楊慧珍,車 麗,任志強(qiáng),肖建紅
(1.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所,山西太原030032;2.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院現(xiàn)代農(nóng)業(yè)研究中心,山西太原030031)
雜草為害是造成玉米(Zeamays L.)減產(chǎn)的重要因素之一。植物基因工程技術(shù)的誕生和發(fā)展,為玉米抗除草劑育種提供了一條有效的途徑[1]。
李敬娜等[2]以pCambia3301載體為基礎(chǔ),以玉米Ubiquitin(Ubi)啟動(dòng)子、擬南芥葉綠素轉(zhuǎn)運(yùn)肽(Chloroplast transit peptide,Ctp)基因、抗草甘膦Epsps基因?yàn)樵?,?gòu)建了玉米高效雙元表達(dá)載體,通過凍融法將重組質(zhì)粒導(dǎo)入根癌農(nóng)桿菌LBA4404,并通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)化玉米幼胚,獲得了抗草甘膦無抗生素標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因玉米植株。馬云霞等[3]采用根瘤農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefaciens)介導(dǎo)法將抗草甘膦基因(sxglr-11)導(dǎo)入優(yōu)良玉米再生系HiII,獲得抗除草劑轉(zhuǎn)基因植株。關(guān)于抗草丁膦轉(zhuǎn)基因玉米的研究,Sawahel[4]用電擊法將bar基因?qū)肓擞衩子着咧?,獲得了抗除草劑玉米材料。李國(guó)圣等[5]利用基因槍法將als基因?qū)肓擞衩子鷤M織中,獲得了轉(zhuǎn)基因玉米。朱常香等[6]利用基因槍法將bar基因?qū)肓擞衩鬃越幌档挠着咧校@得了抗除草劑轉(zhuǎn)基因玉米自交系。bar基因轉(zhuǎn)化水稻等[7]也獲得了抗除草劑轉(zhuǎn)基因植株。bar基因(bialaphos resistance gene)編碼膦絲菌素乙酰轉(zhuǎn)移酶(phosphinothricin acetyltransferase,PAT),而PAT蛋白能使除草劑草丁膦(glufosinate)脫毒,從而使轉(zhuǎn)bar基因的作物具有抗除草劑的性狀[8]。
用PCR方法檢測(cè)轉(zhuǎn)基因玉米已有不少報(bào)道,包括常規(guī)PCR檢測(cè)[9]、定性PCR檢測(cè)[10]、多重PCR檢測(cè)[11]和實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)[12]等。
本研究通過不同植物總DNA的提取方法,對(duì)轉(zhuǎn)基因材料PCR分析時(shí)設(shè)置內(nèi)源標(biāo)準(zhǔn)基因,探討和分析其PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的大小及序列準(zhǔn)確性,建立一個(gè)快速、有效的轉(zhuǎn)基因玉米及其產(chǎn)品的檢測(cè)方法,旨在為有關(guān)研究提供一定的理論及技術(shù)依據(jù)。
植物材料為花粉介導(dǎo)法導(dǎo)入bar基因(啟動(dòng)子為CaMV35S啟動(dòng)子)到玉米自交系黑玉2號(hào)所獲得的轉(zhuǎn)基因種子,它來自山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究中心;非轉(zhuǎn)基因?qū)φ沼衩鬃越幌岛谟?號(hào)種子由山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院品種資源研究所提供。
CaMV35S啟動(dòng)子引物序列、玉米內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因Zein引物序列和外源基因bar基因引物序列如表1所示。所用引物均由上海生工生物工程公司合成,用TE稀釋為100mmol/L。
表1 引物序列及擴(kuò)增片斷長(zhǎng)度
將玉米種子研磨成細(xì)粉,裝入2mL離心管中,用改良 PEX法、CTAB法[13]和 SDS法[14]分別提取總DNA。
