吳延慶,程曉曙,柴俊兵
(南昌大學(xué)第二附屬醫(yī)院心內(nèi)科,江西 南昌 330006)
心血管疾病已成為人類的頭號(hào)殺手,也是人類致殘的主要原因之一。低密度脂蛋白(low-density lipoprotein cholesterol,LDL)被認(rèn)為是(atherosclerosis,AS)發(fā)生發(fā)展的基礎(chǔ)因素,LDL在引發(fā)起始的炎癥反應(yīng)直至血栓形成的過程中都起到了至關(guān)重要的作用,LDL的水平越高,冠心病的危險(xiǎn)性就越大。降低LDL能夠阻止或延緩AS進(jìn)展。
血小板在機(jī)體內(nèi)起著重要的促凝血作用。以往認(rèn)為血小板本身并不主動(dòng)參與免疫炎癥反應(yīng)。近年來發(fā)現(xiàn)血小板表面含有不同結(jié)構(gòu)和功能的糖蛋白受體和相應(yīng)的配體,在血小板不同的狀態(tài),膜上可表達(dá)不同的受體蛋白,血小板一旦被活化,表面就會(huì)出現(xiàn)許多新的標(biāo)志物和促進(jìn)許多標(biāo)志物表達(dá)增加,其中一些標(biāo)志物如整合素 αIIbβ3(PAC-1)、CD40L、P-選擇素等與血小板參與免疫炎癥反應(yīng)密切相關(guān)。我們稱之為血小板免疫活化。有學(xué)者在研究白細(xì)胞與血小板相互作用時(shí)發(fā)現(xiàn),血小板微粒可與中性粒細(xì)胞結(jié)合,并可在2個(gè)中性粒細(xì)胞之間充當(dāng)連接體,使中性粒細(xì)胞連接成串珠狀。連接黏附分子(junctional adhesion molecules,JAMs)作為免疫球蛋白超家族中的一員,參與了許多免疫炎癥反應(yīng)過程,也被發(fā)現(xiàn)在血小板膜表面表達(dá)。血小板通過JAMs與白細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞結(jié)合后,可使它們激活并募集中性粒細(xì)胞、單核細(xì)胞等炎癥細(xì)胞聚集,促進(jìn)炎癥反應(yīng)。
血管內(nèi)皮細(xì)胞的損傷或功能障礙很可能就是AS發(fā)生的始動(dòng)環(huán)節(jié)或發(fā)展的推動(dòng)因素。近年來隨著研究的深入,發(fā)現(xiàn)許多內(nèi)皮細(xì)胞的基因表達(dá)與AS的發(fā)生與發(fā)展有關(guān)。如過氧化物酶體增殖物活化受體 α (peroxisome proliferator activated receptor α,PPAR-α)在AS損傷區(qū)有表達(dá)。環(huán)氧合酶(cyclooxygenase,COX-2)也參與了AS的發(fā)展,在AS的損傷區(qū)存在COX-2的表達(dá),多數(shù)研究認(rèn)為COX-2在調(diào)節(jié)AS穩(wěn)定性方面發(fā)揮了重要作用,COX-2在AS早期是致炎和促進(jìn)AS發(fā)生和發(fā)展的。
基于LDL-C在AS發(fā)生、發(fā)展中的作用及存在的爭(zhēng)議,近來隨著有關(guān)血小板在免疫學(xué)和炎癥方面功能的新發(fā)現(xiàn)以及血管內(nèi)皮細(xì)胞上諸多與AS相關(guān)基因的發(fā)現(xiàn)與研究的深入,盡管近來血小板免疫活化改變?cè)谛难芗膊“l(fā)生發(fā)展中有少量研究報(bào)道,但缺乏LDL與免疫活化血小板對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞AS相關(guān)基因表達(dá)的影響及他汀類藥物對(duì)血小板免疫活化功能的直接影響的相關(guān)報(bào)道。因此本研究旨在觀察血小板免疫活化對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞內(nèi)與AS有關(guān)基因PPAR-α、COX-2表達(dá)的影響及LDL對(duì)這一過程的作用。
新鮮機(jī)采去白細(xì)胞血小板由省血液中心提供,人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)購自中南大學(xué)湘雅中心實(shí)驗(yàn)室。
