吳枝娟,翁繩美,王瑞幸,方秋娟,黃自強(qiáng)
(福建醫(yī)科大學(xué)1.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)與病理生理學(xué)系,2.藥學(xué)院藥理學(xué)系,福建福州 350004)
13-甲基肉豆蔻酸(13-methyltetradecanoic acid,13-MTD)是一種末端支鏈飽和脂肪酸,能特異性地殺傷多種腫瘤細(xì)胞并誘導(dǎo)其凋亡,線粒體及其相關(guān)凋亡分子是其重要作用位點(diǎn)[1-5]。二氨基肉豆蔻酸(biaminotetradecanoic acid,D-82)是13-MTD的新型衍生物。D-82在體內(nèi)外具有廣泛的抗腫瘤作用,體外抗腫瘤作用明顯強(qiáng)于13-MTD,體內(nèi)抗腫瘤作用與之相當(dāng)[6]。D-82抗腫瘤作用的機(jī)制尚不明確。以HL-60細(xì)胞為模型,從線粒體凋亡途徑活化的角度探討D-82誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡的作用及相關(guān)機(jī)制。
D-82由福建楊振華851生物科技股份有限公司提供,純度>95%,0.8%吐溫80溶液助溶,配成1.2%溶液(W/V),用無(wú)水乙醇稀釋成6 g·L-1儲(chǔ)備液,-70℃保存。臨用時(shí),以細(xì)胞培養(yǎng)液稀釋成所需濃度,乙醇終濃度不超過(guò)1%,吐溫80終濃度不超過(guò)0.1%。
RPMI 1640培養(yǎng)液購(gòu)自Gibco公司;小牛血清購(gòu)自Hyclone公司;羅丹明123(rhodamine 123)、吖啶橙(acridine orange,AO)及溴乙錠(ethidium bromide,EB)均購(gòu)自Sigma公司;蛋白酶K及RNA酶均購(gòu)自 Amerdsco公司。DNA Mark(Lambda DNA/EcoRI+HindⅢ)購(gòu)自MBI Fermentas公司。胱天蛋白酶3和胱天蛋白酶9比色試劑盒購(gòu)自美國(guó)R&D System公司。考馬斯亮藍(lán)蛋白定量試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所。兔抗bcl-2,bax,細(xì)胞色素c(cytochrome c,Cyt c)和β肌動(dòng)蛋白一抗體購(gòu)自Santa Cruz公司。辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記羊抗兔二抗體購(gòu)自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。硝酸纖維素膜購(gòu)自美國(guó)Amersham公司。ECL發(fā)光試劑盒購(gòu)自北京天根生化科技有限公司
BB5060型二氧化碳培養(yǎng)箱為上海賀利氏產(chǎn)品;Mod 550型全自動(dòng)酶標(biāo)儀,Gel Doc 1000型凝膠成像系統(tǒng)為美國(guó)伯樂(lè)公司產(chǎn)品;熒光倒置顯微鏡為日本歐林巴斯公司產(chǎn)品;FASCalibur流式細(xì)胞儀為美國(guó)BD公司產(chǎn)品。
人早幼粒細(xì)胞白血病細(xì)胞株HL-60購(gòu)自中科院上海細(xì)胞研究所,于含10%小牛血清、100 kU·L-1青霉素、100 mg·L-1鏈霉素的 RPMI 1640培養(yǎng)液,在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。細(xì)胞處理分為正常對(duì)照組、D-82 1.5,3 和6 mg·L-1處理 HL-60 細(xì)胞6 h 組。
