王楓謝寧田建偉朱曉全武軍
(1.空軍總醫(yī)院,100142;2.空軍航空醫(yī)學(xué)研究所附屬醫(yī)院,100089;3.空軍工程大學(xué)機(jī)要系,100097)
研究發(fā)現(xiàn),多種動(dòng)物的感覺(jué)系統(tǒng)在發(fā)育的過(guò)程中都有一個(gè)關(guān)鍵時(shí)期,在這個(gè)時(shí)期內(nèi),去除或者改變傳入神經(jīng)沖動(dòng)對(duì)中樞神經(jīng)系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)和功能可以產(chǎn)生極大的影響[1-3]。聽(tīng)覺(jué)剝奪效應(yīng)(auditory deprivation effect)是1996年由15位著名聽(tīng)力學(xué)家組成的Eriksholm工作組討論提出,并定義為由于聲學(xué)信息的減少導(dǎo)致的聽(tīng)覺(jué)功能的逐漸下降[4]。在現(xiàn)實(shí)生活中,越來(lái)越多的耳科醫(yī)生注意到聽(tīng)覺(jué)剝奪對(duì)耳病患者的聽(tīng)覺(jué)產(chǎn)生了不良影響,包括聽(tīng)閾的提高和言語(yǔ)識(shí)別率的降低。大腦發(fā)生聽(tīng)覺(jué)剝奪效應(yīng)后產(chǎn)生的解剖生理學(xué)改變,目前的研究都是通過(guò)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)間接獲得。耳蝸切除是常用的聽(tīng)覺(jué)剝奪動(dòng)物模型的造模方法,因其破壞了耳蝸毛細(xì)胞的完整性,不能通過(guò)聽(tīng)覺(jué)電生理的方法檢測(cè)動(dòng)物的聽(tīng)功能,同時(shí)使得對(duì)聽(tīng)覺(jué)傳導(dǎo)通路的起始部位——螺旋器(Corti器)的研究無(wú)法進(jìn)行。我們選擇幼年動(dòng)物進(jìn)行氣導(dǎo)聽(tīng)覺(jué)剝奪,一方面減少發(fā)育關(guān)鍵期聽(tīng)覺(jué)系統(tǒng)聲音信號(hào)的輸入,另一方面保持耳蝸的正常結(jié)構(gòu),目的在于獲得聽(tīng)覺(jué)剝奪對(duì)聽(tīng)覺(jué)系統(tǒng)中螺旋神經(jīng)節(jié)發(fā)育的影響結(jié)果。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物采用清潔級(jí)SD乳鼠60只,雌雄不限,由第四軍醫(yī)大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供。
1.1.2 試劑 兔抗神經(jīng)元特異性烯醇化酶 (neuronal specific enolase,NSE)多克隆抗體、SABC試劑盒購(gòu)自武漢博士德公司。
1.1.3 儀器 聽(tīng)覺(jué)電生理檢測(cè)儀(Biologic,Traveler Express E,USA)。冰凍切片機(jī)(德國(guó)LEICA CM1850)。
1.2 方法
1.2.1 動(dòng)物分組 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物隨機(jī)分為對(duì)照組和AD(Auditary Deprivation)組。AD組大鼠飼養(yǎng)于密閉隔音室,生后12 d起行耳道填塞至生后42 d;對(duì)照組大鼠正常食水、在正常聲音環(huán)境中飼養(yǎng)。
1.2.2 模型制備 采用文獻(xiàn)[5]方法進(jìn)行耳道填塞(圖1)。
1.2.3 腦干誘發(fā)電位(ABR)檢測(cè) 采用聽(tīng)覺(jué)電生理檢測(cè)儀(Biologic,Traveler Express E,USA)于出生后42 d分別對(duì)對(duì)照組、AD組大鼠進(jìn)行ABR檢測(cè)。
將實(shí)驗(yàn)動(dòng)物以2%戊巴比妥鈉100 mg/kg行腹腔注射麻醉。記錄電極刺入矢狀縫與兩外耳道連線(xiàn)交點(diǎn)頭皮下,參考電極放置在刺激耳后皮下,接地電極放置在大鼠尾根部皮下。交替短聲刺激,聲源距外耳孔1.0 cm,刺激間隔為0.1 ms,濾波帶通為100~2 000 Hz,掃描時(shí)間為10 ms,疊加次數(shù)為512次。大鼠ABR共有5個(gè)波,其中以Ⅱ、Ⅲ波為主,以剛剛出現(xiàn)可以辨認(rèn)的Ⅱ或Ⅲ波為標(biāo)準(zhǔn),記錄ABR聽(tīng)閾值,并分別記錄潛伏期和交替短聲刺激后幅值。測(cè)試在雙層屏蔽室內(nèi)進(jìn)行,環(huán)境噪聲≤40 dB SPL。測(cè)試時(shí)注意對(duì)動(dòng)物保溫。
1.2.4 免疫組織化學(xué)染色