Ⅰ抗羊抗人COX-2抗體、羊抗人PPAR-α抗體購自Santa Cruz,各種Ⅱ抗購自中杉金橋生物(進(jìn)口分裝),Trizol購自Invitrogen,LDL購自Chemicon,0.2 mmol/L ADP購自 Biopool,RT-PCR試劑盒及Random primers購自Promega,蛋白抽提試劑盒購自北京普利萊基因技術(shù)有限公司,PPAR-α活性測(cè)定試劑盒購自Caymen,PGE2ELISA試劑盒購自Amersham,COX-2、PPAR-α及GAPDH引物購自上海生工公司。
從血液中心購取機(jī)采血小板,用白細(xì)胞過濾器進(jìn)行進(jìn)一步白細(xì)胞過濾,并進(jìn)行血小板計(jì)數(shù)及白細(xì)胞、紅細(xì)胞含量測(cè)定(方法同前),用血小板專用保存袋在血小板振蕩保存機(jī)中22℃水平振蕩條件下保存。實(shí)驗(yàn)前用22℃ PBS液洗滌,22℃、4000×g離心10 min,反復(fù)2次后,調(diào)整細(xì)胞濃度至2×1010cells/L,用 RPMI-1640培養(yǎng)基于37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中短時(shí)間與HUVECs共孵育。
血小板在腺苷二磷酸(adenosine diphosphate,ADP)的作用下激活,血小板激活復(fù)合物1(platelet activating compound 1,PAC -1)和 CD40配體(CD40 ligand,CD40L)的表達(dá)增加,因血小板CD40L廣泛參與了免疫炎癥反應(yīng),稱之為免疫活化,為達(dá)到較多血小板活化數(shù)量,本研究采用了終濃度為5 μmol/L ADP活化血小板。
5.1 血小板與HUVECs共孵育后血小板回收及計(jì)數(shù) 血小板與HUVECs共孵育后,在超凈臺(tái)中首先用吸管小心吸盡懸浮細(xì)胞和血小板,然后再用22℃的PBS液輕輕沖洗細(xì)胞培養(yǎng)孔,并進(jìn)一步回收其中的血小板,反復(fù)3次,最后進(jìn)行貼壁 HUVECs的回收、RNA及蛋白的提取。并進(jìn)行回收血小板的計(jì)數(shù),計(jì)算血小板的回收率。
5.2 引物序列 根據(jù) NCBI中的GenBank查得人COX -2、PPAR - α、CD40、GAPDH 基因序列,再用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)、篩選,其具體序列見表1。
表1 各基因PCR引物序列及Tm值Table1.PCR primer sequence and it's Tm value
5.3 HUVECs COX-2及PPAR-α基因表達(dá)測(cè)定采用RT-PCR法,主要步驟包括總RNA提取,總RNA的質(zhì)量、濃度檢測(cè)與標(biāo)化,RNA逆轉(zhuǎn)錄,聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR),瓊脂糖凝膠電泳,擴(kuò)增產(chǎn)物相對(duì)定量及統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。
5.4 Western blotting法測(cè)定人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞COX-2、PPAR-α蛋白表達(dá) 包括蛋白提取、蛋白濃度測(cè)定及標(biāo)化、制備SDS-PAGE變性凝膠、蛋白電泳-轉(zhuǎn)膜、免疫印跡顯影、產(chǎn)物定量及統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。
5.5 ELISA法檢測(cè)培養(yǎng)液中PGE2的濃度 參照試劑盒說明書進(jìn)行。
5.6 內(nèi)皮細(xì)胞PPAR-α活性測(cè)定 包括人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞核蛋白抽提純化及活性測(cè)定,具體方法參照PPAR-α活性測(cè)定試劑盒說明書。
各組血小板與HUVECs共孵育后血小板回收率為(93.4±1.6)%,可計(jì)算推出血小板與HUVECs穩(wěn)定結(jié)合的量小于加入血小板量的10%,與內(nèi)皮細(xì)胞結(jié)合的血小板絕對(duì)量小于1×106。血小板為無核細(xì)胞,血小板內(nèi)mRNA及蛋白的表達(dá)量為有核細(xì)胞的1/12500左右。
