張海峰,張 穎,任青愛,謝曉華
(解放軍總醫(yī)院 南樓外一科,北京 100853)
當機體受到嚴重創(chuàng)傷、手術、休克等打擊時,會產生一系列應激反應,導致機體損傷,肺臟、心臟等遠隔臟器的損害常較為嚴重。研究發(fā)現[1]:大鼠截肢創(chuàng)傷可造成肺損傷,術后6h肺損傷最重。研究已證實:缺血缺氧是導致各種臟器損害的主要始動因素之一,線粒體損害是缺血缺氧損害的關鍵環(huán)節(jié),創(chuàng)傷引起的缺血缺氧等原因導致線粒體結構和功能的損傷可能是創(chuàng)傷后肺臟等遠隔臟器損害的重要環(huán)節(jié)。本實驗旨在研究截肢創(chuàng)傷后大鼠肺組織細胞內線粒體結構與功能的損傷情況及他克莫司(tacrolimus,FK506)對其的干預及作用機制。
生物氧耗分析系統(tǒng)(Strathkelvin,英國)、多功能酶標儀 SynergyHT(Bio-TEK,美國);熒光分光光度計 Hitachi-2500(日立,日本);Bradford蛋白濃度測定試劑盒 (碧云天生物技術研究所);總ATP酶活力測定試劑盒 (南京建成生物工程研究所);Rhodamine 123、ADP(Sigma,美國)。
健康成年雄性SD大鼠24只,體重260~300g,購自第三軍醫(yī)大學實驗動物中心,常規(guī)條件下標準飼料喂養(yǎng)。隨機分為3組(n=8)。對照組:腹腔注射與干預組等體積的生理鹽水,6h后麻醉迅速處死;創(chuàng)傷組:以截肢創(chuàng)傷應激后6h大鼠作為創(chuàng)傷對照,創(chuàng)傷后立即腹腔注射與干預組等體積的生理鹽水,截肢術后6h迅速處死;干預組:截肢后立即腹腔注射FK506 0.1mg/kg[2],截肢術后6h迅速處死。
3%異戊巴比妥鈉(80mg/kg)腹腔注射麻醉大鼠,仰臥位固定。先于左側腹股溝處切開皮膚,游離出股動靜脈,結扎腹壁淺動靜脈及其他分支,于膝關節(jié)上方1.2~1.4cm處完全切斷除股靜、動脈以外的所有結構,縫扎止血,最后剪斷股靜、動脈,建立大鼠左后肢的截肢創(chuàng)傷應激模型。6h后將大鼠斷頭處死,立即解剖取出肺臟。取肺臟組織約1g,置于帶冰碴生理鹽水中清洗殘存血液,參照STE溶液分離法[3]提取分離肺臟線粒體:按1g組織+9ml分離介質比例加入0~4℃的線粒體分離介質 (250ml反應體系中加入蔗糖 21.935g、Tris 0.3025g、EDTA 0.073g, 用 Tris-HCl調節(jié) pH 至7.5),組織剪碎后勻漿、離心、取上清,收集的上清液于2℃下11500g離心15min,棄上清,用適量(2~3ml)分離介質懸浮,重復離心 1次,最后將沉淀用分離介質懸浮制成線粒體混懸液。以上操作均在0~4℃下進行,1h內完成。
1.4.1 線粒體呼吸功能測定
采用strathkelvin氧電極法測定線粒體呼吸功能,測定參照盧國守等[4]的方法??偡磻w積為800μl,反應溫度30℃。 預先加入 700μl反應介質(甘 露 醇 225mmol/L、 蔗 糖 75mmol/L、KH2PO45mmol/L、Tris 10mmol/L、K+-EDTA 0.05mmol/L、KCl 5mmol/L,pH7.4)孵育 2min,以空氣飽和,然后加入線粒體懸液100μl,預溫1~2min后依次加入反應底物谷氨酸鈉 (1.25mol/L)和蘋果酸鈉(1.25mol/L) 各 10μl, 間 隔 約 1min, 后 加 入40mmol/L的ADP 2μl,觀察線粒體呼吸態(tài)的變化,記錄氧耗曲線,計算在ADP加入后3態(tài)呼吸(ST3)和 ADP耗盡后 4態(tài)呼吸(ST4)的氧耗量,呼吸控制率(respiratory control ratio,RCR)以 3、4 態(tài)耗氧之比(ST3/ST4)表示。
1.4.2 線粒體膜電位測定
按Ronald等[5]的方法進行。反應介質為蔗糖150mmol/L、氯化鎂 5mmol/L、琥珀酸鈉 5mmol/L、魚滕酮2.5mmol/L、磷酸鉀緩沖液5mmol/L、Rhodamine123 1μmol/L、Hepes 20mmol/L,pH7.4。取線粒體懸液100μl,加反應介質1ml,室溫下反應5min,然后5000g離心5min,取上清于500nm處比色測線粒體外Rhodamine123濃度(Xout)。設定線粒體基質體積1μl/mg蛋白,線粒體內Rhodamine123 濃度 Xin=(1-1.1×Xout)×10000/蛋白濃度,線粒體膜電位 MMP=59×lgXin/Xout。
1.4.3 線粒體總ATP酶活力測定
ATP酶可分解ATP生成ADP及無機磷,測定無機磷的含量可判斷ATP酶活性的高低。定義每小時每毫克組織蛋白中ATP酶分解ATP產生1μmol無機磷的量為 1個 ATP酶活力單位[μmolPi/(mgprot·h)]。 嚴格按照 ATP 酶試劑盒說明書操作。