改良PEX提取方法為:每管分別加入PEX提取液 (PEX 12.5mmol/L;Tris-Cl 100mmol/L;NaCl700mmol/L;EDTA 10mmol/L(pH 值 8.0);PVP 6%)500μL,于65℃水浴中保溫20min;然后分別加入400μL Tris飽和酚,400μL氯仿/異戊醇(24∶1,V/V),輕輕顛倒混勻,冰浴放置5min,11 000 r/min離心10min;取上清液至另一2mL離心管中,加入等體積的氯仿/異戊醇,輕輕顛倒混勻,冰浴放置5min,11 000 r/min離心10min;再取上清液至新的2mL離心管中,加入1/10體積的5mol/L乙酸鈉,混勻數(shù)分鐘后,加入9/10體積的冷異丙醇,輕輕顛倒混勻,-20℃放置30min,然后13 000 r/min離心12min;棄上清,加入200μL 70%乙醇,顛倒數(shù)次漂洗沉淀,13 000 r/min離心1min。同樣方法再用70%乙醇漂洗1次;待乙醇蒸發(fā)完后,加入40μL TE緩沖液,溶解DNA。
于0.8%瓊脂糖凝膠電泳觀察提取DNA的效果,用核酸蛋白檢測(cè)儀測(cè)定DNA濃度,并用1×TE將總DNA稀釋至100 ng/μL備用。
陽性對(duì)照DNA按照分子克隆實(shí)驗(yàn)指南[15]進(jìn)行。
建立PCR擴(kuò)增體系:體積20μL,10×緩沖液(含 Mg2+)2.0 μL,dNTPs(2.5mmol/L)1.6 μL,模板DNA 2.0μL,引物各0.8μL,Taq酶(5U/μL)0.4μL,用無菌去離子水定容至20μL。反應(yīng)在PT-100型PCR儀上進(jìn)行。試驗(yàn)設(shè)陰性對(duì)照和空白對(duì)照。
擴(kuò)增反應(yīng)程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性5min,94℃變性1min,退火1min,72℃延伸1min,進(jìn)行35個(gè)循環(huán),循環(huán)結(jié)束后72℃延伸10min,4℃保存。不同引物的退火溫度分別為:CaMV35S啟動(dòng)子55℃,Zein基因55℃,bar基因55℃。反應(yīng)結(jié)束后取PCR擴(kuò)增產(chǎn)物8μL,經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)(含溴化乙錠),用DL 2 000 DNA Marker為參照判斷擴(kuò)增產(chǎn)物的大小,用SYN凝膠成像系統(tǒng)照相。當(dāng)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物大小與預(yù)期結(jié)果一致時(shí),用生工公司生產(chǎn)的回收試劑盒回收DNA,并送生工公司測(cè)序。
首先用SDS,CTAB和改良PEX 3種方法分別提取3份DNA樣品,所提取的DNA經(jīng)0.8%瓊脂糖凝膠電泳分離,SYN成像系統(tǒng)觀察(圖1),發(fā)現(xiàn)這3種方法所提取DNA在凝膠上形成一條整齊的條帶,除CTAB法提取的DNA在前方有少量RNA污染物出現(xiàn)外,其他2種方法提取的DNA質(zhì)量都較高。
經(jīng)核酸蛋白檢測(cè)儀測(cè)定,這3份DNA的質(zhì)量濃度達(dá)到 600~800μg/mL,OD260/OD280值在2.0左右,OD260/OD230值在1.6~1.8之間,均達(dá)到對(duì)DNA進(jìn)行分析的要求(表2)。但綜合這3種植物DNA提取方法,按一個(gè)流程計(jì),PEX方法比SDS方法節(jié)省0.45 h,比CTAB方法節(jié)省2.0 h。
表2 提取DNA在核酸蛋白檢測(cè)儀上的測(cè)定結(jié)果
本著檢測(cè)方法快速、準(zhǔn)確的特點(diǎn),本研究選用PEX法提取其余植物材料DNA,并做進(jìn)一步的PCR分析。
用CaMV35S和bar引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增的結(jié)果如圖2所示。不含模板DNA的空白對(duì)照無擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn),說明PCR操作過程無污染。用Zein引物從轉(zhuǎn)基因和非轉(zhuǎn)基因黑玉2號(hào)均擴(kuò)增出151 bp的產(chǎn)物,這與玉米中Zein片段的大小一致,說明從非轉(zhuǎn)基因?qū)φ沼衩缀娃D(zhuǎn)基因玉米中所提取的DNA能有效地進(jìn)行PCR擴(kuò)增。用CaMV35S和bar引物擴(kuò)增時(shí),產(chǎn)物與預(yù)期大?。?95,552 bp)相似,說明用這2對(duì)引物能從轉(zhuǎn)基因玉米中擴(kuò)增出目標(biāo)片段。
為了驗(yàn)證擴(kuò)增片段是否為目的基因,將用CaMV35S啟動(dòng)子和bar基因引物從轉(zhuǎn)基因植物中擴(kuò)增的片段分別回收測(cè)序,將測(cè)序結(jié)果用Blast進(jìn)行同源性分析。從擴(kuò)增片段與全長(zhǎng)bar基因極高的相似性可以看出,擴(kuò)增片段為CaMV35S啟動(dòng)子和bar基因,用這2對(duì)引物從轉(zhuǎn)基因植物中擴(kuò)增出了目標(biāo)基因,因此,可以用這2對(duì)引物鑒定抗草丁膦轉(zhuǎn)基因玉米。