1.2.4.1 冰凍切片標(biāo)本制備 于出生后42 d分別進(jìn)行AD組和對(duì)照組大鼠耳蝸冰凍切片。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物如前法麻醉,4%多聚甲醛心內(nèi)灌流固定,斷頭,取聽(tīng)泡置4%多聚甲醛后固定過(guò)夜。10%EDTA脫鈣,30%蔗糖脫水至沉底,OCT包埋,冰凍切片機(jī)連續(xù)切片,層厚10μm。
1.2.4.2 螺旋神經(jīng)節(jié)NSE染色及神經(jīng)元計(jì)數(shù) 一抗為兔抗NSE多克隆抗體,濃度為1∶300,二抗為生物素標(biāo)記的羊抗兔二抗。DAB顯色,梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹(shù)膠封片。光學(xué)顯微鏡下觀察,照相。陰性對(duì)照以PBS代替一抗。
每張切片選取耳蝸第二轉(zhuǎn)螺旋神經(jīng)節(jié)、隨機(jī)取60個(gè)高倍視野進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差 (x±s)表示,應(yīng)用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,組間差異應(yīng)用t檢驗(yàn),P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 ABR閾值及潛伏期比較 氣導(dǎo)聽(tīng)覺(jué)剝奪至出生后42 d,對(duì)照組及AD組大鼠的ABR閾值分別為 (26.67±3.89)dB SPL和(38.18±5.54)dB SPL,經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析P<0.01,差異有高度統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。對(duì)照組和AD組Ⅰ波到Ⅴ波各波潛伏期統(tǒng)計(jì)結(jié)果P>0.05,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;對(duì)照組和AD組Ⅰ波到Ⅴ波各波幅值統(tǒng)計(jì)結(jié)果Ⅱ波、Ⅲ波、Ⅴ波幅值P<0.05,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(表1~2,圖2~3)。
2.2 兩組大鼠腦干傳導(dǎo)時(shí)間比較 ABR各波中Ⅴ波最為穩(wěn)定,且振幅最高。波Ⅰ~Ⅴ間期也稱(chēng)為腦干傳導(dǎo)時(shí)間或中樞傳遞時(shí)間。AD組與對(duì)照組波Ⅰ~Ⅴ間期比較,對(duì)照組為(3.978±0.435)ms,AD組為(3.629±0.616)ms,P<0.001,差異有高度統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.3 螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元NSE染色神經(jīng)元形態(tài)及計(jì)數(shù)比較對(duì)照組大鼠螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元NSE染色顯示正常神經(jīng)元NSE主要存在于胞漿,胞體著色明顯,核著色略淺淡,胞體排列有一定密度,不能從形態(tài)上區(qū)分兩型神經(jīng)元。胞體發(fā)出的神經(jīng)纖維著色較胞體略淺。AD組大鼠免疫組化顯示神經(jīng)元顯色較對(duì)照組明顯變淺,形態(tài)模糊,排列紊亂,神經(jīng)纖維著色基本正常(圖4)。
神經(jīng)元計(jì)數(shù)結(jié)果對(duì)照組為(10.643±1.104)個(gè)/HP,AD組為(7.883±0.987)個(gè)/HP,兩組比較,P<0.05,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
圖1 SD大鼠氣導(dǎo)聽(tīng)覺(jué)剝奪方法
圖2 ABR各波潛伏期
圖3 ABR各波幅值
圖4 螺旋神經(jīng)節(jié)NSE免疫組織化學(xué)染色
表1 ABR各波潛伏期(m s)(n=30,x±s)
表2 ABR各波幅值(μV)(n=30,x±s)
