胡鵬飛, 賴東武, 何 紅
(浙江大學醫(yī)學院附屬邵逸夫醫(yī)院心內(nèi)科,浙江杭州310016)
晚期糖基化終產(chǎn)物(advanced glycation end products,AGEs)是非酶糖化反應的終末期產(chǎn)物,正常人隨著年齡的增加,AGEs會緩慢增加,但糖尿病病人由于長期高血糖狀態(tài),導致體內(nèi)糖化反應及AGEs生成加速。已有多項研究表明AGEs是引起糖尿病血管并發(fā)癥的重要誘因之一[1]。AGEs能夠在糖尿病病人血管壁沉積,促進內(nèi)皮細胞凋亡并增加其促凝活性,從而啟動并加速動脈粥樣硬化的形成[2]。自噬是一種溶酶體依賴的細胞內(nèi)受損細胞器或代謝產(chǎn)物的降解過程,其作為細胞的防御保護機制,與細胞凋亡之間有密不可分的聯(lián)系[3]。多項研究表明AGEs能誘導內(nèi)皮細胞凋亡[4],但關于AGEs與自噬之間可能存在的病理生理聯(lián)系,目前尚不清楚。調(diào)節(jié)自噬的相關信號通路較多,其中,PI3K/Akt/mTOR信號通路是一條重要的自噬相關信號通路。本研究以自噬相關蛋白LC3-II的表達作為衡量自噬水平的主要指標,初步研究AGEs誘導內(nèi)皮細胞自噬的相關機制及其在AGEs誘導內(nèi)皮細胞凋亡中的作用。為臨床上保護血管內(nèi)皮細胞,防治糖尿病合并動脈粥樣硬化開辟新的途徑。
人臍靜脈內(nèi)皮細胞株(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)購自上海中科院細胞研究所;抗LC3-Ⅱ多克隆抗體購自Novus;蛋白激酶B(protein kinase B,Akt)多克隆抗體、磷酸化蛋白激酶B(phospho-protein kinase B,p-Akt)多克隆抗體、哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)多克隆抗體和磷酸化哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(phospho-mammalian target of rapamycin,p-mTOR)多克隆抗體均購自Cell Signaling;DMEM培養(yǎng)基購自Gibco;胎牛血清購自四季青公司;內(nèi)毒素凋亡試劑盒購自上海潤成公司;3-甲基腺嘌呤(3-methyladenine,3 - MA)、MTT、牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)和D-葡萄糖均購于 Sigma;胰島素樣生長因子1(insulin-like growth factor 1,IGF-1)購自 R&D;Alexa Fluor 488 Annexin V/PI細胞凋亡試劑盒購自Invitrogen。
2.1 HUVECs的培養(yǎng) HUVECs用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基在37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。用0.25%胰酶(含EDTA)消化傳代。細胞在培養(yǎng)24 h后加入AGEs等處理因素。
2.2 AGEs的制備 參照文獻[5],0.5 g BSA 和 3.0 g D-葡萄糖溶于10 mL 0.5 mol/L PBS(pH 7.4)中,濾膜除菌后恒溫37℃避光孵育16周。相同條件下,以不含D-葡萄糖的PBS孵育BSA作為對照組,AGEs和BSA內(nèi)毒素含量由內(nèi)毒素檢測試劑盒測定并確保 < 2.5 kU/L。
2.3 透射電鏡 電鏡檢測AGEs處理HUVECs后細胞內(nèi)自噬體的變化。將 HUVECs以 4.0×105cells/well的密度接種于6 cm細胞培養(yǎng)皿中,24 h后加入AGEs(終濃度100 mg/L)處理6 h,消化收集細胞,用3%戊二醛固定,Hitachi H-7650 TEM電鏡分析。
2.4 Alexa Fluor 488 Annexin V/PI雙標記法檢測細胞凋亡 流式細胞術檢測AGEs誘導HUVECs的凋亡情況。將HUVECs以2.0×105cells/well的密度接種于6孔板中,培養(yǎng)24 h后處理并收集細胞。1×Annexin-binding buffer重懸,調(diào)節(jié)細胞濃度為1×109/L,加入 5 μL Alexa Fluor 488 和 5 μL(100 mg/L)PI工作液,室溫孵育15 min后,加入400 μL 1×Annexin-binding buffer輕混后用FACS Calibur流式細胞儀檢測,結果用BD CellQuest軟件分析。
2.5 MTT比色法測定細胞活性 取對數(shù)生長期內(nèi)皮細胞接種于96孔板,培養(yǎng)24 h后分別加入AGEs或 BSA(100 mg/L),3-MA(2 mmol/L),每組設5個復孔,每孔終體積為200 μL。培養(yǎng)48 h后每孔加入MTT溶液(5 g/L)20 μL,37℃孵育4 h后吸去上清,每孔加入100 μL DMSO,振蕩搖勻。用酶標儀于570 nm波長條件下測定吸光度值。
2.6 Western blotting 檢測 LC3、p - Akt、Akt、p -mTOR和mTOR的表達 收集HUVECs后,用含蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液裂解30 min,13 000×g離心10 min,取上清,BCA法進行蛋白定量。與5×樣品緩沖液混合后,煮沸5 min。將樣品(50 μg)進行SDS-PAGE,然后轉印至硝酸纖維素膜上。用5%脫脂牛奶封閉1 h,相應的Ⅰ抗4℃孵化過夜。TBS-T洗3次后加入辣根過氧化物酶標記的Ⅱ抗室溫孵育1 h,ECL法顯色,圖像結果采用 LAS-4000-Mini化學發(fā)光成像系統(tǒng)進行分析。