對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期HL-60細(xì)胞以5×107L-1密度接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,加入D-82 0(正常對(duì)照),1.5,3.0,4.5 和 6.0 mg·L-1,各組設(shè) 3 個(gè)復(fù)孔,置培養(yǎng)箱共培養(yǎng)6 h。每孔加 0.4%錐蟲(chóng)藍(lán) 100 μl,染色5 min,計(jì)數(shù)各組錐蟲(chóng)藍(lán)拒染活細(xì)胞數(shù)。同樣方法,加入 D-82 6 mg·L-1,培養(yǎng) 6,12 和24 h 后計(jì)數(shù)活細(xì)胞數(shù)。細(xì)胞相對(duì)存活率(%)=(實(shí)驗(yàn)組活細(xì)胞數(shù)/正常對(duì)照組活細(xì)胞數(shù))×100%。
分別收集1.3處理后的各組細(xì)胞1×106,加入4 μl AO/EB染液混勻,滴于載玻片上,封片后在熒光顯微鏡觀察。分類計(jì)數(shù)100個(gè)細(xì)胞,計(jì)算凋亡率。
分別收集1.3處理后的各組細(xì)胞1×106,加50 μl細(xì)胞裂解液和 0.5 g·L-1蛋白酶 K,50℃ 溫育4 h,RNA酶37℃消化2 h,離心取上清。15 μl樣品與2.5 μl上樣緩沖液混和,上樣于以 0.5 ×TBE 緩沖液配制的1.5%瓊脂糖凝膠樣品槽,150 V電泳1.5 h,凝膠成像系統(tǒng)成像。
收集1.3處理后的細(xì)胞1×106,羅丹明123 0.5 mg·L-1避光染色30 min,PBS 洗滌2 次,流式細(xì)胞儀檢測(cè)熒光強(qiáng)度(激發(fā)光波長(zhǎng)488 nm,發(fā)射光波長(zhǎng)534 nm),以平均熒光強(qiáng)度表示線粒體膜電位。
分別收集1.3處理后的各組細(xì)胞2×106,加細(xì)胞裂解液4℃裂解10 min,離心取上清用于測(cè)定胱天蛋白酶活性。考馬斯亮藍(lán)法定量蛋白,取等量蛋白進(jìn)行測(cè)定。按試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,測(cè)定各樣品在波長(zhǎng)405 nm處的吸光度值(A405nm)表示胱天蛋白酶活性。
收集1.3處理后的細(xì)胞,PBS洗滌,加入單去污裂解緩沖液,4℃裂解30 min,離心取上清,即細(xì)胞總蛋白,用于測(cè)定Bcl-2和Bax含量。按文獻(xiàn)[7]的方法,分別提取胞漿部分及線粒體部分蛋白,用于測(cè)定Cyt c含量。考馬斯亮藍(lán)法定量蛋白,各組取等量蛋白上樣SDS-PAGE凝膠。電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉過(guò)夜,一抗、二抗孵育,ECL化學(xué)發(fā)光顯影。檢測(cè)各蛋白條帶積分吸光度(integrated absorbance,IA),同時(shí)以 β肌動(dòng)蛋白作為內(nèi)參照,目標(biāo)蛋白相對(duì)表達(dá)量用目標(biāo)蛋白的IA與β肌動(dòng)蛋白的IA比值表示。
圖1A結(jié)果顯示,D-82抑制HL-60細(xì)胞生長(zhǎng),藥物濃度與HL-60細(xì)胞存活率密切相關(guān),隨著藥物濃度的增加,HL-60細(xì)胞的存活率逐漸降低:D-82 1.5,3 和 6 mg·L-1處理 6 h,細(xì)胞存活率分別為(81 ±11)%,(70 ±9)%和(56±11)%。圖1B顯示D-82的作用時(shí)間與存活率的關(guān)系,D-82 6 mg·L-1作用12和 24 h后,HL-60細(xì)胞的存活率降至(36±7)%和(24±9)%。上述結(jié)果表明D-82對(duì)HL-60細(xì)胞存活有明顯的抑制作用,且對(duì)細(xì)胞存活的抑制作用與藥物濃度和作用時(shí)間呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.938(P <0.01)和0.809(P <0.05)。
圖1 D-82對(duì)HL-60細(xì)胞存活率的影響.A:不同濃度D-82作用6 h HL-60存活率;B:D-82 6 mg·L-1作用不同時(shí)間HL-60的存活率。細(xì)胞相對(duì)存活率(%)=(實(shí)驗(yàn)組活細(xì)胞數(shù)/正常對(duì)照組活細(xì)胞數(shù))×100%.±s,n=3.**P<0.01,與正常對(duì)照組比較.Fig.1 Effects of D-82 on HL-60 cell survival.
