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        siRNA干擾BMI-1基因?qū)Π螂装〦J細(xì)胞增殖的調(diào)控作用及其機(jī)制*

        2011-09-14 06:21:00崔學(xué)江朱定軍韓金利蘇嘉銳謝文練
        中國病理生理雜志 2011年8期
        關(guān)鍵詞:細(xì)胞株膀胱癌空白對照

        崔學(xué)江, 朱定軍, 韓金利, 梁 武, 蘇嘉銳, 謝文練

        (中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院泌尿外科,廣東廣州510120)

        B細(xì)胞特異性莫洛尼鼠白血病病毒插入位點1(B-cell-specific Moloney murine leukemia virus insertion site 1,BMI-1)基因過度表達(dá)可與多種腫瘤細(xì)胞的形成及增殖形成有關(guān)[1]。研究表明在膀胱癌細(xì)胞中BMI-1亦有較高表達(dá),但其促癌作用機(jī)制尚未完全明確。本課題組前期研究表明BMI-1基因在膀胱癌組織中的mRNA及蛋白表達(dá),明顯高于癌旁組織,并且其表達(dá)量隨著腫瘤侵潤深度的增加和分化程度的降低而明顯升高,且與p16INK4a和p14ARF基因在膀胱癌組織及癌旁組織中的mRNA及蛋白表達(dá)量呈負(fù)相關(guān)[2]。本研究旨在進(jìn)一步對膀胱癌EJ細(xì)胞株及膀胱正常移行上皮細(xì)胞中BMI-1、p16INK4a和p14ARFmRNA及蛋白表達(dá)水平比較;同時構(gòu)建siRNA干擾BMI-1基因,檢測其mRNA及蛋白表達(dá)的影響及對下游p16和p14基因mRNA及蛋白水平的調(diào)控作用及對細(xì)胞增殖的影響。

        材料和方法

        1 材料

        膀胱癌EJ細(xì)胞株及膀胱正常移行上皮細(xì)胞株由本實驗室惠贈。DMEM培養(yǎng)基、F12K培養(yǎng)基、胎牛血清和無血清培養(yǎng)基Opti-MEM為Gibco產(chǎn)品;RNAiso和real-time RT-PCR試劑盒購于TaKaRa(大連寶生物工程有限公司);siRNA Oligo由上海吉瑪公司設(shè)計及合成;Lipofectine 2000購自Invitrogen;鼠抗人BMI-1單克隆抗體(05-637)購自Upstate;p16INK4a(sc-468)、p14ARF(sc-8340)購自 Stanta Cruz Biotechnology;β-actin購自Cell Signaling Technology;辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗鼠、羊抗兔IgG購自Multiscience購自聯(lián)科生物公司;化學(xué)發(fā)光試劑盒、PVDF膜購自Millipore。

        2 細(xì)胞培養(yǎng)和siRNA 轉(zhuǎn)染實驗分組

        BMI-1基因(NM:005180)的siRNA 長度為21 nt,序列見表 1。EJ細(xì)胞于含 10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,膀胱正常移行上皮細(xì)胞用f-12k培養(yǎng)基,37℃、5%CO2條件下培養(yǎng),0.125%胰酶消化傳代。5×108/L細(xì)胞種于6孔板,細(xì)胞80%融合時進(jìn)行轉(zhuǎn)染實驗。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 2000用于siRNA轉(zhuǎn)染。

        使用帶綠色熒光的非干擾BMI-1基因的小分子RNA(FAM-nag-siRNA),6孔板培養(yǎng)細(xì)胞,每孔的細(xì)胞密度為6.0×105個,培養(yǎng)基2 mL;使用Lipo 5 μL/well,F(xiàn)AM-nag-siRNA共分以下4個濃度:50 nmol/L、75 nmol/L、100 nmol/L 和 150 nmol/L,得出轉(zhuǎn)染率最佳的siRNA濃度進(jìn)行轉(zhuǎn)染。實驗分為5組:A:空白對照組;B:陰性干擾對照組;C:RNA干擾BMI-1基因12 h組;D:RNA干擾BMI-1基因24 h組;E:RNA干擾BMI-1基因48 h組。取轉(zhuǎn)染率最佳的轉(zhuǎn)染濃度轉(zhuǎn)染12 h、24 h、48 h后提取RNA和轉(zhuǎn)染24 h、48 h、72 h后提取蛋白質(zhì)。

