李艷蕊 ,李學(xué)伍 ,王 麗,劉 磊,張改平
(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué),甘肅 蘭州 730070;2.河南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)部動物免疫學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南省動物免疫學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南 鄭州 450002)
豬瘟(classical swine fever,CSF)是由豬瘟病毒(classical swine fever virus,CSFV)引起豬的一種以高熱和出血為特征的高度接觸性傳染病,是危害養(yǎng)豬業(yè)的重大傳染病之一,被世界動物衛(wèi)生組織(OIE)列入A類疾病名錄[1],我國也將豬瘟列為一類動物疫病。CSFV是黃病毒科(Flaviviridae)瘟病毒屬(Pestivirus)的成員,其基因組為長約12.3 kb的線狀單股正鏈RNA,含有單一的開放閱讀框架(ORF),編碼3 898個氨基酸殘基,有4種結(jié)構(gòu)蛋白(衣殼蛋白C和囊膜糖蛋白Erns、E1、E2)以及8種非結(jié)構(gòu)蛋白(Npro、p7、NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A 和 NS5B)[2-3]。其中 Erns、E2 是病毒誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生中和抗體的兩個主要保護(hù)性抗原,同時也是病毒吸附進(jìn)入敏感細(xì)胞的必須蛋白。Erns不具有跨膜區(qū),而是以一種未知機(jī)制連接在病毒粒子表面,本身既是包膜結(jié)構(gòu)蛋白,又是一種核苷酸酶[4]。盡管針對Erns的單抗也能中和病毒,但Erns在天然宿主中的體液免疫保護(hù)作用機(jī)制仍不清楚[5-6]。目前,國內(nèi)外完成的對豬瘟病毒的研究主要集中在應(yīng)用不同的載體來表達(dá)E2蛋白作為診斷及免疫[7],而Erns應(yīng)用研究則相對較少。
畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)是目前比較成熟的真核表達(dá)系統(tǒng)之一,本研究通過畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)對CSFV Erns蛋白進(jìn)行體外重組,旨在為研制以此蛋白為診斷抗原的CSFV ELISA定型診斷試劑盒奠定基礎(chǔ)。同時對于研究CSFV的結(jié)構(gòu)與功能也有重要的作用。
E.coli JM109、P.pastoris GS115和 P.pastoris整合型分泌表達(dá)質(zhì)粒pPIC9K由河南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)部動物免疫學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。
酵母完全培養(yǎng)基(YPD)、選擇培養(yǎng)基(MD)、甲醇選擇培養(yǎng)基(MM)、誘導(dǎo)培養(yǎng)基(BMGY)和甲醇誘導(dǎo)培養(yǎng)基(BMMY)按Invitrogen公司說明書配制;Plasmid Miniprep kit和 Agarose Gel DNA Purification Kit Ver.2.0以及各種限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ、NotⅠ、SalⅠ和 T4 DNA 連接酶、Ex taq 酶購自TaKaRa公司;Tryptone、Yeast為OXOID產(chǎn)品;YNB為Solarbio產(chǎn)品;
DL2000 DNA Marker、λ-EcoT14 Idigest Marker、λ-Hind Ⅲdigest Marker、低分子質(zhì)量蛋白質(zhì)Marker購自TaKaRa公司;四甲基氨基甲烷(TEMED)、D-山梨醇等購自Promega公司;過氧化物酶標(biāo)記的二抗等為Sigma公司產(chǎn)品;所用引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
根據(jù)GenBank中登錄的豬瘟Erns基因序列,設(shè)計合成特異性引物,并在5′端加EcoRⅠ位點(diǎn),3′端加 NotⅠ位點(diǎn)。引物序列如下:Erns 5′:5′-GGGGTACCGAGATAAAAGTTAATCCTCCTCAG-3′(引入EcoRⅠ酶切位點(diǎn)及保護(hù)性堿基),Erns 3′:5′-CCCAAGCTTCTATCCATG GACTTTG-3′(引入NotⅠ酶切位點(diǎn)及保護(hù)性堿基);根據(jù)甲醇酵母乙醇氧化酶1(AOX1)基因兩端序列設(shè)計的引物序列如下 :5′AOX1:5′-GACTGGTTCCAATTGACAAGC -3′;3′AOX1:5′-GCAAATGGCATTCTGACATCC-3′。引物由上海生工生物制品公司合成。
