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        大麥基因組測(cè)序研究進(jìn)展

        2025-07-21 00:00:00王豪廖乾歡劉廷輝朱博
        關(guān)鍵詞:青稞基因組測(cè)序

        中圖分類號(hào):Q94 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1001-8395(2025)05-0672-11

        doi:10.3969/j.issn.1001-8395.2025.05.007

        大麥的起源.大麥(HordeumvulgareL.)是禾本科大麥屬一年生草本植物,是人類從采集和狩獵轉(zhuǎn)向耕種和畜牧業(yè)最早馴化的最重要的農(nóng)作物之_[1],被稱作舊世界農(nóng)業(yè)的創(chuàng)始作物[2],是繼玉米、水稻和小麥之后的第4大主要谷物[3.考古、歷史和分子研究表明,大約在一萬年前,大麥從最近的野生親緣種(Hordeumvulgaresubsp.Spontane-um)在\"新月沃地\"被馴化[4-5],此后,其種植范圍在溫帶地區(qū)顯著擴(kuò)大,馴化大麥適應(yīng)了當(dāng)?shù)夭煌臍夂驐l件,從而產(chǎn)生了地方品種和現(xiàn)代品種的多樣性.然而,也有研究提出了大麥多系起源的理論,西藏被認(rèn)為是東亞大麥額外的獨(dú)立馴化地,Dai等[6]證實(shí)了西藏野生大麥的存在,表明近東野生大麥和西藏野生大麥之間的分裂發(fā)生在大約276萬年前,并利用RNA測(cè)序技術(shù)和基因組相似性分析對(duì)大麥多系起源進(jìn)行了證實(shí)[7].Wang等[8]基于群體的遺傳多樣性和系統(tǒng)發(fā)育分析等手段,也證明西藏是栽培大麥的起源和馴化中心之一.“西藏野生大麥”在生態(tài)上明顯不同于“新月沃地”的種群,因?yàn)榕c遠(yuǎn)低于 1500m 的西亞地區(qū)相比,它們?cè)谇嗖馗咴0?000~4500m 甚至更高的條件下生存,其所受的環(huán)境脅迫是截然不同的[2.9].然而,也有報(bào)道提出了不同的觀點(diǎn),他們基于深度覆蓋的全基因組和已發(fā)表的總共437個(gè)種質(zhì)的外顯子組捕獲重測(cè)序數(shù)據(jù),表明無殼大麥青稞可能源自東部馴化大麥,并最有可能是巴基斯坦北部、印度,以及 4 500~3 500 年前的尼泊爾,他們認(rèn)為西藏不能作為大麥的起源或馴化中心[1°].目前對(duì)于青稞的起源馴化可能仍然存在爭(zhēng)議.

        大麥的應(yīng)用價(jià)值.如今,大麥?zhǔn)窃S多地區(qū)的重要糧食作物[1],在眾多地區(qū)的糧食安全中扮演著關(guān)鍵角色,亞洲的東西部、北非和東非,大麥依然是當(dāng)?shù)鼐用耧嬍持胁豢苫蛉钡囊徊糠諿12-15].大麥的產(chǎn)量和種植面積均居世界第4位,20世紀(jì)末世界大麥年產(chǎn)量約為1.4億噸,種植面積約為5500萬公頃[16].大麥作為食物的主要優(yōu)勢(shì)在于它對(duì)于健康的潛在益處,大麥已被證明是可溶性和不溶性膳食纖維的良好來源,它所含的 β -葡聚糖和母育酚在降低血液膽固醇和血糖指數(shù)、預(yù)防高血壓以及抗癌方面的功效已被廣泛報(bào)道[17-24].同時(shí),在世界范圍內(nèi),大麥更多地被作為飼料谷物,也用于制麥芽生產(chǎn)酒精飲料,大麥的釀酒歷史非常悠久,其使用最早甚至可追溯至公元前3000年左右,此外,有報(bào)道稱大麥能夠提取出天然抗氧化物質(zhì)[25-29].