        3 實時定量RT-PCR

        Trizol兩步法提取膀胱正常移行上皮細(xì)胞和EJ細(xì)胞的總RNA,以mRNA為模板,oligo dT為引物,逆轉(zhuǎn)錄成 cDNA,逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)條件為37℃ 15 min,85℃ 5 s。Real-time PCR反應(yīng)條件為:預(yù)變性95℃ 30 s,1個循環(huán);PCR反應(yīng)95℃ 5 s,60℃ 20 s,40個循環(huán);熔解曲線分析95℃ 1 s,65℃ 15 s,95℃ 0 s。LightCycler(Roche Diagnostics)實時定量PCR檢測干擾前后及對照組EJ細(xì)胞和膀胱正常移行上皮細(xì)胞中BMI-1、p16INK4a和p14ARFmRNA的表達(dá)差異。引物序列見表1。

        表1 實時定量RT-PCR及RNAi引物序列Table 1.Sequences of primers for real-time RT-PCR and RNAi

        4 Western blotting檢測

        BMI-1、p16INK4a和p14ARF在EJ細(xì)胞和膀胱正常移行上皮細(xì)胞的表達(dá):按常規(guī)方法提取蛋白質(zhì)并進(jìn)行定量(Bradford法)。6孔板細(xì)胞覆蓋80%后以RIPA緩沖液0.8 mL,冰上裂解30 min,12 000×g離心30 min,取上清液并進(jìn)行蛋白定量。組織及細(xì)胞裂解液每道上樣量25 μg,10%-15%十二烷基硫酸鈉-聚丙稀酰胺凝膠電泳,低電壓轉(zhuǎn)膜過夜。PVDF膜于10%脫脂奶粉封閉4 h,加入抗BMI-1抗體(1∶750)、抗 p16INK4a抗體(1∶250)、抗 p14ARF抗體(1∶250)、抗β-actin抗體(1∶1 000)4℃孵育過夜。TBST漂洗3次,每次10 min,然后加入羊抗鼠及羊抗兔IgG 1∶7 500 1 h,化學(xué)發(fā)光后X光片曝光。

        5 細(xì)胞免疫熒光

        采用雙染法。I抗抗 BMI-1抗體(1∶50),抗p16INK4a(1∶50)、抗 p14ARF(1∶50);熒光Ⅱ抗,CY3-羊抗小鼠 IgG(1∶75),F(xiàn)ITC-羊抗兔 IgG(1∶50)。核染料采用DAPI染核15 min。

        6 生長曲線測定

        細(xì)胞計數(shù)試劑盒-8(cell counting kit-8,CCK-8)檢測轉(zhuǎn)染后細(xì)胞存活情況并繪制生長曲線。

        7 統(tǒng)計學(xué)處理

        結(jié) 果

        1 細(xì)胞免疫熒光結(jié)果

        BMI-1蛋白在膀胱癌EJ 細(xì)胞陽性反應(yīng)為紅色熒光,主要表達(dá)于細(xì)胞核,部分胞漿亦有熒光染色;p16INK4a和p14ARF蛋白均表達(dá)于膀胱癌多種細(xì)胞株細(xì)胞,陽性呈綠色熒光,兩者在細(xì)胞核和細(xì)胞漿中均可見綠色熒光,細(xì)胞核呈藍(lán)光,見圖1。