以Teasy-Erns質(zhì)粒為模板,PCR反應(yīng)條件如下94℃ 2 min;94℃ 1 min,50℃ 1 min,72℃ 1 min,共30個循環(huán);72℃延伸10min。4℃保存PCR產(chǎn)物,并經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定。從瓊脂糖凝膠中切下目的Erns片段,用Agarose Gel DNA Purification Kit Ver.2.0試劑盒回收。
將Erns基因及pPIC9K質(zhì)粒載體均用EcoRⅠ酶和NotⅠ酶雙切,瓊脂糖電泳,回收酶切片段;將雙切后的Erns基因片段及pPIC9K片段用T4 DNA連接酶進(jìn)行連接;連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)E.coli JM109(AMP+),用含 AMP+的 LB 平板篩選陽性重組子。通過酶切、PCR和測序等方法鑒定陽性克隆,命名為pPIC9K-Erns。
將重組表達(dá)質(zhì)粒pPIC9K-Erns和空質(zhì)粒p PIC9 K 用 SalⅠ酶切線性化,在 1.5 kV、20 μF、400 Ω的條件下將其轉(zhuǎn)化到Pichi apastoris GS115酵母感受態(tài)中,取400μL鋪于MD平板上,28℃培養(yǎng)3 d。挑選生長良好的單菌落接種于2 mL YPD培養(yǎng)過夜后,取新鮮的菌液3μL進(jìn)行PCR[8],所用引物為 5′AOX1:5′-GACTGGTTCCAATTGACAAGC-3′;3′AOX1:5′-GCAAATGGCATTCTGACATCC-3′。
挑取篩選到的重組子單菌落分別接種MD和MM平板,28℃培養(yǎng)3 d。在2種平板上均生長良好的菌落為His+Mut+表型菌落。在MD平板上生長迅速,而在MM平板上生長較緩慢的即為His+Muts表型菌株。
選取PCR鑒定正確的重組菌接種至含10 mL YPD培養(yǎng)基(1%酵母提取物、2%蛋白胨、2%葡萄糖)的試管中,30℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)過夜;次日以1%的比例(V∶V)接種至含100mLBMGY培養(yǎng)基(1.34%YNB、4×10-7生物素、10%甘油、1% 酵母提取物、2%蛋白胨、5%甘油)的500 mL三角瓶中,30℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)約24 h;離心并將菌體重懸于 BMMY 培養(yǎng)基(1.34%YNB、4×10-7生物素、1%酵母提取物、2%蛋白胨、0.5%甲醇)中,28℃,200 r/min振蕩誘導(dǎo)表達(dá)4 d,每隔24 h補(bǔ)加100%甲醇至終濃度為0.5%,按時間段取樣進(jìn)行分析。
將工程酵母菌在BMMY培養(yǎng)基中誘導(dǎo)培養(yǎng)一定時間后,離心分別收集沉淀和上清,并將培養(yǎng)上清用硫酸銨沉淀法初步純化,用2倍上樣緩沖液與沉淀和純化的上清蛋白等量混合進(jìn)行SDS-PAGE試驗(yàn)以分析目的蛋白的表達(dá)。
將SDS-PAGE的電泳產(chǎn)物轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上,用5%脫脂乳封閉。分別用CSFV陽性豬血清、原核表達(dá)Erns蛋白單抗作為一抗,進(jìn)行Western-blot檢測。
PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳,得到約681 bp左右的條帶(圖1)。
圖1 PCR擴(kuò)增Erns基因
將雙酶切后的目的片段和表達(dá)載體片段連接后轉(zhuǎn)化E.coli JM109,在含有AMP+的LB平板上隨機(jī)挑取5個菌落直接進(jìn)行PCR,電泳顯示菌落2、4、5、6有與目的基因相符的條帶,1為陰性對照,說明 2、4、5、6 可能為陽性重組子(圖 2)。
圖2 重組質(zhì)粒特異性引物PCR鑒定
選兩個提取質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定,電泳結(jié)果顯示2有兩個條帶,其一為載體片段(約9 kp左右),其二為與目的基因相符的條帶(681 bp),而1則為假陽性質(zhì)粒(圖3),將構(gòu)建好的重組質(zhì)粒送上海生工生物制品公司測序,結(jié)果證明Erns基因已正確插入pPIC9 K的多克隆位點(diǎn)上。
圖3 重組質(zhì)粒雙酶切鑒定