在用終濃度為5 μmol/L ADP活化的2×106個(gè)血小板中未檢測(cè)到COX-2及PPAR-α mRNA及蛋白的表達(dá)。
正常HUVECs有極少量COX-2 mRNA表達(dá),血小板對(duì)照組和ADP對(duì)照組HUVECs COX-2 mRNA的表達(dá)與對(duì)照組相比無明顯變化(0.68±0.21 vs 0.53±0.17,0.77±0.25 vs 0.53±0.17,均 P >0.05),LDL對(duì)照組HUVECs COX-2 mRNA的表達(dá)似乎有增加,但無顯著差異(0.83±0.26 vs 0.53±0.17,P>0.05);血小板活化組 HUVECs COX-2 mRNA的表達(dá)較ADP對(duì)照組及血小板對(duì)照組明顯升高(1.49±0.27 vs 0.53±0.17,1.49±0.27 vs 0.68±0.21,均P<0.01),血小板活化+LDL組HUVECs COX-2 mRNA的表達(dá)較血小板活化組明顯升高(1.79±0.20 vs 1.49±0.27,P <0.05),見圖1A、B。
正常HUVECs細(xì)胞有極少量PPAR-α mRNA的表達(dá),血小板對(duì)照組、ADP對(duì)照組和LDL對(duì)照組HUVECs PPAR-α mRNA的表達(dá)與對(duì)照組相比均無明顯變化(1.17±0.16 vs 1.13±0.17,1.19±0.19 vs 1.13±0.17和1.12±0.14 vs 1.13±0.17,均P>0.05);血小板活化組HUVECs PPAR-α mRNA的表達(dá)較ADP對(duì)照組及血小板對(duì)照組明顯升高(1.45±0.21 vs 1.19±0.19,1.45±0.21 vs 1.17±0.16,均P<0.01);血小板活化 +LDL組HUVECs PPAR-α mRNA的表達(dá)較血小板活化組明顯升高(1.74±0.23 vs 1.45 ±0.21),P <0.05,見圖1A、C。
正常培養(yǎng)的HUVECs有極少量COX-2蛋白的表達(dá),血小板對(duì)照組、ADP對(duì)照組和LDL對(duì)照組HUVECs COX-2蛋白的表達(dá)與對(duì)照組相比均無明顯差異(0.700±0.073 vs 0.570±0.067,0.710±0.072 vs 0.570±0.067和0.580±0.070 vs 0.570±0.067,均P>0.05);血小板活化組HUVECs COX-2蛋白表達(dá)較血小板對(duì)照組及ADP對(duì)照組明顯升高(1.600±0.145 vs 0.700±0.073,1.600±0.145 vs 0.710±0.072,均P<0.01);血小板活化+LDL組HUVECs COX-2蛋白的表達(dá)較血小板活化組升高(1.970±0.153 vs 1.600 ±0.145,P <0.05),見圖2A、B。
Figure1.Effects of immune-activated platelet and LDL on COX-2 and PPAR-α mRNA expression in HUVECs..n=6.**P<0.01 vs control group;#P<0.05 vs ADP+coincubation group.A:COX -2,PPAR-α and GAPDH mRNA of HUVECs by RTPCR;B:statistical data of HUVECs COX-2 mRNA expressed in different groups;C:statistical data of HUVECs PPAR-α mRNA expressed in different groups.D2000:D2000 marker;1:control;2:coincubation of platelets with HUVECs;3:coincubation+ADP;4:coincubation+LDL+ADP;5:LDL+coincubation;6:ADP+HUVECs.圖1 免疫活化血小板對(duì)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞COX-2和PPAR-α mRNA表達(dá)的影響及LDL的作用
