陳玉燕,謝杰斌,陳榮,葉樂馳
(溫州醫(yī)學院附屬第二醫(yī)院 肛腸外科,浙江 溫州 325000)
結直腸癌是人類常見的惡性腫瘤之一,近年來其發(fā)病率和造成的死亡人數在亞洲大幅增加,尤其是在我國[1],位居癌癥相關性死因的第四、第五位,其轉移是造成患者死亡的主要原因。越來越多的證據支持核轉錄因子(nuclear factor of kappa,NF-κB)在腫瘤發(fā)生、浸潤和轉移中起重要作用。同時也有研究表明,基質金屬蛋白酶-9(matrix metalloproteinase-9,MMP-9)啟動子區(qū)存在NF-κB結合位點,NF-κB促進腫瘤轉移可能與上調血管生成因子以及MMPs的表達有關[2]。然而,聯合研究NF-κB、MMP-9與結直腸癌的浸潤轉移的關系鮮見報道。本研究采用免疫組織化學SP法檢測47例結直腸癌患者NF-κB及MMP-9蛋白表達情況,探討兩者與結直腸癌臨床病理特征的關系。
1.1 標本來源及分組
1.1.1 結直腸癌組:收集我院2009年5月至2009年10月經手術切除、術中冰凍及術后病理診斷明確的結直腸癌標本47例,所有患者術前均未接受放療、化療或生物治療。其中男34例,女13例;年齡32~84歲,平均年齡62.55歲(中位數63);腫瘤直徑<5 cm者23例,5~10 cm者22例,>10 cm者2例;局部有淋巴結轉移者18例,無轉移者29例;根據UICC結直腸癌TNM分期:0期4例,I期12例,II期14例,III期16例,IV期1例;高分化8例,中分化33例,低分化6例。所有標本經10%甲醛固定,常規(guī)石蠟包埋。
1.1.2 癌旁組:取上述結直腸癌癌旁腸管組織,距離癌灶最邊緣2 cm,常規(guī)病理證實無腫瘤侵犯。
1.1.3 近端正常組:取上述近端正常腸管組織,距離癌灶最邊緣10 cm以上,常規(guī)病理證實無腫瘤侵犯。
1.2 主要試劑 兔抗人NF-κB P65單克隆抗體(北京中杉)及山羊抗人多克隆MMP-9抗體為美國Santa Cruz公司產品,產品編號分別為:sc-372,sc-6840;兩個SP試劑盒:內包含過氧化氫、封閉用山羊及兔血清、生物素標記的二抗、辣根酶標記鏈酶卵白素工作液,為福建邁新產品。檸檬酸鹽緩沖液、磷酸鹽緩沖液(PBS)、DAB顯色劑、中性樹脂、蘇木素防脫玻片為北京中杉公司產品。酒精、二甲苯等購買于溫州金山公司。
1.3 方法 每個蠟塊4μm厚連續(xù)切片,采用免疫組化SP二步法檢測,步驟參照試劑盒說明書操作。用PBS做空白對照,已多次檢測為陽性的標本做陽性對照,抗體稀釋濃度為1:100。
1.4 染色結果判斷 根據陽性表達部位的信號強度和細胞數兩種標準進行綜合評分:①依據陽性細胞染色強度判斷:細胞無染色,記0分;細胞染成淺棕色為弱陽性,記1分;細胞染成棕色且無背景著色,或細胞染成深棕色并有淺棕色背景為中等陽性,記2分;細胞染成深棕色且無背景著色為強陽性,記3分。②依據陽性細胞表達數:無陽性細胞表達,記0分;陽性表達細胞數≤25%,記1分;25%<陽性細胞數<50%,記2分;陽性表達細胞數≥50%,記3分。最后將兩者評分結果相乘,其乘積結果為:①0分者為陰性表達,最終計為0分;②1分和2分者為弱陽性表達,最終計為1分;③3分和4分者為中等陽性表達,最終計為2分;④6分和9分者為強陽性表達,最終計為3分。最終得分為0分和1分者記為陰性,2分和3分者記為陽性。