DNA測序結(jié)果顯示,重組質(zhì)粒pPIC9K-Erns序列和讀碼框架皆正確。pPIC9K-Erns經(jīng)SalⅠ酶切線性化后,轉(zhuǎn)化Pichia p astoris GS115酵母感受態(tài)細(xì)胞,在MD平板上長出19個His+轉(zhuǎn)化子,小量培養(yǎng)后,提取基因組DNA,同時提取空白對照GS115 的基因組,作為模板,以 5′AOX1 和 3′AOX1為引物進(jìn)行PCR,電泳檢測在1 173 bp左右有條帶出現(xiàn),與 Erns基因(681 bp)加載體序列(492 bp)的大?。? 173 bp)相當(dāng),同時以設(shè)計的其自身引物Erns 5′和Erns 3′為引物,得到與目的基因相符條帶(681 bp),表明pPIC9K-Erns已整合進(jìn)酵母染色體中。對陽性菌株用MM和MD培養(yǎng)基鑒定其表型,結(jié)果均為 His+Mut+。
圖4 重組酵母的PCR鑒定
將篩選的轉(zhuǎn)化子分別接種BMGY和BMMY培養(yǎng)基誘導(dǎo)表達(dá)后,將表達(dá)上清透析、濃縮后進(jìn)行SDS-PA GE。結(jié)果顯示,GS115/p PIC9K-Erns轉(zhuǎn)化子3和4的誘導(dǎo)產(chǎn)物在50 kD處出現(xiàn)與預(yù)計的以同源二聚體形式存在的Erns大小相符的條帶(見圖5),而1和2及陰性對照5則沒有這一條帶。
圖5 表達(dá)產(chǎn)物的SDS-PAGE電泳及Western-blot分析
Western-blot結(jié)果顯示(見圖5),重組蛋白Erns可被CSFV多抗血清識別(第6條帶),而陰性對照則不顯色(第7條帶)。證明本試驗(yàn)所得的表達(dá)產(chǎn)物可檢測CSFV的抗體。
表達(dá)系統(tǒng)是基因工程及生物制藥研究和應(yīng)用的重要工具,要求其經(jīng)濟(jì)、高效,并且安全。巴斯德畢赤酵母(Picha pastoris)作為甲醇營養(yǎng)型酵母的一種,能夠在以甲醇作為單一碳源的培養(yǎng)基上生長,既具有原核生物易于培養(yǎng)、繁殖快、便于基因工程操作的特點(diǎn),又具有真核生物的蛋白質(zhì)加工、折疊、翻譯后修飾的優(yōu)點(diǎn),同時其遺傳比較穩(wěn)定、能夠高密度發(fā)酵、蛋白的表達(dá)量高、且易于純化,因此,畢赤酵母現(xiàn)已成為現(xiàn)代分子生物學(xué)研究最重要的工具和模型,是表達(dá)外源基因比較理想的宿主[9-10]。目前已有400多種外源蛋白在畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)中成功表達(dá)[11-12],該系統(tǒng)是目前最成功的外源蛋白表達(dá)系統(tǒng)之一。
豬瘟病毒的結(jié)構(gòu)蛋白為C和包膜糖蛋白Erns、E1、E2。除Erns、E2蛋白外,豬瘟的其他任何結(jié)構(gòu)蛋白均不能產(chǎn)生中和抗體[13]。Erns由227個氨基酸殘基(Glu268-Ala494)組成,以分子質(zhì)量為97 ku的同源二聚體存在。Erns可誘導(dǎo)產(chǎn)生豬瘟的中和抗體,免疫豬可誘導(dǎo)產(chǎn)生對致死量CSFV的保護(hù)性免疫[14]。此外,編碼Erns的核酸比E2保守性更高,因而其不僅可作為防控豬瘟的一種靶蛋白,也可配合E2亞單位疫苗免疫的檢測來區(qū)分自然感染或人工免疫,開發(fā)應(yīng)用前景比較好。余興龍等用大腸埃希菌表達(dá)的CSFV重組E2蛋白為抗原,建立了檢測CSFV抗體的間接EL ISA方法[15]。韓雪清、滿朝來等人均建立了E2蛋白的酵母表達(dá)株,獲得了比較大的表達(dá)產(chǎn)量,并對其表達(dá)條件進(jìn)行了優(yōu)化[16-17]。Erns目前的表達(dá)均集中于原核,其表達(dá)量較小,且不能進(jìn)行后加工,難以進(jìn)行進(jìn)一步分析。
本研究通過構(gòu)建重組質(zhì)粒pPIC9K-Erns,成功轉(zhuǎn)化和篩選到兩株多拷貝的工程酵母菌株,通過甲醇誘導(dǎo)培養(yǎng)分泌表達(dá)的Erns蛋白量很高,并且pPIC9K載體表達(dá)蛋白帶有His標(biāo)簽,為后期的親和層析純化蛋白創(chuàng)造了有利條件。Western-blot分析結(jié)果表明,表達(dá)的Erns蛋白能識別天然豬瘟多克隆抗體,具有生物學(xué)活性,下一步試驗(yàn)將大量誘導(dǎo)表達(dá)Erns蛋白,收集表達(dá)產(chǎn)物,經(jīng)過變性、復(fù)性和純化,以期得到高產(chǎn)量的純化Erns蛋白,進(jìn)一步研究Erns蛋白的功能與結(jié)構(gòu)。
[1] 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所.動物病毒學(xué)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,1999.