1.1 100 mg/L AGEs或 BSA 處理 HUVECs 6 h,與對照組及BSA組相比,AGEs組的自噬相關蛋白LC3-II的表達量明顯增加(P<0.05),見圖1A。不同時點(0、2、6、24 h)100 mg/L AGEs處理 HUVECs,與對照組比較,隨著時間變化,自噬相關蛋白LC3-II的表達量先升高后下降,峰值出現(xiàn)在6 h(P<0.05),見圖 1B。不同濃度(0、50、100、200 mg/L)AGEs處理HUVECs 6 h,隨著AGEs濃度的增加,自噬相關蛋白LC3-II的表達量明顯增加(P<0.05),見圖1C。以上結果表明在人臍靜脈內(nèi)皮細胞中AGEs能顯著增高內(nèi)皮細胞的自噬水平,并具有一定的濃度和時間依賴性。
1.2 透射電鏡檢測自噬 100 mg/L AGEs或BSA處理HUVECs 6 h后,未處理組和BSA組均未見到明顯的自噬體,但AGEs組可看到胞質中出現(xiàn)較多的獨立雙層及多層膜結構的自噬體,見圖1D。
Figure 1.AGEs induced autophagy in HUVECs.A,B and C:Western blotting analysis of LC3-II protein levels treated with BSA or AGEs.A:cells were treated with 100 mg/L AGEs or BSA for 6 h;B:cells were treated with 100 mg/L AGEs for 0,2,6,12 and 24 h;C:cells were treated for 6 h with 0,50,100,200 mg/L AGEs.Compared with control and BSA groups,the expression of LC3-II protein was notably increased in a time-and dose-dependent manner in AGE-treated cells±s.n=4.*P <0.05 vs control;△P <0.05 vs 0 h;#P <0.05 vs 0 mg/L.D:representative electron micrographs of HUVECs treated with 100 mg/L BSA or AGEs for 6 h.Typical autophagic vacuoles containing cellular material or membranous structures(bold arrows)were frequently found in cells treated with AGEs but not BSA.圖1 AGEs誘導HUVECs自噬相關蛋白LC3-II的表達
Figure 2.Effect of autophagy on viability of HUVECs treated with AGEs.Compared with control group,HUVECs treated with AGEs(100 mg/L,48 h)showed decreased viability.This effect could be further decreased by pretreating cells with the autophagy inhibitor 3-MA.±s.n=4.*P<0.05 vs control;△P<0.05 vs AGEs.圖2 自噬對AGEs誘導的內(nèi)皮細胞活性的影響
2.1 MTT比色法測定細胞活性 用 100 mg/L AGEs處理HUVECs 48 h,其中1組用自噬抑制劑3-MA(2 mmol/L)提前0.5 h預處理,單用3-MA組與對照組比較細胞活性沒有差異。AGEs組與對照組相比細胞活性明顯下降(P<0.05)。預先用3-MA處理后的AGEs組細胞活性較單用AGEs組進一步下降(P<0.05),見圖2,說明抑制自噬加劇了AGEs誘導的內(nèi)皮細胞活性下降。
2.2 Annexin V-FITC/PI雙染標記法檢測細胞凋亡 用100 mg/L AGEs處理HUVECs 48 h,其中1組用自噬抑制劑3-MA(2mmol/L)提前0.5h預處理,單用3-MA組與對照組比較細胞凋亡率沒有差異,AGEs組與對照組比較細胞凋亡率明顯升高(P<0.05),預先用3-MA處理后的AGEs組細胞凋亡率較AGEs組進一步下降(P<0.05),見圖3。抑制自噬加劇了AGEs誘導內(nèi)皮細胞凋亡。以上2項實驗結果表明自噬在AGEs誘導的內(nèi)皮細胞凋亡中起保護作用。
Figure 3.Effect of autophagy on apoptosis of HUVECs treated with AGEs.Compared with control group,HUVECs treated with AGEs(100 mg/L,48 h)showed increased apoptosis.This effect could be further increased by pretreating cells with the autophagy inhibitor 3-MA.±s.n=4.*P<0.05 vs control;△P<0.05 vs AGEs.圖3 自噬對AGEs誘導的內(nèi)皮細胞凋亡的影響
