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        外來入侵生物福壽螺β-actin基因片段的克隆及表達(dá)分析

        2012-06-01 14:55:08鄭國(guó)灣董勝?gòu)?/span>俞曉平
        關(guān)鍵詞:福壽螺內(nèi)參肌動(dòng)蛋白

        鄭國(guó)灣,董勝?gòu)?,俞曉?/p>

        (中國(guó)計(jì)量學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院,浙江省生物計(jì)量與檢驗(yàn)檢疫重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江 杭州 310018)

        肌動(dòng)蛋白(actin)是一種廣泛存在于真核生物細(xì)胞中的多功能球狀蛋白,由單個(gè)亞基構(gòu)成,主要分為:參與細(xì)胞骨架組成的微絲,參與肌肉細(xì)胞的收縮的肌細(xì)絲[1,2].肌動(dòng)蛋白是一類高度保守的蛋白質(zhì),其氨基酸序列在各個(gè)物種間的差異不超過20%,是細(xì)胞內(nèi)的管家基因.肌動(dòng)蛋白參與許多重要的細(xì)胞生理過程,包括肌肉收縮,細(xì)胞運(yùn)動(dòng),細(xì)胞分裂,細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),細(xì)胞連接建立和細(xì)胞形態(tài)維持等[1,3].作為細(xì)胞內(nèi)的管家基因,肌動(dòng)蛋白在生物體內(nèi)的生理或者受刺激狀態(tài)下都保持持續(xù)恒量表達(dá),因此在許多量化實(shí)驗(yàn)中,如實(shí)時(shí)熒光定量PCR,半定量RTPCR,Western blot和Northern blot雜交中均作為內(nèi)參基因[4].

        福壽螺Pomacea canaliculata(Lamarck),又名蘋果螺、大瓶螺,是一種大型的淡水螺類,隸屬于軟體動(dòng)物門(Mollusca)、腹足綱(Gastropoda)、新進(jìn)腹足目(Caenogastropoda)的瓶螺科(Ampullariidae).福壽螺原產(chǎn)于南美洲亞馬遜流域,因其被高估的經(jīng)濟(jì)價(jià)值在20世紀(jì)80年代相繼被亞洲許多國(guó)家引進(jìn)并飼養(yǎng)[5].福壽螺適應(yīng)能力強(qiáng),繁殖快,食性雜,在食物充足并缺乏有效天敵的環(huán)境中能迅速建立起種群,并成為當(dāng)?shù)厣锶郝涞膬?yōu)勢(shì)種[6,7].福壽螺喜食水稻幼苗及其它水生作物,現(xiàn)已成為我國(guó)及其他亞洲國(guó)家嚴(yán)重的農(nóng)業(yè)有害生物之一[7,8].

        然而迄今為止,有關(guān)福壽螺β-actin基因的研究尚未見報(bào)道.本研究成功地克隆了入侵我國(guó)的福壽螺β-actin片段cDNA,并分析了其序列組成.通過檢測(cè)其在鰓、消化腺、腎和足部肌肉組織等中的表達(dá)情況,為以后研究福壽螺其它功能基因提供了分子內(nèi)標(biāo).此外,分析福壽螺β-actin基因片段序列與其他物種序列的差異性,并采用NJ法同其它相近物種構(gòu)建了系統(tǒng)發(fā)育樹,初步探討福壽螺與其它物種的親緣關(guān)系,為福壽螺的入侵和危害提供理論依據(jù).

        1 材料和方法

        1.1 樣品采集和處理

        成年福壽螺采自浙江余姚茭白田間.所有福壽螺個(gè)體在恒溫實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行缸養(yǎng),飼養(yǎng)溫度為(26±1)℃,光照D∶L=12h∶12h,喂養(yǎng)食料為新鮮白菜葉.在實(shí)驗(yàn)前,所有采集的福壽螺進(jìn)行至少10d以上的馴養(yǎng).挑取健康福壽螺,進(jìn)行24h饑餓處理后進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn).

        1.2 主要試劑

        Trizol?reagent購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司;PrimeScript?1st Strand cDNA Synthesis Kit,LA-Taq DNA 聚合酶,r-Taq DNA 聚合酶,DL2000DNA Marker,pMD-18Tvector購(gòu) 自TaKaRa公司;Gel Extraction kit購(gòu)自Axygen公司;其它試劑均為分析純,所用水均為超純水.

