元件IREI、PERK和ATF6調(diào)控。有研究發(fā)現(xiàn)CHOP基因敲除可增強(qiáng)細(xì)胞對(duì)抗ERS所致凋亡的能力[11]。CHOP對(duì)細(xì)胞增生及分化具有十分重要的作用,是一個(gè)由抗凋亡向促凋亡轉(zhuǎn)換的重要信號(hào)分子。通過(guò)本研究可以看出,經(jīng)過(guò)16周高果糖喂養(yǎng)后,大鼠肝內(nèi)CHOP表達(dá)升高,提示肝組織內(nèi)存在肝細(xì)胞凋亡事件;而氧化苦參堿組CHOP基因表達(dá)降低,提示肝細(xì)胞凋亡減輕。
總之,本試驗(yàn)結(jié)果表明了果糖過(guò)量攝入對(duì)肝臟脂質(zhì)代謝的危害和氧化苦參堿對(duì)NAFLD可能的治療作用,氧化苦參堿治療可改善高果糖喂養(yǎng)大鼠的肝臟脂質(zhì)沉積和胰島素抵抗,其機(jī)制可能與氧化苦參堿改善肝細(xì)胞ERS有關(guān),具體機(jī)制尚需深入研究。
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中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2012年10期