        大麥?zhǔn)橇私庾魑飳?duì)氣候變化反應(yīng)的絕佳模型,它從最初被馴化到如今已經(jīng)適應(yīng)了極為廣泛且截然不同的環(huán)境[30-31],它們?cè)谄渌魑餆o法適應(yīng)的地方廣泛存在,無殼大麥青稞甚至是唯一可以在超過4500m 海拔的高原上正常生長(zhǎng)的農(nóng)作物[32].現(xiàn)如今,無論是野生大麥種質(zhì)還是地方品種或者其他大麥物種,都是重要的新等位基因來源.在預(yù)計(jì)的未來氣候?qū)?duì)全球農(nóng)業(yè)生產(chǎn)產(chǎn)生負(fù)面影響的背景下[33],這些資源同廣泛的基因組和分析工具相結(jié)合,探索和捕獲變異,能夠促進(jìn)遺傳多樣性和可遺傳表型之間的聯(lián)系,這些為開發(fā)適合特定環(huán)境的氣候適應(yīng)性作物奠定基礎(chǔ).大麥?zhǔn)亲曰ㄊ诜鄱扼w近交生物,常常被看作理想的麥類基因組模型物種,解析其基因組對(duì)于小麥族進(jìn)化關(guān)系等基因組研究具有重要意義,但是,大麥基因組高占比的重復(fù)區(qū)域,使得拼裝其完整基因組極具挑戰(zhàn).

        測(cè)序技術(shù)發(fā)展概論.測(cè)序技術(shù)的快速發(fā)展促進(jìn)了基因組組裝的進(jìn)步,1977年,Sanger等[34發(fā)明了鏈終止測(cè)序法,即Sanger測(cè)序技術(shù),這一技術(shù)標(biāo)志著基因組測(cè)序技術(shù)的開端.隨后Maxam-Gilbert化學(xué)降解法[35]、基于 Sanger 測(cè)序技術(shù)改進(jìn)的更安全高效的熒光自動(dòng)測(cè)序技術(shù)等技術(shù)相繼問世,被稱為第一代測(cè)序技術(shù).它們存在較多短板,諸如實(shí)驗(yàn)安全和成本較高等問題,但Sanger測(cè)序技術(shù)因其極高的準(zhǔn)確性廣受歡迎,甚至至今仍有應(yīng)用.人類基因組計(jì)劃(humangenomeproject,HGP)所采用的大規(guī)模測(cè)序技術(shù)正是基于Sanger測(cè)序法.為了克服第一代測(cè)序技術(shù)的局限性,測(cè)序技術(shù)開始向著高通量和低成本的方向發(fā)展.第二代測(cè)序技術(shù)應(yīng)運(yùn)而生,包括瑞士Roche公司的454 焦磷酸測(cè)序技術(shù)[36]、美國(guó)Illumina公司的Solexa和HiSeq技術(shù)以及美國(guó)ABI公司的 Solid技術(shù)[37].特點(diǎn)主要包括高通量和短讀長(zhǎng),有效地解決了一代測(cè)序存在的效率低等問題[38].雖然第二代測(cè)序已經(jīng)有了很廣泛的應(yīng)用,但是讀長(zhǎng)問題始終是其主要限制因素,使其在應(yīng)用于基因組測(cè)序時(shí)無法跨過基因組重復(fù)區(qū)域.第三代測(cè)序技術(shù),相較于二代測(cè)序讀長(zhǎng)更長(zhǎng),無需PCR擴(kuò)增,效率更高,尤其適用于復(fù)雜基因組的解析.美國(guó)PacBio公司的單分子實(shí)時(shí)測(cè)序(singlemoleculere-altime,SMRT)技術(shù)、英國(guó)Oxford公司的納米孔光學(xué)測(cè)序技術(shù)(single-molecule nanopore DNA sequen-cing)和HelicosBiosciences公司的單分子測(cè)序技術(shù)(truesinglemolecularsequencing,tSMS)所代表的三代長(zhǎng)讀長(zhǎng)測(cè)序技術(shù),顯著提升了人們獲取基因組序列的全面性與準(zhǔn)確性.同時(shí),在基因組測(cè)序領(lǐng)域,10× Genomics公司的長(zhǎng)距離連鎖測(cè)序技術(shù)、Bio-NanoGenomics公司的基因組光學(xué)圖譜技術(shù),以及高通量染色體構(gòu)象捕獲(Hi-C)技術(shù)為基因組序列的組裝和結(jié)構(gòu)的解析提供了極大的輔助,加之生物信息學(xué)的飛速發(fā)展,各種序列組裝算法的不斷優(yōu)化,促使從人類到微生物、動(dòng)物、植物的基因組測(cè)序領(lǐng)域迎來了革命性的變化.