Figure2.Effects of immune-activate platelet and LDL on COX-2 and PPAR- α protein expression in HUVECs..n=6.**P <0.01 vs control group;#P <0.05 vs ADP+coincubation group.A:COX-2,PPAR-α and GAPDH protein of HUVECs by Western blotting;B:statistical data of HUVECs COX-2 protein expressed in different groups;C:statistical data of HUVECs PPAR - α protein expressed in different groups.1:control;2:coincubation of platelets with HUVECs;3:coincubation+ADP;4:coincubation+LDL+ADP;5:LDL+coincubation;6:ADP+HUVECs.圖2 免疫活化血小板對(duì)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞COX-2和PPAR-α蛋白表達(dá)的影響及LDL的作用
正常HUVECs亦有少量PPAR-α蛋白的表達(dá),血小板對(duì)照組、ADP對(duì)照組HUVECs PPAR-α蛋白的表達(dá)與對(duì)照組比較無顯著變化(0.960±0.073 vs 0.980±0.082,0.950±0.094 vs 0.980±0.082,均 P>0.05);LDL對(duì)照組HUVECs PPAR-α蛋白表達(dá)與對(duì)照組相比似乎有所增加,但無顯著差異(1.120±0.012 vs 0.980±0.082,P >0.05);血小板活化組HUVECs PPAR-α蛋白表達(dá)較血小板對(duì)照組及ADP對(duì)照組明顯升高(1.630±0.143 vs 0.960±0.073,1.630±0.143 vs 0.950±0.094,均 P <0.01);血小板活化+LDL組HUVECs PPAR-α蛋白的表達(dá)也較血小板活化組升高(1.950±0.157 vs 1.630±0.143,P <0.05),見圖2A、C。
表2 各組HUVECs COX-2活性(PGE2濃度)及PPAR-α結(jié)合活性對(duì)比Table2.Cox-2 activity and PPAR-α binding activity in HUVECs from different groups(.n=6)
表2 各組HUVECs COX-2活性(PGE2濃度)及PPAR-α結(jié)合活性對(duì)比Table2.Cox-2 activity and PPAR-α binding activity in HUVECs from different groups(.n=6)
**P<0.01 vs control;##P <0.01 vs ADP+platelet+HUVECs.
Group PGE2 concentration(ng/L)PPAR-α binding activity Control 21.31 ±2.34 0.56 ±0.14 Platelet+HUVECs 23.73 ±2.53 0.61 ±0.14 ADP+platelet+HUVECs 42.46 ±5.57** 0.73 ±0.18 ADP+LDL+platelet+HUVECs 64.35 ±6.19## 0.76 ±0.17 LDL+platelet+HUVECs 25.74 ±3.12 0.64 ±0.16 ADP+HUVECs 22.26 ±2.27 0.58 ±0.13
COX-2又稱誘導(dǎo)型環(huán)氧合酶,COX-2介導(dǎo)PGs的合成。研究發(fā)現(xiàn)COX-2的高表達(dá)僅局限于AS病變處[1]。刺激內(nèi)皮細(xì)胞、單核/巨噬細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞后均可誘導(dǎo) COX-2的表達(dá)[2],McGeer等[3]發(fā)現(xiàn)COX-2在AS斑塊中的表達(dá)水平比正常動(dòng)脈高4.8倍。Meir等[4]用apoE缺陷型小鼠也得出了類似的結(jié)果。近期一系列研究[3-10]認(rèn)為COX-2對(duì)AS尤其是早期AS的形成起促進(jìn)作用:如COX-2介導(dǎo)的PG產(chǎn)物可以通過多種機(jī)制促進(jìn)AS的進(jìn)程;COX-2抑制劑有抑制AS的作用。選擇性COX-2抑制劑可以抑制血管炎癥,因而可以延緩AS進(jìn)程、增加斑塊穩(wěn)定性從而減少粥樣硬化血栓事件。