人們?cè)缫寻l(fā)現(xiàn),改變嗅覺(jué)、視覺(jué)和聽(tīng)覺(jué)系統(tǒng)中感覺(jué)輸入信號(hào)會(huì)影響相應(yīng)系統(tǒng)神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)在形態(tài)和功能上的發(fā)育與成熟[1-3]。有研究證實(shí)聽(tīng)覺(jué)剝奪可以延緩大鼠上外橄欖核(LSO)神經(jīng)元抑制性突觸的發(fā)育。Sanes等發(fā)現(xiàn),破壞出生后1周大鼠的耳蝸將導(dǎo)致與抑制性突觸相關(guān)的、軸索和樹(shù)突正常的形態(tài)學(xué)再變構(gòu)過(guò)程的阻斷[6]。通過(guò)破壞幼年砂鼠單側(cè)耳蝸以阻斷聲輸入則可以阻斷LSO神經(jīng)元抑制性突觸和樹(shù)突的形態(tài)發(fā)育[7]。目前的研究觀察到聽(tīng)覺(jué)剝奪導(dǎo)致耳蝸螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞發(fā)生退行性變,這可能歸因于聲刺激的減少。在完全缺乏聲刺激(耳蝸毀損)較聽(tīng)覺(jué)剝奪對(duì)螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞的影響更為明顯[8]。大鼠生后發(fā)育“關(guān)鍵期”一般認(rèn)為從第12天開(kāi)始,到第30天結(jié)束[9-10],我們選擇在生后12~42 d對(duì)大鼠進(jìn)行聽(tīng)覺(jué)剝奪,目的在于減少發(fā)育關(guān)鍵期聽(tīng)覺(jué)系統(tǒng)聲音信號(hào)的輸入,希望從相反方向證明正常的聲音刺激對(duì)螺旋神經(jīng)節(jié)發(fā)育的促進(jìn)作用。
ABR檢測(cè)結(jié)果顯示,AD組與對(duì)照組比較,聽(tīng)閾值升高約10 dB,ABR波幅降低,P<0.05,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;兩組大鼠ABR各波幅值比較,Ⅱ波、Ⅲ波、Ⅴ波幅值的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,P<0.05。ABR檢測(cè)中,Ⅰ波是辨認(rèn)其他各波的基準(zhǔn),尤為重要。波Ⅴ常是最高的峰,改變給聲重復(fù)率和降低聲強(qiáng),對(duì)波Ⅴ的出現(xiàn)率影響較少,在其他波消失后,波Ⅴ還繼續(xù)存在。而峰間期中尤以Ⅰ~Ⅴ間期最為重要。因此,我們?cè)谟?jì)算了各波的幅值和潛伏期后,對(duì)Ⅰ~Ⅴ間期也進(jìn)行了統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,AD組與對(duì)照組相比,P<0.01,差異顯著。AD組較對(duì)照組Ⅱ波、Ⅲ波、Ⅴ波幅值降低,說(shuō)明其各自來(lái)源部位耳蝸核、上橄欖核、下丘功能受到影響。以上結(jié)果可以證實(shí),氣導(dǎo)聽(tīng)覺(jué)剝奪對(duì)動(dòng)物的聽(tīng)覺(jué)功能造成了損害,進(jìn)而可以推測(cè)其對(duì)聽(tīng)覺(jué)傳導(dǎo)通路的相關(guān)部位產(chǎn)生了不良影響。
烯醇化酶是1934年Lohman和Mayerhof在研究肌肉提取物中磷酸甘油酸向丙酮酸轉(zhuǎn)化的過(guò)程中發(fā)現(xiàn)的。烯醇化酶是糖酵解途徑中的關(guān)鍵酶,普遍存在于生物體的糖酵解代謝中,它既可催化糖酵解過(guò)程中2-磷酸-D-甘油酸(PGA)向磷酸烯醇式丙酮酸(PEP)的轉(zhuǎn)化,又可在糖原合成過(guò)程中催化逆向反應(yīng),即作為磷酸丙酮酸水合酶,使PEP向PGA轉(zhuǎn)化,在細(xì)胞能量代謝中起重要作用[11]。在脊椎動(dòng)物中,烯醇化酶存在3種同工酶:α、β、γ[12]。α、β、γ烯醇化酶分別由3種不同的基因所編碼,所有的烯醇化酶活性形式均為二聚體,即由兩個(gè)亞單位組成,目前已知有5種形式的組合:αα、ββ、γγ、αβ、αγ[13]。神經(jīng)元特異性烯醇化酶(NSE)主要分布于神經(jīng)元和神經(jīng)內(nèi)分泌細(xì)胞的胞漿中。周?chē)窠?jīng)中NSE含量遠(yuǎn)低于腦組織,相差10~100倍。在我們的觀察中,AD組螺旋神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元NSE染色著色變淺,ABR聽(tīng)閾較對(duì)照組明顯提高,這可能是由于神經(jīng)傳入信號(hào)的減少誘導(dǎo)了NSE基因表達(dá)的下調(diào),繼發(fā)細(xì)胞能量代謝障礙,影響神經(jīng)元細(xì)胞內(nèi)正常糖酵解過(guò)程,使三磷酸腺苷減少,干擾神經(jīng)元的正常功能所致。
聽(tīng)覺(jué)的產(chǎn)生和傳導(dǎo)是一個(gè)復(fù)雜的過(guò)程,是聽(tīng)覺(jué)感受器和聽(tīng)覺(jué)傳導(dǎo)通路共同作用產(chǎn)生的結(jié)果,在這個(gè)復(fù)雜的過(guò)程中,很難說(shuō)聽(tīng)覺(jué)剝奪對(duì)聽(tīng)覺(jué)系統(tǒng)發(fā)育關(guān)鍵期的哪個(gè)部位產(chǎn)生了影響,很有可能多個(gè)部位同時(shí)受累,具體的結(jié)果還有待于今后的深入研究。