        Figure 1.Cellular immunofluorescence of BMI-1,p16INK4aand p14ARFin T24 cells(A),EJ cells(B),5637 cells(C)and Tccsup cells(D).BMI-1 displays red.p16INK4a and p14ARFdisplay green(a2 is p16INK4a,b2 is p14ARF).Nuclear displays blue(×400).圖1 BMI-1、p16INK4a和p14ARF蛋白在 EJ細(xì)胞、T24細(xì)胞、5637細(xì)胞和Tccsup細(xì)胞中的表達(dá)

        2 BMI-1、p16INK4a和 p14ARF在人膀胱移行上皮細(xì)胞及EJ細(xì)胞中的mRNA及蛋白表達(dá)水平

        實時定量RT-PCR檢測mRNA水平,BMI-1 mRNA在EJ細(xì)胞中表達(dá)高于正常膀胱移行上皮細(xì)胞,而p16INK4a和p14ARFmRNA在EJ細(xì)胞中低表達(dá),P<0.05,差異顯著;Western blotting檢測蛋白表達(dá)水平,與mRNA表達(dá)基本一致,BMI-1蛋白在EJ細(xì)胞中表達(dá)較正常膀胱移行上皮細(xì)胞中高,p16INK4a和p14ARF蛋白表達(dá)在EJ細(xì)胞中表達(dá)低,見圖2。

        Figure 2.The relative expression levels of BMI-1,p16INK4aand p14ARFin hBTC and EJ cells.±s.n=4.*P<0.05 vs hBTC.hBTC:human bladder transitional epithelium cells.圖2 BMI-1、p16INK4a和p14ARF在EJ細(xì)胞及人膀胱移行上皮細(xì)胞中mRNA和蛋白的相對表達(dá)量

        3 不同siRNA濃度的轉(zhuǎn)染率

        FAM-nag-siRNA分為以下4個濃度:50 nmol/L、75 nmol/L、100 nmol/L 和 150 nmol/L,測得轉(zhuǎn)染率分別為:(67.25±2.97)%、(81.66±0.64)%、(92.55±0.41)%和(91.56±1.39)%,即siRNA濃度為100 nmol/L時轉(zhuǎn)染效率最高,各組比較差異顯著(P<0.05),見圖3。

        Figure 3.Transfection efficiencies of four concentrations of FAM-nag-siRNA(×100).A:50 nmol/L(67.25% ±2.97%);B:75 nmol/L(81.66%±0.64%);C:100 nmol/L(92.55%±0.41%);D:150 nmol/L(91.56%±1.39%);E:transfected EJ cells in white light;F:transfected EJ cells in green light.圖3 4種濃度FAM-nag-siRNA的轉(zhuǎn)染率

        4 轉(zhuǎn)染后EJ細(xì)胞目的基因表達(dá)情況

        實時定量 RT-PCR檢測 BMI-1、p16INK4a和p14ARFmRNA的相對表達(dá)量,結(jié)果發(fā)現(xiàn),siRNA(100 nmol/L)干擾BMI-1后其mRNA相對表達(dá)量在24 h和48 h與空白組相比顯著下降(P<0.05),而p16INK4a和p14ARFmRNA相對表達(dá)量在干擾后12 h、24 h和48 h均比空白組顯著上升(P<0.05),見圖4。

        Western blotting檢測蛋白相對表達(dá)情況發(fā)現(xiàn),siRNA干擾BMI-1后,BMI-1蛋白表達(dá)量下降,并且在72 h時下降最明顯;p16INK4a和p14ARF蛋白量上升,分別于48 h和72 h上升最明顯,見圖5。

        5 CCK-8分析轉(zhuǎn)染后EJ細(xì)胞活力及生長的變化

        干擾后的EJ細(xì)胞與空白對照組、陰性對照組相比,12 h、24 h EJ細(xì)胞存活數(shù)無明顯變化。48 h開始siRNA干擾組(0.450±0.198)、空白對照組(0.810±0.089)和陰性對照組(0.790±0.099)之間的差異顯著(P<0.05)。干擾BMI-1后EJ細(xì)胞在72 h處于生長平臺期,生長速度變緩,見圖6。