PPARα屬核受體家族一員,是一種在脂代謝、炎癥及AS中發(fā)揮重要作用的核受體之一,調(diào)節(jié)多種靶基因的表達(dá)、抑制炎癥、調(diào)節(jié)肝臟的急性期反應(yīng)及血管的炎癥反應(yīng)[11]。如PPARα缺失小鼠肝臟及血管內(nèi)皮細(xì)胞黏附分子1(VCAM-1)及血清淀粉樣蛋白A的表達(dá)水平明顯升高[12,13]。近期研究表明PPAR-α能夠抑制內(nèi)皮細(xì)胞的反應(yīng),PPAR-α激動(dòng)劑能夠抑制炎癥細(xì)胞因子如TNF-α誘導(dǎo)的VCAM-1的轉(zhuǎn)錄表達(dá)[14]。PPAR-α的激活能夠抑制T細(xì)胞產(chǎn)生IFN-γ和IL-2,從而可能對(duì)這些因子的后續(xù)效果產(chǎn)生抑制作用[15,16]。在平滑肌細(xì)胞 PPAR-α通過干預(yù)NF-κB和AP-1途徑抑制IL-1β誘導(dǎo)的COX-2的表達(dá)。
本研究利用血小板與HUVECs共孵育來模擬機(jī)體內(nèi)血小板與血管內(nèi)皮細(xì)胞的相互關(guān)系,利用體外免疫活化的血小板直接刺激內(nèi)皮細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)免疫活化血小板能夠激活HUVECs,促進(jìn)HUVECs COX-2 mRNA及蛋白表達(dá)的增加,而且COX-2活性也隨之明顯升高,表明COX-2基因表達(dá)及活性的增加可能是血小板免疫活化促進(jìn)AS的一個(gè)重要途徑。本實(shí)驗(yàn)中用50 mg/L的LDL直接干預(yù)HUVECs未發(fā)現(xiàn)HUVECs COX-2表達(dá)及活性有明顯的變化,但同等濃度LDL預(yù)干預(yù)能夠明顯促進(jìn)免疫活化血小板刺激HUVECs COX-2的表達(dá)及活性的增加。因此LDL有可能通過對(duì)血小板或HUVECs的增敏作用間接促進(jìn)HUVECs COX-2的表達(dá)及活性的增加,推測(cè)增敏作用可能是LDL促進(jìn)AS的一個(gè)重要方面。
本研究同時(shí)發(fā)現(xiàn)免疫活化血小板亦能夠促進(jìn)PPAR-α mRNA和蛋白的表達(dá),但PPAR-α的活性并沒有明顯增加,也就是說增加PPAR-α的表達(dá)并不能達(dá)到其相應(yīng)調(diào)節(jié)其它基因表達(dá)、抑制炎癥反應(yīng)的作用。本研究推測(cè)免疫活化血小板促進(jìn)HUVECs PPAR-α的表達(dá)可能與其促進(jìn)了HUVECs其它相關(guān)基因表達(dá)后的一種被動(dòng)性、反應(yīng)性的表達(dá)有關(guān),亦或是HUVECs本身對(duì)外界炎癥刺激的一種防御反應(yīng),反應(yīng)性地增加PPAR-α的表達(dá)。當(dāng)然亦還可能是免疫活化血小板有雙向作用,既能通過信號(hào)途徑促進(jìn)HUVECs COX-2的表達(dá),亦能通過相同或其它信號(hào)途徑促進(jìn)HUVECs PPAR-α的表達(dá),無論何種方式或途徑,最終結(jié)果是增加的PPAR-α表達(dá)并不具有相應(yīng)的活性。本研究結(jié)果提示免疫活化血小板可能通過促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞COX-2的表達(dá)及活性的增加參與了AS的形成和發(fā)展,同時(shí)也為臨床用PPAR-α激動(dòng)劑治療AS提供了一定的理論依據(jù)。
[1]Cipollone F,Rocca B,Patrono C.Cyclooxygenase -2 expression and inhibition in atherothrombosis[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(2):246 -255.
