王瑩瑩王德培,2李可樂(lè)魏征劉鵬
(1.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津300457;2.工業(yè)微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津300457)
納豆芽孢桿菌(Bacillus natto)是發(fā)酵日本傳統(tǒng)食品納豆的益生菌,屬于枯草芽孢桿菌的一個(gè)亞種。納豆芽孢桿菌能分解大分子物質(zhì),產(chǎn)生氨基酸、有機(jī)酸、寡聚糖等易于吸收的成分,這些成分具有多種保健功能,如抗菌、溶血栓、抗腫瘤、抗氧化、降血壓、預(yù)防骨質(zhì)疏松等;另外,納豆芽孢菌能分泌各種酶和維生素,促進(jìn)小腸黏膜細(xì)胞的增殖,保證腸道功能的正常[1]。因此,納豆芽孢桿菌廣泛用于各領(lǐng)域,對(duì)其微生態(tài)制劑的開(kāi)發(fā)已成為國(guó)內(nèi)外學(xué)者的研究熱點(diǎn)。
本研究以實(shí)驗(yàn)室保存的一株自日本市售納豆中分離的納豆芽孢桿菌為對(duì)象,優(yōu)化其液體發(fā)酵條件,為納豆芽孢桿菌的廣泛應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
菌種為納豆芽孢桿菌(Bacillus natto),由天津科技大學(xué)生化工程研究室保存。
種子培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/l、牛肉膏5.0 g/l、NaCl 5.0 g/l、pH值7.2~7.4,固體培養(yǎng)基需加20 g/l的瓊脂。
初始發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖5.0 g/l、蛋白胨5.0 g/l、檸檬酸鈉1.0 g/l、MgSO4·7H2O 0.2 g/l、K2HPO44.0 g/l、KH2PO46.0 g/l,pH值7.0~7.2。
種子培養(yǎng):將納豆芽孢桿菌由肉湯斜面接種至種子培養(yǎng)基中(三角瓶,50 ml/250 ml),37℃、200 r/min培養(yǎng)11 h;
發(fā)酵培養(yǎng):發(fā)酵培養(yǎng)基成分和發(fā)酵條件根據(jù)試驗(yàn)進(jìn)程相應(yīng)改變。
1.3.1 測(cè)定吸光值
利用分光光度計(jì),在波長(zhǎng)為600 nm條件下測(cè)定菌液的吸光值(OD值),測(cè)定時(shí)菌液用無(wú)菌生理鹽水稀釋10倍。
1.3.2 生長(zhǎng)曲線測(cè)定
取培養(yǎng)好的納豆芽孢桿菌斜面,接種于含50 ml肉湯培養(yǎng)基的250 ml三角瓶中,振蕩培養(yǎng)11 h后,按接種量2%轉(zhuǎn)接25瓶50 ml/250 ml肉湯培養(yǎng)基,37℃、200 r/min培養(yǎng),每1 h取樣一次,測(cè)定菌液的吸光值,以未接種的培養(yǎng)基作為空白對(duì)照。
1.3.3 平板稀釋菌落計(jì)數(shù)
菌液采用10倍梯度稀釋,選取3個(gè)適當(dāng)稀釋度,用移液槍吸取100 μl菌液,把菌液分散地滴在肉湯平板上,輕輕轉(zhuǎn)動(dòng)平板,使菌液均勻分布。每個(gè)稀釋度做3個(gè)平行。
1.4.1 碳源優(yōu)化試驗(yàn)
以初始發(fā)酵培養(yǎng)基為基礎(chǔ),分別以蔗糖、葡萄糖、玉米粉、麩皮、可溶性淀粉作為碳源,添加量為5.0 g/l。在各組發(fā)酵培養(yǎng)基中接入納豆芽孢桿菌種子液,接種量2%,37℃、200 r/min培養(yǎng)11 h,各組分別活菌計(jì)數(shù)。
1.4.2 氮源優(yōu)化試驗(yàn)
分別以酵母粉、牛肉膏、蛋白胨、硝酸銨、硝酸鈉作為氮源,添加量均為5.0 g/l。在發(fā)酵培養(yǎng)基中接入納豆芽孢桿菌種子液,接種量2%,37℃、200 r/min培養(yǎng)11 h,測(cè)定各組吸光值并活菌計(jì)數(shù)。
1.4.3 初始pH值優(yōu)化試驗(yàn)
在上述培養(yǎng)基優(yōu)化的基礎(chǔ)上,分別調(diào)節(jié)發(fā)酵培養(yǎng)基初始pH值至6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5,接種量2%,37℃、200 r/min發(fā)酵培養(yǎng)11 h,測(cè)定各組吸光值并活菌計(jì)數(shù)。
1.4.4 響應(yīng)面試驗(yàn)