        1.3 總RNA的提取和cDNA第一鏈的合成

        取福壽螺鰓、消化腺、腎和足部肌肉鮮活組織,按照Trizol試劑操作說明書抽提總RNA,電泳檢測(cè)其完整性,通過核酸定量?jī)x檢測(cè)其濃度和純度,以保證其OD260/OD280在1.8到2.0的范圍內(nèi).按照反轉(zhuǎn)錄PrimeScript?1st Strand cDNA Synthesis Kit說明書合成第一鏈cDNA.

        1.4 福壽螺β-actin cDNA片段序列的獲得

        根據(jù)GenBank中的相近種光滑雙臍螺Biomphalaria glabrata(登錄號(hào):U53348),盤鮑螺Haliotis discus(登錄號(hào):EF103363),文蛤 Meretrix meretrix(登 錄 號(hào):JN084197),櫛 孔 扇 貝Chlamys farreri(登錄號(hào):AY335441),紫貽貝Mytilus galloprovincialis(登錄號(hào):AF157491)的β-actin cDNA序列保守區(qū)域設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物actin-F和actin-R,用于來擴(kuò)增β-actin的cDNA 片段.PCR 反應(yīng)體系為:5μl 10×PCR Buffer(Mg2+Plus),4 μl dNTP Mixture (each 2.5mM),2μl模板cDNA正反引物(10μM)各1μl,TaKaRa Taq(5U/μl)0.25μl,加ddH2O至50μl.擴(kuò)增程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性3min;然后94℃變性30s,55℃退火30s,72℃延伸1min,共35個(gè)循環(huán);最后72℃延伸10min.所得的PCR產(chǎn)物均用1.2%的瓊脂糖凝膠電泳,切膠回收后,連接到pMD-18T,轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH-5α感受態(tài)細(xì)胞,挑取的陽性克隆送至上海博尚生物有限公司測(cè)序.

        1.5 序列分析和數(shù)據(jù)處理

        通過美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(NCBI)的BLAST功能,鑒定獲得的β-actin cDNA全長(zhǎng)是否屬于相應(yīng)的actin基因家族.使用DNAMAN軟件,將根據(jù)β-actin cDNA推測(cè)出的編碼框氨基酸序列同其它部分已知物種相應(yīng)的β-actin氨基酸序列進(jìn)行同源性比對(duì),并且使用 MEGA 5.0(Neighbor-Joining)構(gòu)建了相應(yīng)的生物系統(tǒng)進(jìn)化樹,采用Bootstrap(重復(fù)數(shù)1000)檢驗(yàn)分子系統(tǒng)樹各分支的置信度.

        1.6 福壽螺β-actin基因在4個(gè)組織中的轉(zhuǎn)錄水平

        根據(jù)獲得的β-actin基因核苷酸序列,設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物actin-F和actin-R:5′-TCACCAT TGGCAACGAGAGAT-3′和5′-TCTCGTGA ATACCAGCCGACT-3′,對(duì)福壽螺鰓組織cDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并對(duì)退火溫度及循環(huán)次數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,獲得適宜的實(shí)驗(yàn)參數(shù).采用優(yōu)化后的反應(yīng)體系對(duì)福壽螺鰓、消化腺、腎和足部肌肉組織的RNA進(jìn)行半定量PCR檢測(cè).PCR反應(yīng)條件為:94℃預(yù)變性3min;然后94℃變性30s,55℃退火30s,72℃延伸1min,共28個(gè)循環(huán);最后72℃延伸10 min.PCR產(chǎn)物經(jīng)2.0%瓊脂糖凝膠電泳分離檢測(cè).

        2 結(jié)果與分析

        2.1 序列特征分析

        經(jīng)RT-PCR擴(kuò)增,電泳后獲得福壽螺β-actin基因片段清晰單一的擴(kuò)增產(chǎn)物(圖1).序列測(cè)定表明福壽螺β-actin基因序列長(zhǎng)度為840bp,與電泳圖預(yù)測(cè)大小一致.其推導(dǎo)的氨基酸序列(280個(gè))均為β-actin基因開放閱讀框的一部分(圖2).