        2000年12月,第一個(gè)植物參考基因組擬南芥基因組序列的發(fā)表,開啟了植物基因組時(shí)代.在隨后的20余年中,數(shù)百種植物基因組完成了測(cè)序組裝,至今已發(fā)布超過1000個(gè)植物基因組序列[39].同時(shí),很多物種的基因組序列已經(jīng)經(jīng)過了多次的改進(jìn)組裝,達(dá)到了高質(zhì)量的近乎完整的級(jí)別,大大提高了序列的可用性,促進(jìn)了下游諸如功能基因組學(xué)和群體遺傳學(xué)等多種生物學(xué)研究.2006年國(guó)際大麥基因組測(cè)序聯(lián)盟(IBSC)成立,并提出了10年內(nèi)基于BAC物理圖譜至少對(duì)大麥基因空間進(jìn)行測(cè)序的設(shè)想可行性的概述.解析大麥基因組,對(duì)于大麥進(jìn)化、馴化歷史研究、下游功能基因組學(xué)表觀組學(xué)研究、重要代謝途徑機(jī)制的探究、作物環(huán)境適應(yīng)性以及作物改良基因組輔助智慧育種等研究領(lǐng)域具有極大的促進(jìn)作用與應(yīng)用價(jià)值(圖1).本文將對(duì)大麥基因組組裝研究進(jìn)展進(jìn)行綜述.

        1大麥栽培種基因組研究進(jìn)展

        1.1第一個(gè)大麥基因組一—Morex 2009年,國(guó)際大麥基因組測(cè)序聯(lián)盟通過高信息量指紋技術(shù)對(duì)大麥基因組進(jìn)行物理圖譜構(gòu)建,并通過高密度的遺傳圖譜和多種技術(shù)方法,識(shí)別了83381個(gè)攜帶基因的克隆,并通過高密度的遺傳圖譜和多種技術(shù)方法來提高基因組解析的精度,該研究確立了大麥基因組測(cè)序的可行性,并制定了利用下一代測(cè)序技術(shù)來提高測(cè)序質(zhì)量降低測(cè)序成本的策略[40].Mayer等[41]通過新型方法整合染色體排序、下一代測(cè)序等技術(shù),與模式草類植物基因組比較,估計(jì)大麥基因組大約包含32000個(gè)基因,并基于保守共線性,構(gòu)建了一個(gè)多層次的框架,為大麥基因分配了一個(gè)假設(shè)的線性順序,此外,他們還通過分析確定了大麥染色體上基因的過渡區(qū),即中心粒的位置,并據(jù)此對(duì)基因進(jìn)行了排序.Eversole等[42]對(duì)454Roche焦磷酸測(cè)序技術(shù)的可行性進(jìn)行了測(cè)試使用,為復(fù)雜植物基因組的測(cè)序策略鋪平了道路.這些前期研究為大麥基因組的全面測(cè)序提供了重要的理論與實(shí)踐基礎(chǔ).2012年,國(guó)際大麥基因組測(cè)序聯(lián)盟利用全基因鳥槍法(IlluminaPE/MP)Roche454焦磷酸測(cè)序平臺(tái)以及Sanger測(cè)序平臺(tái)對(duì)品種美國(guó)春季六棱啤酒大麥“Morex”進(jìn)行了基因組測(cè)序和組裝,同時(shí)對(duì)其8個(gè)組織進(jìn)行了深度RNA-seq,從頭組裝構(gòu)建了1.9Gb的序列重疊群(Contig序列),由于基因組DNA重復(fù)區(qū)域占比很高,以及測(cè)序技術(shù)和組裝工具的局限性,該組裝生成的376261個(gè)Contigs中,N50長(zhǎng)度僅達(dá)到 1425bp ,作為大麥基因組的“草圖\"序列,該研究發(fā)表在《Nature》上[43],是人類對(duì)大麥基因組的首次拼裝.