[1]Rochefort C,Gheusi G,Vincent JD,et al.Enriched odor exposure increases the number of newborn neurons in the adult olfactory bulb and improves odor memory[J].J Neurosci,2002,22(7):2679-2689.
[2]Rittenhouse CD,Shouval HZ,Paradiso MA,et al.Monocular deprivation induces homosynaptic long-term depression in visual cortes [J].Nature,1999,397(6717):347-350.
[3]Di Cristo G,Berardi N,Cancedda L,et al.Requirement of ERK activation for visual cortical plasticity[J].Science,2001,292 (5525):2337-2340.
[4]Arlinger S,Gatehouse S,Bentler RA,et al.Report of the eriksholm workshop on auditory deprivation and acclimation[J].Ear Hear,1996,17(Suppl):87-98.
[5]王楓,王方圓,黑任軼,等.早期氣導(dǎo)聽(tīng)覺(jué)剝奪對(duì)幼鼠聽(tīng)覺(jué)發(fā)育的影響[J].聽(tīng)力學(xué)及言語(yǔ)疾病雜志,2011,19(2):141-143.
[6]Sanes DH,Markowitz S,Bernstein J,et al.The influence of inhibitory afferents on the development of postsynaptic dendritic arbors [J].JComp Neurol,1992,321(4):637-644.
[7]Kakazu Y,Akaike N,Komiyama S,et al.Regulation of in tracellular chloride by cotransporters in developing lateral superior olive neurons[J].JNeurosci,1999,19(8):2843-2851.
[8]Leake PA,Stakhovskaya O,Hradek GT,et al.Factors influencing neurotrophic effects of electrical stimulation in the deafened developing auditory system[J].Hear Res,2008,242(1-2):86-99.
[9]Games KD,Winer JA.Layer V in the rat auditory cortex:projections to the inferior colliculus and cintralateral cortex[J].Hearing Res,1988,34(1):l-25.
[10]Nakahara H,Zhang LL,Merzenich MM.Specialization of primary auditory cortex processing by sound exposure in the“critical period”[J].Proc Natl Acad Sci USA,2004,101(18):7170-7174.
[11]Subramanian A,Miller DM.Structural analysis of alpha-enolase. Mapping the functional domains involved in down-regulation of the c-myc proto-oncogene[J].J Biol Chem,2000,275(8):5958-5965.
[12]Piast M,Kustrzeba-Wojcicka I,Matusiewicz M,et al.Molecular evolution of enolase[J].Scta Biochim Pol,2005,52(2):507-513. [13]Fougerousse F,Edom-Vovard F,Merkulova T,et al.The muscle specific-enolase is an early marker of human myogenesis[J].J Muscle Res Cell Motil,2001,22(6):535-544.