從創(chuàng)傷組、干預組中隨機留取1只大鼠肺組織約1mm×1mm×1mm,立即置于 2.5%戊二醛(磷酸緩沖液配制)中4℃固定1~2h,PBS洗3次,反復換液,1%鋨酸固定。送電鏡室浸潤包埋,制作超薄切片,透射電子顯微鏡下觀察并拍照。
采用SPSS15軟件進行方差齊性檢驗、成組資料采用t檢驗。
與對照組比較,創(chuàng)傷組肺線粒體ST3耗氧量、RCR、膜電位及總ATP酶活力顯著降低 (P<0.05),ST4耗氧量有升高趨勢,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);與創(chuàng)傷組比較,干預組線粒體ST3耗氧量、RCR、膜電位及總ATP酶活力顯著升高(P<0.05),ST4耗氧量有降低趨勢,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05) (表 1)。
表1 各組大鼠肺線粒體呼吸功能指標的變化(±s,n=8)
表1 各組大鼠肺線粒體呼吸功能指標的變化(±s,n=8)
注:與對照組比較,*P<0.05,**P<0.01;與創(chuàng)傷組比較,#P<0.05,##P<0.01。
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創(chuàng)傷后6h肺線粒體膜結構不清晰,線粒體明顯腫脹,部分線粒體出現空泡、嵴減少、斷裂、結構不清(圖1A)。加用FK506后肺線粒體腫脹及內部結構損傷見輕度腫脹,程度比創(chuàng)傷組有所減輕(圖 1B)。
圖1 大鼠肺細胞線粒體形態(tài)的透射電鏡觀察
線粒體對于維持細胞的正常功能具有十分重要的作用。研究表明,線粒體功能異常是細胞損害的關鍵環(huán)節(jié)[6]。線粒體呼吸功能ST3代表ADP對線粒體氧化磷酸化功能的刺激效應,ST4反映質子漏狀況,RCR反映線粒體結構完整性及氧化磷酸化耦聯程度;而線粒體膜電位直接反映線粒體功能[7],線粒體其正常功能依賴于膜結構的高度完整性,線粒體能量代謝障礙會引起膜電位的下降[8]。ATP酶存在于組織細胞及細胞器的膜上,線粒體膜上的ATP酶是調節(jié)和維持細胞和線粒體鈣穩(wěn)態(tài)的關鍵因素。
本實驗結果顯示:截肢創(chuàng)傷導致了大鼠肺線粒體結構和功能的損傷,這可能是創(chuàng)傷后肺損害的重要環(huán)節(jié)。這一變化可能的機制是:①氧自由基生成過量。氧自由基能夠影響線粒體呼吸鏈復合物的活力,其生成過量可通過影響線粒體的氧化磷酸化而降低細胞內ATP的合成[9]。②Ca2+超載。當Ca2+攝入過量時,促使內膜小孔開放,引起線粒體膜電位降低和氧化磷酸化的脫耦聯[10]。在心肌細胞和神經細胞的研究中顯示[11,12]:缺血后由于線粒體能量代謝障礙,導致線粒體發(fā)生腫脹;同時線粒體細胞質內Ca2+的重攝取能力下降,導致線粒體呼吸功能障礙。③線粒體通透性轉換孔的高通透狀態(tài)即所謂的線粒體通透性轉換(mitochondrial permeability transition,MPT), 它與細胞死亡調節(jié)有關。當發(fā)生MPT時,線粒體允許分子量<5000Da的物質自由進出,Ca2+全部釋放,膜電位完全、永久消失,線粒體腫脹,它受Ca2+、ADP、氧化應激及高PH誘導[10]。
鈣調蛋白(CaN)介導的信號通路參與血管平滑肌細胞增殖和內皮細胞功能的調節(jié),在細胞凋亡的調節(jié)中也起重要作用。Sayen等[13]發(fā)現在CaN轉基因小鼠模型中,CaN信號通路影響了心肌線粒體的能量代謝。另有研究發(fā)現:CaN抑制劑FK506預處理可以保護心肌、肝、腎受損線粒體的呼吸功能[14,15]。本實驗結果提示FK506的應用可使肺線粒體功能明顯改善,說明CaN信號通路可能參與了截肢創(chuàng)傷應激后的肺線粒體損傷,FK506干預可部分改善肺線粒體的呼吸功能,對創(chuàng)傷應激后肺線粒體損傷具有保護作用。環(huán)孢素A (Cyclosporin A,CsA)是經典的通透性轉換孔(MPTP)抑制藥,可與親環(huán)蛋白 D(CyP-D)結合形成復合物,阻礙CyP-D與ANT的結合、抑制通道開放[16]。FK506是CsA的換代產品,可能通過相似機制抑制了通道的開放、發(fā)揮膜電位穩(wěn)定作用。
總之,截肢創(chuàng)傷可能通過炎性反應、缺血、缺氧、Ca2+超載等途徑和機制導致肺線粒體出現結構和功能的損傷,而FK506可能通過抑制CaN信號通路、穩(wěn)定線粒體膜、提高線粒體氧化磷酸化耦聯程度、在一定程度上緩解能量供應的不足,減輕創(chuàng)傷后肺細胞線粒體的損傷,從而為進一步研究創(chuàng)傷后肺損傷的保護提供了實驗依據。
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