        圖1大麥基因組組裝的應(yīng)用Fig.1 Application of barley genome assembly

        2014年,Mascher等[44]通過綜合基因組資源背景下的計(jì)算分析方法,挖掘大麥的廣泛突變體集合,證明了大麥中測(cè)序作圖的可行性.Stein等[45]通過總結(jié)當(dāng)時(shí)可用的基因組序列資源,以及自引入下一代測(cè)序以來大麥基因組測(cè)序所取得的最新進(jìn)展,重點(diǎn)介紹了這些資源和進(jìn)展在大麥研究以及最終作物改良中的應(yīng)用領(lǐng)域,為第一個(gè)大麥參考基因組的構(gòu)建奠定了重要的基礎(chǔ).幾年后,IBSC再次對(duì)大麥基因組進(jìn)行了組裝,Mascher等[46]利用BAC、Il-luminaPE/MP、Roche454焦磷酸測(cè)序獲取單個(gè)BAC克隆的序列組裝,通過物理圖譜、遺傳連鎖圖譜和高度連續(xù)的BioNano光學(xué)圖譜將相鄰BAC進(jìn)行合并排序,構(gòu)建了超級(jí)Scaffolds,最終利用Hi-C技術(shù)和POPSEQ遺傳圖譜進(jìn)行染色體掛載, 94.8% 和 196.7% 的序列被掛載到染色體上,成功構(gòu)建了4.79Gb 的\"Morex\"大麥參考基因組(“Morex\"V1),該基因組ContigN50長(zhǎng)度為 79Kb ,Scaffold N50長(zhǎng)度為 1.9Mb ,BUSCO評(píng)估指數(shù)為 92.5% ,相較于最初的基因組“草圖”序列,質(zhì)量有了很大程度的提升,同時(shí),該研究利用RNA-seq數(shù)據(jù)、參考蛋白預(yù)測(cè)、全長(zhǎng)cDNA序列和PacBioIso-Seq數(shù)據(jù)進(jìn)行自動(dòng)化基因注釋,鑒定到39734個(gè)高置信度基因.該基因組是第一個(gè)真正意義上的大麥參考基因組,是大麥基因組研究的一個(gè)重要里程碑.Beier等[47]對(duì)該基因組的實(shí)驗(yàn)和分析計(jì)算流程進(jìn)行了詳細(xì)的報(bào)道.

        在隨后的幾年里,該基因組經(jīng)過了2次的改進(jìn)組裝.2019年,Monat等[48開發(fā)了一個(gè)開源的計(jì)算流程TRITEX,用于構(gòu)建小麥族作物的染色體級(jí)別基因組序列組裝,他們使用公開可用的四倍體野生埃默小麥和六倍體面包小麥序列數(shù)據(jù)評(píng)估了TRI-TEX的性能.由于大麥“Morex\"V1基因組存在大序列間隙、冗余和局部錯(cuò)誤組裝等問題,因此他們利用該流程結(jié)合IlluminaPE/MP測(cè)序、 10× Genomics以及Hi-C測(cè)序技術(shù),對(duì)“Morex\"V1序列進(jìn)行了改進(jìn)組裝,該組裝獲得了4.65Gb的“Morex”大麥參考基因組(“Morex\"V2),其ScaffoldN50長(zhǎng)度達(dá)到40.2Mb ,注釋獲得32787個(gè)高置信度基因,BUSCO評(píng)估指數(shù)提升至 97.8% ,相較于之前的“Morex\"V1組裝提升 6.4% .2021年,Mascher等[49]進(jìn)一步引入了三代測(cè)序技術(shù)PacBio SMRT長(zhǎng)讀長(zhǎng)測(cè)序、PacBio循環(huán)共識(shí)測(cè)序和Nanopore長(zhǎng)讀長(zhǎng)測(cè)序,同時(shí)結(jié)合了已發(fā)布的高覆蓋率Illumina短讀數(shù)據(jù),組裝了大小為4.50Gb的“Morex”大麥參考基因組(“Morex”V3),該基因組ContigN50長(zhǎng)度提升至69.9Mb ,ScaffoldN50長(zhǎng)度提升至 118.9Mb ,包含7條染色體,共注釋到35827個(gè)高置信度基因,BUS-CO評(píng)估指數(shù)為 98.6% .到此,“Morex”大麥序列的拼裝告一段落,該品種基因組組裝前后歷時(shí)10年,從最初的基因組“草圖”序列到“Morex\"V3基因組的高質(zhì)量組裝,不僅對(duì)大麥基因組學(xué)研究具有重要意義,也為其他作物的基因組研究提供了寶貴的經(jīng)驗(yàn)和方法,為未來的大麥功能基因組學(xué)、育種和遺傳改良提供了更為精確和全面的基因組資源.至今,該基因組仍然是大麥基因組學(xué)下游分析中常用的參考基因組.