AGEs刺激之后,p-Akt和p-mTOR的表達水平隨著作用時間的延長而下降,并在15或30 min時達最低值(P<0.05),見圖4A。這表明在HUVECs中,AGEs可以抑制PI3K/Akt/mTOR信號通路。200 μg/L IGF-1能夠明顯激活Akt的磷酸化水平(P<0.05),見圖4B。與AGEs處理組相比較,IGF-1提前2 h預處理組能顯著抑制AGEs誘導的內(nèi)皮細胞自噬相關蛋白LC3-II的表達(P<0.05),見圖4C,這表明PI3K/Akt/mTOR信號通路在AGEs誘導HUVECs自噬的過程中起著重要作用。
AGEs是蛋白質的氨基與糖的醛基發(fā)生非酶性糖化氧化反應生成不可逆的終末期產(chǎn)物,糖尿病患者體內(nèi)AGEs水平較正常人明顯升高,AGEs在體內(nèi)的累積與糖尿病血管并發(fā)癥密切相關。有研究表明AGEs通過與其特異性受體(receptor for advanced glycation end products,RAGE)結合,激活核轉錄因子(nuclear factor-kappa B,NF-κB),促進腫瘤壞死因子((tumor necrosis factor-α,TNF-α)分泌增加,誘導內(nèi)皮細胞凋亡[4]。內(nèi)皮細胞凋亡不僅會減弱血管內(nèi)皮預防血脂沉積的屏障作用、局部抗凝和纖溶機制,而且凋亡的內(nèi)皮細胞會產(chǎn)生促凝作用,這些因素會啟動并加速動脈粥樣硬化的發(fā)展[6]。自噬是廣泛存在于真核細胞中的生命現(xiàn)象,即細胞利用溶酶體降解自身受損的細胞器和大分子物質,清除受損細胞器、代謝產(chǎn)物,以維持細胞的穩(wěn)定狀態(tài)。自噬作為一種生理或病理現(xiàn)象存在于動脈粥樣硬化、心衰等多種心血管疾病當中[7-8]。但自噬是否參與了AGEs誘導的多種病理生理過程,目前尚不清楚。我們的研究發(fā)現(xiàn)AGEs能夠誘導內(nèi)皮細胞自噬水平增加,自噬在AGEs誘導內(nèi)皮細胞凋亡中起保護作用,同時我們進一步闡明了AGEs誘導自噬的機制。
低水平的自噬廣泛存在于細胞的正常生理過程中。但在缺氧、炎癥、氧化應激等不良環(huán)境中,細胞可通過增強自噬來清除細胞內(nèi)受損細胞器及代謝產(chǎn)物,對細胞起保護作用,但過度自噬也會損傷細胞,觸發(fā)自噬性細胞死亡機制,促進細胞死亡[9-10]。在疾病的不同發(fā)展階段,自噬的作用也不盡相同。Matsui等[11]發(fā)現(xiàn)在心肌缺血階段,自噬對心肌細胞起保護作用,而在再灌注階段進一步增強的自噬則對心肌細胞有損傷作用。在本實驗中,我們發(fā)現(xiàn)AGEs能夠降低內(nèi)皮細胞活性,增加內(nèi)皮細胞凋亡率。但使用自噬抑制劑3-MA特異性抑制自噬后細胞活性進一步下降,細胞的凋亡率也進一步增加。我們推測在AGEs作用于內(nèi)皮細胞時,自噬作為一種防御機制被誘導發(fā)生,用于清除AGEs引起的一些損傷細胞器和代謝產(chǎn)物,延緩凋亡的發(fā)生,從而發(fā)揮保護作用。這說明AGEs既能誘導內(nèi)皮細胞凋亡,也能誘導其發(fā)生自噬,自噬在AGEs誘導的內(nèi)皮細胞凋亡中起保護作用,它部分對抗了AGEs引起的內(nèi)皮細胞凋亡。
Figure 4.Role of the PI3K/Akt/mTOR signal pathway in AGE-induced HUVECs autophagy.A and B:Western blotting analysis of the Akt/mTOR pathway in HUVECs treated with AGEs.In HUVECs,phosphorylation of Akt and mTOR decreased 30 min and 1 h after treatment with 100 mg/L AGEs.C:insulin-like growth factor 1(IGF-1)was used to activate the Akt pathway.Cells pretreated with IGF -1(200 μg/L)for 2 h showed a notable increase in Akt phosphorylation.D:Western blotting analysis of LC3-II expression in AGE(100 mg/L,6 h)- and IGF-1-treated cells.Pretreatment with IGF-1(200 μg/L)suppressed the AGE-induced expression of LC3-II in HUVECs.±s.n=4.*P<0.05 vs control;△P<0.05 vs AGEs.圖4 PI3K/Akt/mTOR信號通路在AGEs誘導HUVECs自噬過程中的作用
PI3K/Akt/mTOR通路是調(diào)節(jié)自噬的一條重要的信號通路,當Akt被激活后可磷酸化馬鈴薯球蛋白(tuberous sclerosis complex 2,TSC2),后者可增強mTOR活性,從而抑制自噬,故該通路對自噬起負性調(diào)節(jié)作用[12-13]。我們的研究發(fā)現(xiàn),AGEs刺激能使內(nèi)皮細胞Akt和mTOR的磷酸化水平都顯著下降,但使用Akt激活劑IGF-1使Akt的磷酸化水平恢復后,AGEs誘導內(nèi)皮細胞自噬相關蛋白LC3-II的表達量即明顯下降,這說明在HUVECs上,AGEs是通過抑制PI3K/Akt/mTOR信號通路誘導內(nèi)皮細胞自噬水平的升高。mTOR作為調(diào)節(jié)自噬的關鍵靶點,也是臨床上多重種藥物的作用靶點。該機制的闡明為進一步在動物實驗或臨床上干預AGEs誘導內(nèi)皮細胞自噬提供了理論依據(jù)。