        6 EJ細(xì)胞的凋亡情況

        各組EJ細(xì)胞的凋亡率為:空白對照組(5.85±0.31)%,陰性對照組(6.52±0.46)%,干擾48 h后(12.74±0.76)%,干擾72 h后(16.34±0.77)%。空白對照組與陰性對照組比差異不顯著(P>0.05);空白對照組分別與干擾48 h、72 h比,差異均顯著(P<0.01),干擾48 h與72 h比差異顯著(P<0.01),見圖7。

        Figure 4.The mRNA expression of BMI-1,p16INK4aand p14ARF in EJ cells with different treatments.A:BMI-1;B:p16INK4aand p14ARF.NC:normal control;NEG:negative control;12 h:RNAi for 12 h;24 h:RNAi for 24 h;48 h:RNAi for 48 h.±s.n=4.圖4 siRNA干擾BMI-1后不同時點 BMI-1、p16INK4a和p14ARFmRNA的表達(dá)

        Figure 5.The protein levels of BMI-1,p16INK4aand p14ARFin EJ cells with different treatments.±s.n=5.*P<0.05 vs NC.圖5 siRNA干擾BMI-1后不同時點BMI-1、p16INK4a和p14ARF蛋白的表達(dá)

        Figure 6.Growth curves of EJ cells with different treatments.圖6 空白對照組、陰性對照組和RNA干擾BMI-1組的EJ細(xì)胞生長曲線

        討 論

        BMI-1基因被認(rèn)為是一種癌基因,其可與cmyc癌基因協(xié)同作用引起細(xì)胞轉(zhuǎn)化和腫瘤形成。[1,3]。p16INK4a和 p14ARF是重要的抑癌基因,其功能的失活在多種腫瘤的發(fā)生中起重要作用[4,5]。但是在腫瘤細(xì)胞株及正常的膀胱移行上皮細(xì)胞中的比較仍少見報道,并且BMI-1與p16INK4a、p14ARF的調(diào)控機(jī)制仍未明確。本文通過對其表達(dá)及siRNA干擾BMI-1基因后上述基因的表達(dá)及蛋白表達(dá)的變化進(jìn)一步明確其調(diào)控機(jī)制。

        Figure 7.The apoptosis of EJ cells detected by flow cytometry.A:normal control(5.85%±0.31%);B:negative control(6.52%±0.46%);C:RNAi for 48 h(12.74%±0.76%);D:RNAi for 72 h(16.34%±0.77%).± s.n=20.*P <0.05 vs A.圖7 siRNA干擾48 h和72 h后EJ細(xì)胞凋亡情況

        本研究結(jié)果表明:BMI-1 mRNA及蛋白水平在膀胱癌EJ細(xì)胞株中的表達(dá)比膀胱正常移行上皮細(xì)胞的表達(dá)水平明顯高。對于BMI-1的表達(dá),有研究表明在多種腫瘤細(xì)胞中都有高表達(dá),其對造血干細(xì)胞、白血病細(xì)胞的自我更新起重大作用,在乳腺癌、肝癌、胃癌、大腸癌、肺癌、神經(jīng)母細(xì)胞瘤、黑色素瘤等腫瘤,以及膀胱癌組織、膀胱癌T24細(xì)胞株、5637細(xì)胞株中均發(fā)現(xiàn)較高表達(dá)[6-8]。BMI-1基因作為轉(zhuǎn)錄抑制因子,對腫瘤細(xì)胞的周期調(diào)節(jié)起抑制作用,影響細(xì)胞的增殖及凋亡[8]。膀胱癌EJ細(xì)胞株屬于惡性度較高的細(xì)胞株,目前較少研究BMI-1在其中的表達(dá)及調(diào)控機(jī)制。本研究結(jié)果提示在EJ細(xì)胞中,BMI-1的高表達(dá),說明膀胱癌EJ細(xì)胞中BMI-1為其促癌的一個可能的重要靶點。