1.5 圖像分析 先在光學顯微鏡下觀察免疫組化切片表達情況,然后每張切片隨機選擇5個陽性表達區(qū)域,在400倍視野下,采用Olympus相機在同一個光源、光圈、亮度、色彩飽和度、對比度及關閉白平衡條件下進行拍照,將所得圖片輸入計算機,應用美國Media Cybemetics公司生產的Image-ProPlus(IPP 5.1)圖像分析軟件進行圖像分析。由于平均光密度值(mean optical density,MOD)能代表免疫組化圖片的染色強度,能較為準確地反映陽性產物表達相對濃度;而且MOD在胞漿和胞核染色陽性的免疫組化標本中有較好的重復性[3],故采用MOD作為測試指標進行定量分析比較。
1.6 統(tǒng)計學處理方法 采用SPSS16.0統(tǒng)計學軟件。NF-κB和MMP-9蛋白分別在結直腸癌組、癌旁組與近端正常組的陽性表達率比較采用Chi-square Test,所有圖像分析結果以±s表示,各指標與臨床病理特征之間的關系采用t檢驗或方差分析,兩指標表達相關性采用Pearson相關分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 NF-κB和MMP-9蛋白在結直腸癌組織、癌旁組織及近端組織中的表達情況 NF-κB陽性細胞以胞質中出現棕黃色顆粒為主,部分見于胞核中(見圖1a、b),陰性細胞未見棕黃色顆粒(見圖1c);MMP-9陽性細胞為胞質中出現棕黃色顆粒(見圖1d、e)。陰性細胞胞質不染色(見圖1f)。NF-κB蛋白在癌組織的陽性表達率為70.2%,明顯高于癌旁組織的29.8%及近端正常腸組織的8.5%(均P<0.01);MMP-9蛋白在癌組織的陽性表達率為76.6%,明顯高于癌旁組織的38.3%及近端正常組織的17.0%(均P<0.01)。見表1。
表1 各組NF-κB和MMP-9蛋白陽性表達結果
2.2 結直腸癌組織中NF-κB和MMP-9蛋白的表達與臨床病理特征的關系 NF-κB蛋白的陽性表達與結直腸癌細胞分化程度、臨床分期及淋巴結轉移有顯著相關(P值分別為0.032、0.01和0.026),而與性別、年齡、腫瘤大小、部位及浸潤深度均無相關性;MMP-9蛋白陽性表達與淋巴結轉移有顯著相關(P=0.034),而與性別、年齡、腫瘤大小、部位、浸潤深度、細胞分化程度及臨床分期均無相關性。見表2-3。
圖1 NF-κB和MMP-9在各組織中的表達(SP,×400)
表2 NF-κB蛋白表達水平及其與臨床病理特征的關系
2.3 結直腸癌組織中NF-κB和MMP-9蛋白表達的相關性 結直腸癌中NF-κB與MMP-9蛋白表達呈正相關(r=0.489,P<0.01)(見表4)。
NF-κB是一類重要的核轉錄因子,可以調控細胞的增殖、凋亡、惡性轉化及浸潤和轉移[4]。在正常細胞中,NF-κB主要分布于胞漿中,與其抑制物I-κB相結合,使其滯留在胞漿內呈非活性狀態(tài),當受到各種因素刺激時(如細胞因子、炎癥因子等),細胞內的NF-κB被激活成為有活性的二聚體形式,轉位到胞核,與靶基因上的κB序列特異結合,啟動相關基因的轉錄,如炎性因子、黏附分子、化學趨化因子、基質金屬蛋白酶,以及多種增殖和凋亡相關基因,NF-κB活性增強,進而使上述基因表達增加,后者促進細胞的惡性轉化和轉移[5]。大量研究都證明了NF-κB的活化與腫瘤惡性潛能有關,現已發(fā)現多種腫瘤組織中有NF-κB的高表達和高活性現象,可通過調控細胞的增殖、分化、凋亡及惡性轉化影響腫瘤的發(fā)生發(fā)展[6]。然而,NF-κB與腫瘤分化、淋巴結轉移、臨床分期等關系上尚存在爭議。本研究通過對47例大腸癌患者NF-κB蛋白的檢測結果表明:NF-κB蛋白在結直腸癌組織的表達明顯高于癌旁組織及近端正常組織(P<0.01),提示NF-κB可能參與了結直腸癌的發(fā)生發(fā)展,NF-κB的持續(xù)活化和高表達可能通過抑制細胞凋亡,促進細胞異常增殖等途徑參與結直腸癌的發(fā)生和進展。另外,本實驗的NF-κB與結直腸癌臨床病理因素關系的分析結果顯示,NF-κB與結直腸癌細胞分化程度、臨床分期及淋巴結轉移顯著相關(P<0.05),目前認為的原因可能與其能夠促進與腫瘤浸潤、轉移相關的重要因子如MMP-9、血管生成因子等的表達有關。