綜上所述,通過實驗我們證明了AGEs能夠誘導HUVECs自噬活性增強,自噬在AGEs誘導內(nèi)皮細胞凋亡中起保護作用,能夠對抗內(nèi)皮細胞的凋亡。Akt的激動劑IGF-1能夠抑制該作用,說明PI3K/Akt/mTOR信號通路在AGEs誘導內(nèi)皮細胞自噬的過程中發(fā)揮重要作用。因此,對細胞的自噬水平進行干預可能是治療糖尿病心血管并發(fā)癥新的突破口,但還需要具體的動物學實驗進一步深入研究。
[1]Yamagishi S,Takeuchi M,Inagaki Y,et al.Role of advanced glycation end products(AGEs)and their receptor(RAGE)in the pathogenesis of diabetic microangiopathy[J].Int J Clin Pharmacol Res,2003,23(4):129 -134.
[2]Forbes JM,Yee LT,Thallas V,et al.Advanced glycation end product interventions reduce diabetes-accelerated atherosclerosis[J].Diabetes,2004,53(7):1813 -1823.
[3]Maiuri MC,Criollo A,Kroemer G.Crosstalk between apoptosis and autophagy within the Beclin 1 interactome[J].Embo J,2010,29(3):515 -516.
[4]Schmidt AM,Yan SD,Wautier JL,et al.Activation of receptor for advanced glycation end products:a mechanism for chronic vascular dysfunction in diabetic vasculopathy and atherosclerosis[J].Circ Res,1999,84(5):489 -497.
[5]Hou FF,Chertow GM,Kay J,et al.Interaction between beta 2-microglobulin and advanced glycation end products in the development of dialysis related amyloidosis[J].Kidney Int,1997,51(5):1514 -1519.
[6]Choy JC,Granville DJ,Hunt DW,et al.Endothelial cell apoptosis:biochemical characteristics and potential implications for atherosclerosis[J].J Mol Cell Cardiol,2001,33(9):1673-1690.
[7]Takemura G,Miyata S,Kawase Y,et al.Autophagic degeneration and death of cardiomyocytes in heart failure[J].Autophagy,2006,2(3):212 -214.
[8]Martinet W,De Meyer GR.Autophagy in atherosclerosis:a cell survival and death phenomenon with therapeutic Potential[J].Circ Res,2009,104(3):304 - 317.
[9]Nezis IP,Shravage BV,Sagona AP,et al.Autophagy as a trigger for cell death:autophagic degradation of inhibitor of apoptosis dBruce controls DNA fragmentation during late oogenesis in Drosophila[J].Autophagy,2010,6(8):1214-1215.
[10]劉友斌,楊樹森,樊 瑛,等.自噬與心肌缺血/再灌注損傷[J].中國病理生理雜志,2009,25(12):2478-2482.
[11]Matsui Y,Takagi H,Qu X,et al.Distinct roles of autophagy in the heart during ischemia and reperfusion:roles of AMP-activated protein kinase and Beclin 1 in mediating autophagy[J].Circ Res,2007,100(6):914 -922.
[12]Fan QW,Cheng C,Hackett C,et al.Akt and autophagy cooperate to promote survival of drug-resistant in glioma[J].Sci Signal,2010,3(147):ra81.
[13]Qin L,Wang Z,Tao L,et al.ER stress negatively regulates AKT/TSC/mTOR pathway to enhance autophagy[J].Autophagy,2010,6(2):239-247.