[2] Meyers G,Rumenapf T,Thiel H J.Molecular cloning and nucleotide sequence of the genome of hog cholera virus[J].Virology,1989,171:555-567.
[3]Moormann R JM,Warmerdam PA M,Meer B V D,et al.Molecular cloning and nucleotide sequence of hog cholera virus strain Brescia and mapping of the genome region encoding envelope protein E1[J].Virology,1990,177:184-198.
[4] Hulst M M,Panoto F E,Hoekman A,et al.Inactivation of the Rnase activity of glycol-protein E(rns)of Classical swine fever virus results in a cytopathogenic virus[J].JVirol,1998,72(1):151-157.
[5] Stark R,Meyers G,Rumenapf T,et al.Processing of pestivirus polyprotein:cleavage site between autoprotease and nucleocapsid protein of Classical swine fever virus[J].JVirol,1993,67(12):7088-7095.
[6] Windisch JM,Schneider R,Stark R,et al.Rnase of Classical swine fever virus:bioch-emical characterization and inhibition by virus neutralizingmonoclonal antibodies[J].JVirol,1996,70(1):352-358.
[7] 吳健敏,任兆鈞,余興龍,等.豬瘟病毒E2蛋白重組T4噬菌體的構(gòu)建及免疫學(xué)特性[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2004,24(6):2-5.[8] 鄭 敏,金寧一,李 昌,等.口蹄疫病毒3ABC基因截短體在畢赤酵母中的表達(dá)及鑒定 [J].高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報,2008,29(1):104-108.
[9] Freyre FM,Vazquez JE,Ayala M,et al.Very high expression of an anti-carcinoembryonic antigen single chain Fv antibody fragment in yeast Pichia pastoris[J].Journal of Biotechnology,2000,76:157-163.
[10]Janowicz Z A,Melber K,Merckelbach A,et al.simultaneous expression of the Sand L surface antigen of hepatistis B and formation ofmixed particle in methylotrophic yeast Hansenula polymorpha[J].Yeast,1999,7:431-433.
[11]Cereghino J L,Cregg JM.Heterolohous protein express in the methylotrophic yeast Pichia pastoris[J].FEMS Microbiol Rev,2000,24:45-66.
[12]Macauley Patrick S,F(xiàn)azenda M L,McNeil B,et al.Heterologous protein production using the Pichia pastoris expression system[J].Yeast,2005,22:249-270.
[13]Van Riji P A,Bossers A,Wensvoort G,et al.Classical swine fever virus(CSFV)enevelope glycoprotein E2 containg one structural antigenic unit protects pigs from let hal CSFV challenge[J].J Virol,1996,77(11):2337-2745.
[14]高華峰,李富祥,張念祖,等.豬瘟病毒Erns基因的克隆及原核表達(dá)[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2007,28(2):22-24.
[15]余興龍,涂長春,李作生,等.以重組mE2蛋白為抗原建立檢測豬瘟病毒抗體間接EL ISA方法的研究[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報,1999 ,21(3):220-222.
[16]韓雪清,劉湘濤,任芳麗,等.豬瘟病毒E2蛋白在酵母中分泌表達(dá)條件的優(yōu)化[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報,2003,34(6):567-572.
[17]滿朝來,李一經(jīng).豬瘟病毒分離株E2基因的克隆與酵母表達(dá)系統(tǒng)轉(zhuǎn)移載體的構(gòu)建[J].中國獸醫(yī)雜志,2004,40(5):3-5.