表3 MMP-9蛋白表達水平及其與臨床病理特征的關系
表4 結直腸癌組織中NF-κB與MMP-9的相關性檢驗(n=47)
基質金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMPs)是一組與鋅結合的主要分解細胞外基質的蛋白酶,與腫瘤的侵襲和轉移關系十分密切,其中MMP-9又稱明膠酶B,其作用主要是降解明膠、彈性纖維、II、IV、V、VII和X型膠原[7]?,F已發(fā)現在多種惡性腫瘤中存在著MMP-9的高表達,在結直腸癌中,基底膜IV型膠原蛋白的缺失與腫瘤組織MMP-9的活化形式的表達增強有關[8]。有研究表明,MMP-9拮抗劑可以抑制結直腸癌細胞的移行和黏附[9],從而提示MMP-9能促進結直腸癌細胞的侵襲和轉移。目前,MMP-9在結直腸癌的定位、表達情況及作用尚無定論,有研究認為MMP-9只在結直腸癌組織中表達,也有研究稱非癌組織中亦有表達,更有研究認為MMP-9在結腸炎相關性腸癌中作為一種腫瘤抑制因子起保護作用[10]。但大多數研究認為MMP-9可以刺激腫瘤生長,在大腸癌的進展和轉移過程中起到關鍵的作用[11]。而我們實驗結果顯示:MMP-9蛋白在結直腸癌組織的陽性表達明顯高于癌旁組織及近端正常組織(P<0.01),且MMP-9蛋白的陽性表達與淋巴結轉移有顯著相關(P<0.05),而與性別、年齡、腫瘤大小、部位、浸潤深度、細胞分化程度及臨床分期均無相關性,可能與觀察例數較少,標本來源不同及染色方法不同等有關。以上結果說明,MMP-9與結直腸癌的淋巴結轉移有著密切的關系,其機制可能跟MMP-9的降解作用使腫瘤細胞周圍的物理屏障破壞、通過對細胞外基質的改建,促進腫瘤新生血管的形成,進而促進腫瘤細胞的淋巴結轉移等有關。
雖然關于NF-κB與MMP-9蛋白在結直腸癌中的表達情況已有所研究,但聯合研究二者與結直腸癌臨床病理特征的關系,探討其是否共同影響結直腸癌的發(fā)生發(fā)展以及浸潤轉移目前還鮮見報道。有研究表明,NF-κB可以調控人類惡性腫瘤中的MMP-9的表達[12],它可以影響MMPs表達而調控轉移,MMP-9啟動子區(qū)存在NF-κB結合位點,EB病毒致瘤蛋白LMP-1活化區(qū)CTAR-1和CTAR-2能活化NF-κB而使MMP-9上調[13]。也有學者研究后推測肌醇六磷酸(IP6)通過調控轉錄因子如NF-κB和AP-1從而調節(jié)MMPs的表達[14]。這些研究都說明了NF-κB可能通過上調MMP-9而促進腫瘤的侵襲和轉移。本實驗研究發(fā)現,結直腸癌中NF-κB與MMP-9表達均較癌旁組織和近端正常組織升高,均與結直腸癌的淋巴轉移有顯著相關,且二者表達呈正相關(r=0.489,P<0.01),提示了NF-κB可能通過上調MMP-9的表達而促進結直腸癌的淋巴轉移,具體機制尚有待進一步研究。
綜上所述,NF-κB和MMP-9的高表達與結直腸癌的淋巴結轉移密切相關,二者在結直腸癌淋巴結轉移中起著重要作用,聯合檢測NF-κB和MMP-9可能為判斷結直腸癌的淋巴結轉移提供新的生物學指標。
[1] Sung JJY,Lau JYW,Young GP,et al.Asia Pacific consensus recommendations for colorectal cancer screening[J].Gut,2008,57(8):1166-1176.