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,確定Box-Behnken設(shè)計(jì)的自變量及其取值范圍,以10倍稀釋的發(fā)酵液的OD值為響應(yīng)值,運(yùn)用Design Expert 7.0軟件進(jìn)行3因素3水平的響應(yīng)面分析,對(duì)納豆芽孢桿菌發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行細(xì)致優(yōu)化[3]。
采用最優(yōu)培養(yǎng)基配方,對(duì)發(fā)酵過(guò)程中的接種量、裝液量和發(fā)酵溫度進(jìn)行優(yōu)化,測(cè)定各組吸光值。
1.5.1 接種量的優(yōu)化
分別選取0.5%、1%、2%、3%、4%和5%6個(gè)接種量水平,37℃、200 r/min發(fā)酵培養(yǎng)11 h,測(cè)定各組吸光值并活菌計(jì)數(shù)。
1.5.2 裝液量的優(yōu)化
分別選取30、40、50、60、70 ml 5種裝液量(250 ml三角瓶)水平,37℃、200 r/min發(fā)酵培養(yǎng)11 h,測(cè)定各組吸光值并活菌計(jì)數(shù)。
1.5.3 發(fā)酵溫度的優(yōu)化
發(fā)酵培養(yǎng)時(shí)分別置于30、37、40、42、45℃搖床中,200 r/min發(fā)酵培養(yǎng)11 h,測(cè)定各組吸光值并活菌計(jì)數(shù)。
圖1 納豆芽孢桿菌生長(zhǎng)曲線
連續(xù)測(cè)定納豆芽孢桿菌發(fā)酵液的吸光值(5倍稀釋?zhuān)?,得到納豆芽孢桿菌的生長(zhǎng)曲線。由圖1可知,0~3 h為納豆芽孢桿菌生長(zhǎng)延遲期,菌體數(shù)量極少;3~11 h為對(duì)數(shù)期,菌體數(shù)量急劇增多;在11 h時(shí)達(dá)到生長(zhǎng)的高峰期,在11~16 h時(shí),為納豆芽孢桿菌生長(zhǎng)的穩(wěn)定期,菌體生長(zhǎng)和死亡保持平衡狀態(tài);自16 h后細(xì)菌數(shù)量開(kāi)始減少,進(jìn)入衰亡期。
圖2 不同碳源對(duì)納豆芽孢桿菌增殖的影響
將菌株置于不同碳源的培養(yǎng)基中發(fā)酵培養(yǎng),進(jìn)行平板活菌計(jì)數(shù),結(jié)果如圖2??梢钥闯?,蔗糖對(duì)納豆芽孢桿菌增殖最有利,比最初選用的葡萄糖效果更好。以5.0 g/l的蔗糖做碳源,活菌數(shù)達(dá)到2.8×109cfu/ml,所以選擇蔗糖作為最佳碳源。
將菌株置于不同氮源的培養(yǎng)基中發(fā)酵培養(yǎng),測(cè)定各組OD值,同時(shí)進(jìn)行活菌平板計(jì)數(shù),結(jié)果如圖3??梢钥闯?酵母粉對(duì)納豆芽孢桿菌增殖最有利,比最初選用的蛋白胨效果更好。以5.0 g/l的酵母粉做氮源,活菌數(shù)達(dá)到5.6×109cfu/ml,所以選擇酵母粉作為最佳氮源。
在不同初始pH值中的培養(yǎng)基中,納豆芽孢桿菌增殖情況如圖4,發(fā)現(xiàn)活菌數(shù)隨著初始pH值的升高先增加后降低,在初始pH值為7.0~7.5時(shí),生長(zhǎng)得較好。其中在初始pH值為7.0時(shí),活菌數(shù)達(dá)到6.3×109cfu/ml。
以碳源(X1)、氮源(X2)和初始pH值(X3)為自變量,以10倍稀釋的發(fā)酵液OD值為響應(yīng)值(Y),進(jìn)行響應(yīng)面分析(因素水平見(jiàn)表1,每組2個(gè)重復(fù))并建立納豆芽孢桿菌增殖培養(yǎng)的回歸模型[4],試驗(yàn)設(shè)計(jì)與響應(yīng)值見(jiàn)表2。
表1 Box-Behnken設(shè)計(jì)因素水平
表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及響應(yīng)值表
運(yùn)用Design Expert 7.0軟件對(duì)表2數(shù)據(jù)進(jìn)行多元二次回歸擬合,回歸方程如下:
式中:Y——10倍稀釋后發(fā)酵培養(yǎng)基OD值的預(yù)測(cè)值;
x1、x2、x3——分別代表碳源、氮源、初始pH值的編碼值。
回歸方程的方差分析和可信度分析結(jié)果見(jiàn)表3和表4。
表3 Box-Behnken設(shè)計(jì)回歸分析結(jié)果
表4 模型可信度分析
由表3可知,回歸模型顯著可靠(P<0.000 1);因子X(jué)1、X3、、為顯著模型項(xiàng);而失擬項(xiàng)不顯著(P>0.05),提示本模型能充分反映實(shí)際情況[5]。