AO/EB染色熒光顯微鏡(圖2)顯示,正常對(duì)照組HL-60細(xì)胞呈綠色熒光,罕見(jiàn)凋亡細(xì)胞,凋亡率(2 ±2)%;D-82 1.5 mg·L-1作用 6 h,可見(jiàn)早期凋亡細(xì)胞散在分布,凋亡率(18±4)%;D-82 3 mg·L-1處理6 h,出現(xiàn)晚期凋亡細(xì)胞及壞死細(xì)胞,仍以早期凋亡細(xì)胞為主,凋亡率(40±11)%;D-82 6 mg·L-1處理6 h,出現(xiàn)大量壞死細(xì)胞,同時(shí)可見(jiàn)早期及晚期凋亡細(xì)胞,晚期凋亡細(xì)胞居多,凋亡率(75±11)%。藥物處理組凋亡率與正常對(duì)照組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(n=3,P<0.05)。
圖2 D-82對(duì)細(xì)胞凋亡率的影響 (AO/EB ×400).A:正常對(duì)照;B ~D:分別為D-82 1.5,3和6 mg·L-1處理6 h組。白色箭頭示早期凋亡細(xì)胞;紅色箭頭示晚期凋亡細(xì)胞;藍(lán)色箭頭示壞死細(xì)胞.Fig.2 Effect of D-82 on HL-60 apoptosis(AO/EB ×400).
如圖3所示,正常對(duì)照組僅見(jiàn)一分子量很大的亮帶,是未裂解的 DNA 條帶;D-82 1.5 mg·L-1組,出現(xiàn)長(zhǎng)的“拖帶”;D-82 3及6 mg·L-1D-82處理組可見(jiàn)典型“階梯狀”條帶,呈180~200 bp整數(shù)倍遞增分布,提示DNA在核小體部位被切斷,細(xì)胞發(fā)生凋亡。
圖3 D-82對(duì)HL-60細(xì)胞DNA損傷的影響.M:標(biāo)志;條帶1 ~3:分別為 D-82 1.5,3 和6 mg·L-1處理6 h 組;條帶4:正常對(duì)照.Fig.3 Effect of D-82 on HL-60 cells DNA fragmentation.
正常對(duì)照組平均熒光強(qiáng)度為24±5;D-82 1.5 mg·L-1處理6 h平均熒光強(qiáng)度為23±6,與正常對(duì)照組比較差異不顯著;D-82 3及6 mg·L-1處理后,熒光強(qiáng)度顯著下降分別為20±5及12±4(n=3,P<0.05)(圖4)。提示D-82能引起HL-60細(xì)胞線粒體跨膜電位下降。
圖4 D-82對(duì)HL-60細(xì)胞線粒體跨膜電位的影響.A:正常對(duì)照組;B ~D:分別為 D-82 1.5,3 和6 mg·L-1處理6 h組.Fig.4 Effect of D-82on mitochondrial membrane potential.
與正常對(duì)照組比較,D-82 1.5 mg·L-1處理 HL-60細(xì)胞6 h對(duì)胱天蛋白酶3和胱天蛋白酶9活性影響不大;D-82 3 mg·L-1處理后,胱天蛋白酶3和胱天蛋白酶9活性增加了39%和61%,D-82 6 mg·L-1組胱天蛋白酶3和胱天蛋白酶9活性增加了125%和145%(表 1)。
表1 D-82對(duì)HL-60細(xì)胞胱天蛋白酶3和胱天蛋白酶9活性的影響Tab.1 Effects of D-82 on caspase 3 and caspase 9 activity in HL-60 cells
圖5和表2結(jié)果顯示,與正常對(duì)照組比較,D-82 1.5 mg·L-1可下調(diào)細(xì)胞 Bcl-2 蛋白表達(dá)(P <0.05);D-82 3 和6 mg·L-1組,線粒體 Cyt c和細(xì)胞 Bcl-2 蛋白含量顯著降低,Bax含量明顯升高(P<0.01);D-82 3和6 mg·L-1組,胞漿中 Cyt c 明顯增高(P<0.05),提示 D-82誘導(dǎo) HL-60細(xì)胞線粒體 Cyt c外漏,同時(shí)減少細(xì)胞Bcl-2蛋白含量,增加Bax蛋白表達(dá)。
圖5 Western印跡法檢測(cè)D-82對(duì)胞漿及線粒體細(xì)胞色素c(Cyt c)中細(xì)胞Bcl-2及Bax蛋白含量的影響.條帶1:正常對(duì)照;條帶2 ~4:分別為 D-82 1.5,3 和6 mg·L-1處理6 h組.Fig.5 Effect of D-82 on cytoplasmic and mitochondrial cytochrosome c(Cyt c),Bcl-2 and Bax protein expression of HL-60 cells by Western blotting.