[2] Zheng H,Takahashi H,Murai Y,et al.Expressions of MMP-2,MMP-9 and VEGF are closely linked to growth,invasion,metastasis and angiogenesis of gastric carcinoma[J].Anticancer Res,2006,26(5A):3579-3583.
[3] 于萍,步宏,王華,等.免疫組化結果的圖像分析與人工計數方法的對比研究[J].生物醫(yī)學工程學雜志,2003,20(2):288-290.
[4] Sung B,Pandeg MK,Aggarwal BB.Fisetin,an inhibitor of cyclin-dependent kinase 6, down-regulates nuclear factorkappaB-regulated cell proliferation, antiapoptotic and metastatic gene products through the suppression of TAK-1 and receptor-interacting protein-regulated IkappaBalpha kinase activation [J].Mol Pharmacol,2007,71(6):1703-1714.
[5] Yamamoto Y,Gaynor RB.Therapeutic potential of inhibition of the NF-κB pathway in the treatment of inflammation and cancer[J].Clin Invest,2001,107(2):135-142.
[6] Mayo MW,Baldwin AS.The transcription factor NF-kappaB:control of oncogenesis and cancer therapy resistance[J].Biochim Biophys Acta,2000,1470(2):M55-62.
[7] Vu TH,Werb Z.Matrix metalloproteinases:effectors of development and normal physiology[J].Genes & Dev,2000,14(17):2123-2133.
[8] Zeng ZS,Cahen AM,Guillem J G.Loss of basement membrane type IV callagen is associated with increased expression of metalloproteinases 2 and 9 during humam colorectal tumorigenesis[J].Carcinogenesis,1999,20(5):749-755.
[9] Burg-Roderfeld M, Roderfeld M, Wagner S,et al. MMP-9-hemopexin domain hampers adhesion and migration of colorectal cancer cells[J].Int J Oncol,2007,30(4):985-992.
[10] Garg P,Sarma D,Jeppsson S,et al.Matrix metalloproteinase-9 functions as a tumor suppressor in colitis-associated cancer[J].Cancer Res,2010,70(2):792-801.
[11] Bjorklund M,Koivunen E.Gelatinase-mediated migration and invasion of cancer cells[J].Biochim Biophys Acta,2005,1755(1):37-69.
[12] Wang W,McLeod HL,Cassidy J.Disulfiram-mediated inhibition of NF-kappaB activity enhances cytotoxicity of 5-fluorouracil in human colorectal cancer cell lines[J].Int J Cancer,2003,104(4):504-511.
[13] Takeshita H, Yoshizaki T, Miller WE, et al. Matrix metalloproteinase 9 expression is induced by Epstein-Barr virus latent membrane protein 1 C-terminal activation regions 1 and 2[J].J Virol,1999,73(7):5548-5555.
[14] Kapral M,Wawszczyk J,Jurzak M,et al.Evaluation of the expression of metalloproteinases 2 and 9 and their tissue inhibitors in colon cancer cells treated with phytic acid[J].Acta Pol Pharm,2010,67(6):625-629.