        圖1 福壽螺β-actin擴(kuò)增電泳圖譜Figure 1 PCR amplification ofβ-actin in apple snail

        圖2 福壽螺β-actin基因片段核苷酸序列及其推導(dǎo)氨基酸序列Figure 2 Nucleotide and deduced amino acid sequences ofβ-actin cDNA fragment

        福壽螺β-actin基因片段推導(dǎo)的氨基酸序列在NCBI中經(jīng)過BLAST搜索,與其他已知物種β-actin基因進(jìn)行同源性比較.發(fā)現(xiàn)其氨基酸序列與其他已知相近物種基因的部分片段或全長(zhǎng)具有高度同源性94%~98%(表1),且與軟體動(dòng)物間具有更高的同源性.

        表1 福壽螺β-actin基因推導(dǎo)的片段氨基酸序列同源性比較Table 1 Identity comparison of the amino acid sequences of theβ-actin cDNA fragments in apple snail

        基于福壽螺β-actin推導(dǎo)氨基酸序列及表1物種的序列,采用MEGA 5.0軟件以NJ法構(gòu)建了8種動(dòng)物的系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖3).福壽螺與軟體動(dòng)物門的其他物種聚為一簇,然后與節(jié)肢動(dòng)物聚為一簇,再與脊椎動(dòng)物聚為一簇.

        圖3 根據(jù)部分β-actin氨基酸序列構(gòu)建的NJ系統(tǒng)進(jìn)化樹Figure 3 Phylogenetic tree of amino acids sequences of β-actin genes constructed with the neighborjoining method

        2.2 福壽螺β-actin基因的表達(dá)分析

        在優(yōu)化的PCR條件下,使用RT-PCR檢測(cè)福壽螺β-actin基因在其鰓、消化腺、腎和足部肌肉等組織的轉(zhuǎn)錄水平.電泳結(jié)果(圖4)顯示β-actin基因在這四個(gè)組織中的表達(dá)基本一致,具有良好的穩(wěn)定性,表明該基因適合作為內(nèi)參基因.

        圖4 福壽螺四種組織β-actin基因的RT-PCR檢測(cè)Figure 4 Relative expression ofβ-actin mRNAs in four different tissues

        3 討 論

        本研究采用簡(jiǎn)并PCR成功地獲得了福壽螺β-actin基因部分cDNA序列,這是在淡水螺類中是首次報(bào)道.目前對(duì)軟體動(dòng)物β-actin基因的研究主要集中在海水貝類等經(jīng)濟(jì)軟體動(dòng)物,如太平洋牡蠣(C.giga)[9]、蝦夷扇貝(Patinopecten yessoens)[10]、皺紋盤鮑(H.discus hannai)[11]等.本次得到的福壽螺β-actin氨基酸序列不但與太平洋牡蠣、光滑雙臍螺(B.glabrata)等軟體動(dòng)物具有很高的相似性,而且與果蠅(D.melanogaster)、斑馬魚(D.rerio)、大鼠(R.norvegicus)等動(dòng)物也有較高的相似性,這符合β-actin基因氨基酸編碼區(qū)高度保守的特點(diǎn)[4,12],可能與它參與構(gòu)成細(xì)胞骨架等重要功能密切相關(guān).

        β-actin基因一直以來被作為內(nèi)參基因廣泛應(yīng)用于基因的相對(duì)表達(dá)實(shí)驗(yàn)中.本實(shí)驗(yàn)從半定量PCR得到的結(jié)果表明,福壽螺β-actin基因在鰓、消化腺、腎和足部肌肉組織等組織中表達(dá)基本一致,并具有良好的穩(wěn)定性.軟體動(dòng)物分子生物學(xué)研究中,β-actin基因仍是最常用的內(nèi)參基因,如櫛孔扇貝(C.farreri)[13]、皺紋盤鮑(H.discus hannai)[14]、合浦珠母貝 (Pinctada fucata)[15]等,而且表達(dá)穩(wěn)定.因此,只要通過在福壽螺表達(dá)試驗(yàn)中β-actin基因是否受到實(shí)驗(yàn)操作的影響的研究,就可以判定該基因是否可以作為研究福壽螺其他功能基因相對(duì)表達(dá)的內(nèi)參基因.

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