本研究首先考察D-82對(duì)HL-60細(xì)胞存活的影響及誘導(dǎo)凋亡的作用。結(jié)果顯示,D-82作用濃度和時(shí)間與HL-60細(xì)胞存活率明顯相關(guān)。此外HL-60細(xì)胞經(jīng)D-82處理后,出現(xiàn)核染色質(zhì)濃縮、邊緣化和凋亡小體等典型的凋亡形態(tài)學(xué)改變,結(jié)合DNA電泳呈特征性“梯狀”電泳圖譜,表明D-82能誘導(dǎo)HL-60細(xì)胞凋亡,并有隨藥物濃度的增大而增加的趨勢(shì)。
D-82可使HL-60細(xì)胞線粒體跨膜電位降低,Western印跡檢測(cè)結(jié)果顯示,D-82處理后HL-60細(xì)胞線粒體Cyt c含量減少,胞漿中Cyt c增多,說(shuō)明Cyt c線粒體釋放到胞漿,并伴隨胱天蛋白9與胱天蛋白3的活化。綜合以上結(jié)果提示,D-82誘導(dǎo)HL-60細(xì)胞凋亡的可能途徑之一是胱天蛋白依賴的線粒體途徑。D-82通過(guò)某種機(jī)制導(dǎo)致線粒體膜PTP孔道開(kāi)放或線粒體膜損傷導(dǎo)致線粒體跨膜電位降低,使Cyt c從線粒體釋放,依次激活胱天蛋白酶9、胱天蛋白酶3和聚腺苷二磷酸核糖聚合酶等,募集下游眾多的胱天蛋白類,導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[8-10]。
本研究結(jié)果顯示,D-82在活化胱天蛋白依賴的線粒體凋亡途徑的同時(shí),下調(diào)HL-60細(xì)胞抗凋亡蛋白Bcl-2含量,增加促凋亡蛋白Bax表達(dá),使Bax/Bcl-2值增大。
表2 D-82對(duì)胞漿及線粒體細(xì)胞色素c(Cyt c),Bcl-2和Bax蛋白含量的影響Tab.2 Effect of D-82 on cytochrosome c(Cyt c),Bcl-2 and Bax protein expression in mitochondrial of HL-60 cells
有研究表明,促凋亡蛋白Bax表達(dá)增加,形成同源二聚體而活化,觸發(fā)線粒體通透性轉(zhuǎn)變孔道開(kāi)放,誘導(dǎo)線粒體膜電位下降,促使線粒體大量釋放Cyt c,促進(jìn)細(xì)胞凋亡[11]。而典型的抗凋亡蛋白Bcl-2過(guò)表達(dá),則可與Bax形異源二聚體,引起Apaf-1變構(gòu),抑制Cyt c釋放和胱天蛋白酶9和胱天蛋白酶3活化,阻斷線粒體途徑的細(xì)胞凋亡[12-15]。細(xì)胞內(nèi)Bax/Bcl-2值升高,使線粒體膜通透性改變,孔道開(kāi)放,線粒體膜電位降低,Cyt c釋放,同時(shí)激活胱天蛋白酶9和胱天蛋白酶3的活化級(jí)聯(lián),增進(jìn)胱天蛋白依賴的線粒體途徑的活化[16-18]。
本研究結(jié)果表明,D-82可通過(guò)升高HL-60細(xì)胞Bax/Bcl-2值,降低線粒體膜電位,誘發(fā)線粒體Cyt c釋放,激活胱天蛋白9和胱天蛋白3級(jí)聯(lián)反應(yīng),活化調(diào)控胱天蛋白依賴的線粒體途徑誘導(dǎo)HL-60細(xì)胞凋亡,為D-82抗腫瘤應(yīng)用和脂肪酸類抗腫瘤藥物的開(kāi)發(fā)提供理論依據(jù)。
[1] Yang Z,Liu S,Chen X,Chen H,Huang M,Zheng J.Induction of apoptotic cell death and in vivo growth inhibition of human cancer cells by a saturated branched-chain fatty acid,13-methyltetradecanoic acid[J].Cancer Res,2000,60(3):505-509.