關(guān)于植物基因工程,轉(zhuǎn)化方法主要有農(nóng)桿菌介導(dǎo)法、基因槍法、非組培法[16]等,所獲得轉(zhuǎn)基因植物及其產(chǎn)品的快速檢測(cè)也有不少報(bào)道,主要是建立適合PCR分析的植物總DNA的快速提取方法[17]。
本研究采用3種方法分別提取植物總DNA,其中,改良PEX法每個(gè)流程比SDS法節(jié)省0.45 h,比CTAB法節(jié)省2.0 h,而且提取的DNA的濃度、純度測(cè)定結(jié)果顯示均可滿足PCR檢測(cè)分析及其他分子檢測(cè)的要求,且PCR檢測(cè)結(jié)果也符合預(yù)期目的。改良PEX提取DNA結(jié)合PCR檢測(cè),無疑是一種快速、有效的轉(zhuǎn)基因玉米及其產(chǎn)品的檢測(cè)方法。
[1]宋小玲,強(qiáng)勝,劉琳莉,等.抗除草劑轉(zhuǎn)基因作物基因流及其安全性評(píng)估方法的探討 [J].農(nóng)村生態(tài)環(huán)境,2005,21(3):74-77.
[2]李敬娜,劉亞,李翔,等.抗草甘膦基因表達(dá)載體的構(gòu)建及對(duì)玉米的遺傳轉(zhuǎn)化[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2010,25(4):44-48.
[3]馬云霞,王秀紅,白建榮,等.農(nóng)桿菌介導(dǎo)的抗草甘膦基因(sxglr-11)的玉米遺傳轉(zhuǎn)化[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(6):13-16.
[4]SawahelW A.Production ofherbicide-resistant transgenicmaize plants using electroporation of seed-derived embryos[J].Plant Molecular Biology Reporter,2002,20(3):303-304.
[5]李國(guó)圣,楊愛芳,張舉仁,等.玉米愈傷組織的遺傳轉(zhuǎn)化及抗除草劑植株再生[J].科學(xué)通報(bào),2000,45(20):2181-2184.
[6]朱常香,宋云枝,張杰道,等.抗除草劑轉(zhuǎn)基因玉米的獲得及遺傳研究[J].山東農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2002,33(2):120-125.
[7]孫海波,李艷萍,鄒美智,等.提高轉(zhuǎn)bar基因雜交粳稻大田純度的試驗(yàn)[J].天津農(nóng)業(yè)科學(xué),2004,10(2):13-16.
[8]劉洪艷,弭曉菊,崔繼哲.bar基因、PAT蛋白和草丁膦的特性與安全性[J].生態(tài)學(xué)雜志,2007,26(6):938-942.
[9]陳穎,陳哲,徐寶梁,等.玉米加工食品中轉(zhuǎn)基因成分的PCR檢測(cè)[J].糧食與飼料工業(yè),2003(2):44-46.
[10]袁磊,趙蕾,孫紅煒,等.轉(zhuǎn)基因玉米的定性PCR檢測(cè)[J].山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2010(11):8-10.
[11]邵碧英,陳文炳.玉米及其制品中轉(zhuǎn)基因成分的單一PCR及多重 PCR 檢測(cè)[J].食品科學(xué),2005,26(9):380-384.
[12]曹際娟,覃文,朱水芳,等.用實(shí)時(shí)熒光PCR方法鑒定轉(zhuǎn)基因玉米 T14/T25[J].遺傳,2004,26(5):689-694.
[13]王關(guān)林,方宏筠.植物基因工程[M].2版.北京:科學(xué)出版社,2002:743-744.
[14]王景雪,孫毅,高武軍.一種簡(jiǎn)便實(shí)用的植物總DNA提取方法[J].山西大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2000,23(3):271-272.
[15]Sambrook J,F(xiàn)ritsch E F,Maniatis T.分子克隆實(shí)驗(yàn)指南[M].2版.北京:科學(xué)出版社,1992:19-24.
[16]任海紅,任小俊,王英,等.非組培遺傳轉(zhuǎn)化法在農(nóng)作物上的應(yīng)用[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(11):85-88.
[17]孟祥棟,馬紅,蓋樹鵬.快速提取用于PCR分析的幾種蔬菜 DNA的方法 [J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),1998,4(3):251-254.