[2]Mosheimer BA,Kaneider NC,F(xiàn)eistritzer C,et al.CD40-ligand-dependent induction of COX-2 gene expres-sion in endothelial cells by activated platelets:inhibitory effects of atorvastatin[J].Blood Coagul Fibrinolysis,2005,16(2):105-110.
[3]McGeer PL,McGeer EG,Yasojima K.Expression of COX-1 and COX -2 in atherosclerotic plaques[J].Exp Gerontol,2002,37(7):925- 929.
[4]Meir KS,Leitersdorf E.Atherosclerosis in the apolipoprotein E - deficient mouse:a decade of progress[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(6):1006 -1014.
[5]Rott D,Zhu J,Bumett MS,et al.Effects of MF-tricyclic,a selective cyclooxygenase - 2 inhibitor,on atherosclerotic progression and susceptibility to cytomegalovirus replication in apolipoprotein - E knock out mice[J].J Am Coll Cardiol,2003,41(10):1812 -1819.
[6]Paramo JA,Rodriguez JA,Beloqui O,et al.Monocyte cyclooxygenase-2 activity:a new therapeutic target for atherosclerosis[J].Curr Drug Targets Cardiovasc Haemato Disord,2005,5(4):303-311.
[7]Cipollone F.COX-2 and prostaglandins in atherosclerosis[J].Lupus,2005,14(9):756 -759.
[8]Orbe J,Beloqui O,Rodriguez JA,et al.Protective effect of the G765C COX-2 polymorphism on subclinical atherosclerosis and inflammatory markers in asymptomatic subjects with cardiovascular risk factors[J].Clin Chim Acta,2006,368(1-2):138-143.
[9]Beloqui O,Paramo JA,Orbe J,et al.Monocyte cyclooxygenase-2 overactivity:a new marker of subclinical atherosclerosis in asymptomatic subjects with cardiovascular risk factors[J].Eur Heart J,2005,26(2):153 -158.
[10]Grosser T,F(xiàn)ries S,F(xiàn)itzGerald GA.J Biological basis forthe cardiovascular consequences of COX-2 inhibition:therapeutic challenges and opportunities[J].Clin Invest,2006,116(1):4-15.
[11]王明牛,蔣青松,吳 芹,等.PPAR-α參與高糖高胰島素誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞肥大[J].中國病理生理雜志,2009,25(12):2314 -2318.
[12]Ziouzenkova O,Perrey S,Asatryan L,et al.Lipolysis of triglyceride-rich lipoproteins generates PPAR ligands:evidence for an antiinflammatory role for lipoprotein lipase[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100(5):2730 -2735.
[13]Han CY,Chiba T,Campbell JS,et al.Reciprocal and coordinate regulation of serum amyloid A versus apolipoprotein A-I and paraoxonase-1 by inflammation in murine hepatocytes[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2006,26(8):1806-1813.
[14]Xu X,Otsuki M,Saito H,et al.PPAR alpha and GR differentially down-regulate the expression of nuclear factor-kappa B-responsive genes in vascular endothelial cells[J].Endocrinology,2001,142(8):3332 -3339.
[15]Jones DC,Ding X,Daynes RA.Nuclear receptor peroxisome proliferator-activated receptor alpha(PPAR alpha)is expressed in resting murine lymphocytes.The PPAR alpha in T and B lymphocytes is both transactivation and transrepression competent[J].J Biol Chem,2002,277(9):6838-6845.
[16]Marx N,Kehrle B,Kohlhammer K,et al.PPAR activators as antiinflammatory mediators in human T lymphocytes:implications for atherosclerosis and transplantation- associated arteriosclerosis[J].Circ Res,2002,90(6):703-710.