[2] 翁繩美,孫建成,黃自強(qiáng).13-甲基肉豆蔻酸抗小鼠宮頸癌U14[J].福建醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2006,40(1):33-34,43.
[3] 黃 健,尹心寶,林天歆,許可慰,黃 海,江 春,等.13-MTD誘導(dǎo)膀胱癌細(xì)胞株T24凋亡的實(shí)驗(yàn)研究[J].中華泌尿外科雜志,2006,27(增2):21-24.
[4] Wongtangtintharn S, Oku H, Iwasaki H, Inafuku M,Toda T,Yanagita T.Incorporation of branched-chain fatty acid into cellular lipids and caspase-independent apoptosis in human breast cancer cell line,SKBR-3[J].Lipids Health Dis,2005,(4):29.
[5] Wongtangtintharn S,Oku H,Iwasaki H,Toda T.Effect of branched-chain fatty acids on fatty acid biosynthesis of human breast cancer cells[J].J Nutr Sci Vitaminol(Tokyo),2004,50(2):137-143.
[6] 吳枝娟,翁繩美,黃自強(qiáng).D-82體內(nèi)外抗腫瘤活性[J].福建醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2004,38(1):49-51.
[7] 毛偉平,趙潔明,石曉娟,許 鋒,鄒曉實(shí),姜 平,等.鎘誘發(fā)HEK293細(xì)胞凋亡的線粒體途徑[J].中國(guó)藥理學(xué)與毒理學(xué)雜志,2005,19(4):305-307.
[8] Allan LA,Clarke PR.Apoptosis and autophagy:regulation of caspase-9 by phosphorylation[J].FEBS J,2009,276(21):6063-6073.
[9] Sharifi AM,Eslami H,Larijani B,Davoodi J.Involvement of caspase-8,-9,and-3 in high glucose-induced apoptosis in PC12 cells[J].Neurosci Lett,2009,459(2):47-51.
[10] Senthil V,Ramadevi S,Venkatakrishnan V,Giridharan P,Lakshmi BS,Vishwakarma RA,et al.Withanolide induces apoptosis in HL-60 leukemia cells via mitochondria mediated cytochrome c release and caspase activation[J].Chem Biol Interact,2007,167(1):19-30.
[11] Knudson CM,Brown NM.Mitochondria potential,bax〃activation,〃 and programmed cell death[J].Methods Mol Biol,2008,414:95-108.
[12] Ren G, Zhao YP, Yang L, Fu CX.Anti-proliferative effect of clitocine from the mushroom Leucopaxillus giganteus on human cervical cancer HeLa cells by inducing apoptosis[J].Cancer Lett,2008,262(2):190-200.
[13] Liu HR,Peng XD,He HB,Wang YH,Li Y,He GX,et al.Antiproliferative activity of the total saponin of Solanum lyratum Thunb.in HeLa cells by inducing apoptosis[J].Pharmazie,2008,63(11):836-842.
[14] Wang Z, Liang R, Huang GS, Piao Y,Zhang YQ,Wang AQ,et al.Glucosamine sulfate-induced apoptosis in chronic myelogenous leukemia K562 cells is associated with translocation of cathepsin D and downregulation of Bcl-xL[J].Apoptosis,2006,11(10):1851-1860.
[15] Lin HI,Lee YJ,Chen BF,Tsai MC,Lu JL,Chou CJ,et al.Involvement of Bcl-2 family,cytochrome c and caspase 3 in induction of apoptosis by beauvericin in human non-small cell lung cancer cells[J].Cancer Lett,2005,230(2):248-259.
[16] Tsai CF,Hsu YW,Chen WK,Ho YC,Lu FJ.Enhanced induction of mitochondrial damage and apoptosis in human leukemia HL-60 cells due to electrolyzed-reduced water and glutathione[J].Biosci Biotechnol Biochem,2009,73(2):280-287.
[17] Peng ZF, Lan LX, Zhao F, Li J,Tan Q,Yin HW,et al.A novel thioredoxin reductase inhibitor inhibits cell growth and induces apoptosis in HL-60 and K562 cells[J].J Zhejiang Univ Sci B,2008,9(1):16-21.
[18] Rubio S, Estévez F, Cabrera J, Reiter RJ,Loro J,Quintana J.Inhibition of proliferation and induction of apoptosis by melatonin in human myeloid HL-60 cells[J].J Pineal Res,2007,42(2):131-138.