由表4可知,模型的決定系數(shù)(R-Squared)為0.980 0,說(shuō)明預(yù)測(cè)值與實(shí)測(cè)值之間具有高度的相關(guān)性;校正決定系數(shù)(Adj R-Squared)為0.954 4,說(shuō)明該模型能解釋95.44%響應(yīng)值的變化,僅有總變異的4.56%不能用此模型來(lái)解釋。因此,回歸方程的擬合程度很好,預(yù)測(cè)值和實(shí)測(cè)值之間具有高度的相關(guān)性[6]。模型的信噪比(Adeq Precision)為16.724 0,一般來(lái)說(shuō),模型的信噪比大于4就是較好的模型,進(jìn)一步說(shuō)明本模型設(shè)計(jì)非常成功,即回歸方程給納豆芽孢桿菌的增殖提供了一個(gè)較合適的模型。CV(Y的變異系數(shù))表示試驗(yàn)的精確度,CV值越高,試驗(yàn)的可靠性越低,本設(shè)計(jì)試驗(yàn)中CV值為1.470 0%,數(shù)值較小,說(shuō)明試驗(yàn)操作可信。
響應(yīng)面中各因素交互作用的立體圖及等高線圖見(jiàn)圖5,由圖5可知,模型存在穩(wěn)定點(diǎn),穩(wěn)定點(diǎn)是極大值點(diǎn),通過(guò)嶺脊分析[7],得到極大值所對(duì)應(yīng)的各主要因素的編碼值(x1、x2、x3)(-0.116、0.065、0.15)。由公式x1=(X1-30)/5,x2=(X2-8)/2,x3=(X3-7.2)/0.2,得到各主要因素(X1、X2、X3)的實(shí)際值為(29.42、8.13、7.23),即碳源添加量29.42 g/l、氮源添加量8.13 g/l、培養(yǎng)基初始pH值7.23。該模型預(yù)測(cè)的OD值為0.651。
由于得到的最佳條件未包括在響應(yīng)面優(yōu)化的15個(gè)試驗(yàn)中,需進(jìn)一步驗(yàn)證。因此,在優(yōu)化后的發(fā)酵培養(yǎng)基配方下,即碳源添加量29.42 g/l,氮源添加量8.13 g/l,初始pH值為7.23,在37℃、200 r/min條件下發(fā)酵11 h,然后測(cè)定發(fā)酵液OD值和活菌計(jì)數(shù)。共重復(fù)了3次試驗(yàn),每次試驗(yàn)都設(shè)有2組平行,測(cè)得發(fā)酵液10倍稀釋后OD值為0.655(此值為平均值)(相應(yīng)的活菌數(shù)為6.7×109cfu/ml),與試驗(yàn)預(yù)測(cè)值0.651非常接近,這表明試驗(yàn)值和實(shí)際值之間具有良好的擬合性,優(yōu)化模型可靠。
圖6 接種量對(duì)納豆芽孢桿菌增殖的影響
在不同接種量的培養(yǎng)基中,納豆芽孢桿菌增殖情況如圖6,發(fā)現(xiàn)活菌數(shù)隨著接種量的升高先增加后降低,在接種量為3%時(shí),納豆芽孢桿菌數(shù)達(dá)到7.0×109cfu/ml。
在不同裝液量的培養(yǎng)基中,納豆芽孢桿菌增殖情況如圖7,發(fā)現(xiàn)活菌數(shù)隨著裝液量的增加先升高后降低,在裝液量為50 ml時(shí),達(dá)到7.0×109cfu/ml。
根據(jù)試驗(yàn)結(jié)果可知,納豆芽孢桿菌在30~45℃均可生長(zhǎng),但40℃時(shí)生長(zhǎng)狀況最好。選擇40℃為最佳發(fā)酵溫度,在此條件下,納豆芽孢桿菌活菌數(shù)達(dá)到7.5×109cfu/ml。
采用單因素及響應(yīng)面試驗(yàn)法,通過(guò)測(cè)定發(fā)酵液吸光值和平皿活菌落計(jì)數(shù),對(duì)納豆芽孢桿菌的培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件進(jìn)行了優(yōu)化,最終確定納豆芽孢桿菌最佳增殖培養(yǎng)條件:培養(yǎng)基為蔗糖29.42 g/l、酵母粉8.13 g/l、檸檬酸鈉1.0 g/l、MgSO4·7H2O 0.2 g/l、K2HPO44.0 g/l、KH2PO46.0 g/l、初始pH值7.23、裝液量50 ml/250 ml、接種量3%、發(fā)酵溫度為40℃、發(fā)酵時(shí)間11 h。經(jīng)過(guò)一系列優(yōu)化,納豆芽孢桿菌的單位活菌數(shù)可達(dá)到7.5×109cfu/ml,為其在各方面的廣泛應(yīng)用打下良好基礎(chǔ)。
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