        對于BMI-1的調(diào)控機(jī)制,Park等[8]研究表明BMI-1可抑制p16INK4a和p14ARF的表達(dá),導(dǎo)致癌基因過度激活和抑癌基因失活而調(diào)節(jié)細(xì)胞的增殖與凋亡,Liu等[9]研究表明BMI-1與多種蛋白如c-Myc等對cyclin D2進(jìn)行調(diào)節(jié)。但亦有研究表明BMI-1調(diào)控下游基因存在PI3K/Akt通路[9]及調(diào)節(jié)端粒酶的活性影響細(xì)胞增殖[10],陳鳳花等[11]研究真核表達(dá)載體pEGFP-BMI-1轉(zhuǎn)染宮頸癌細(xì)胞系HeLa,顯著下調(diào) p16INK4a、HOXA9和 HOXC13的表達(dá),而hTERT和HOXB4無明顯影響。在膀胱癌EJ細(xì)胞中,仍未有明確的研究表明BMI-1的調(diào)控機(jī)制。

        本研究結(jié)果顯示p16INK4a和p14ARF在EJ細(xì)胞中的表達(dá)較膀胱正常移行上皮細(xì)胞低。以往較多研究使用反義寡核苷酸及shRNA、mircoRNA等抑制BMI-1基因,可以起到抑制作用[12]。本研究使用siRNA干擾BMI-1基因后,BMI-1 mRNA及蛋白水平都有下降,提示使用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染siRNA可以有效沉默BMI-1基因。沉默后p16INK4a和p14ARF升高,說明兩者有相關(guān)性,在調(diào)節(jié)通路上,p16與p14具有某些共同的調(diào)節(jié)位點。沉默BMI-1后EJ細(xì)胞的凋亡增多,提示在EJ細(xì)胞中,BMI-1調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖的機(jī)制主要為調(diào)節(jié)其下游p16INK4a和p14ARF,并且通過抑制p16INK4a和p14ARF的表達(dá)來調(diào)節(jié)細(xì)胞生長。目前研究表明,p16INK4a與調(diào)節(jié) cyclin D/CDK4/6有關(guān),而p14ARF與抑制MDM2作用減弱有關(guān),兩者都有共同通路就是使E2F轉(zhuǎn)錄蛋白增多,細(xì)胞增殖增強(qiáng)[13]。

        Silva等[14]在乳腺癌中的研究表明 BMI-1對INK4a/ARF的轉(zhuǎn)錄抑制是通過其多梳基因家族(PcG)的Mel18和Hpc2蛋白形成多梳組多蛋白抑制復(fù)合物1(PRC1),協(xié)同作用抑制。Dhawan等[15]在對胰島β細(xì)胞的研究中表明,BMI-1與PcG家族中的Ezh2蛋白構(gòu)成PRC1的重要組成部分;Ezh2蛋白導(dǎo)致H3K27三甲基化,增加BMI-1與H2組蛋白、INK4a/ARF位點的結(jié)合力,導(dǎo)致H2組蛋白泛素化,抑制INK4a/ARF轉(zhuǎn)錄。

        綜上所述,本研究進(jìn)一步證實在膀胱癌細(xì)胞EJ細(xì)胞中,BMI-1是一個重要的癌基因位點,其與cmyc協(xié)同作用,調(diào)節(jié)腫瘤細(xì)胞的增殖,可以作為一個檢測及治療的新靶點。同時,使用siRNA干擾技術(shù)可以有效沉默BMI-1基因;在膀胱癌EJ細(xì)胞中存在p16INK4a/p14ARF調(diào)控通路,沉默BMI-1可以通過該通路影響細(xì)胞生長周期及凋亡。

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