        1.2其他品種大麥基因組研究進(jìn)展自“Morex”大麥基因組“草圖”序列完成拼裝過后,其他品種大麥的基因組拼裝也在相繼進(jìn)行.Schreiber等[5對(duì)大麥品種“GoldenPromise”進(jìn)行了測(cè)序組裝,整合了Illumina配對(duì)末端測(cè)序、長(zhǎng)片段配對(duì)測(cè)序、Dove-tailChicago體外鄰近連接庫和染色體構(gòu)象捕獲測(cè)序(Hi-C)數(shù)據(jù),生成了一個(gè)連續(xù)的參考組裝,組裝的基因組大小為 4.13Gb ,ContigN50長(zhǎng)度為22.4Kb,ScaffoldN50長(zhǎng)度為 4.14Mb ,組裝的7條染色體僅包含 2.2% 的間隙,從“Morex\"V2基因組成功轉(zhuǎn)移62605個(gè)基因到“GoldenPromise”參考組裝,BUSCO評(píng)估指數(shù)為 95.2% ,并發(fā)現(xiàn) 73.2% 的組裝區(qū)域?yàn)檗D(zhuǎn)座元件,該組裝是基于大麥“Morex\"V1參考組裝的改進(jìn),并且質(zhì)量與“Morex”V2相當(dāng).Sato等[51]通過結(jié)合 Illumina HiSeq PE/MP 測(cè)序和454Titanium長(zhǎng)配對(duì)測(cè)序數(shù)據(jù),對(duì)日本麥芽大麥品種“HarunaNijo”基因組進(jìn)行了測(cè)序組裝,該研究組裝的“HarunaNijo”基因組大小為2Gb,BUSCO評(píng)估指數(shù)為 80.2% ,ContigN50長(zhǎng)度約為 3.5Kb ,是“Morex\"大麥“草圖”序列的2.5倍.結(jié)合FLcDNA和RNA-Seq數(shù)據(jù),他們?cè)凇癏aruna Nijo”基因組上鑒定了51249個(gè)基因模型,分布在30 606個(gè)位點(diǎn)上.此外,他們還鑒定到“HarunaNijo”基因組中約60.8% 的組裝序列為重復(fù)序列.Sakkour等[52使用國(guó)際大麥測(cè)序聯(lián)盟發(fā)布的TRITEX管道和Illumina短讀、長(zhǎng)讀、10XChromium鏈接庫和Hi-C 數(shù)據(jù),生成了“HarunaNijo”大麥的染色體級(jí)別基因組組裝,其大小為 4.28Gb ,ScaffoldN50長(zhǎng)度為 18.9Mb ,鑒定到49524個(gè)高置信度基因,BUSCO評(píng)估指數(shù)為98.4% ,該組裝的質(zhì)量與“Morex\"V2參考組裝質(zhì)量相似. Xu 等[5]首次測(cè)序組裝了加拿大二棱麥芽大麥品種“AACSynergy”的基因組序列,他們使用了Illumina配對(duì)末端測(cè)序、長(zhǎng)片段配對(duì)測(cè)序、PacBio測(cè)序、10XChromium鏈接庫和染色體構(gòu)象捕獲測(cè)序(Hi-C)技術(shù)來生成連續(xù)的組裝,最終構(gòu)建的基因組大小為4.85Gb,其中 4.14Gb 的Scaffold被錨定在7條染色體上,ScaffoldN50長(zhǎng)度為 ?2.32Mb ,注釋了46845個(gè)基因,BUSCO評(píng)估指數(shù)為 93.9% ,發(fā)現(xiàn)82.3% 的組裝區(qū)域?yàn)檗D(zhuǎn)座元件.值得注意的是,該研究使用了來自不同二棱品種“GoldenPromise”的Hi-C數(shù)據(jù),他們認(rèn)為組裝結(jié)果對(duì)于基于序列的變異研究是可用的,但不建議用于結(jié)構(gòu)變異分析.

        1.3青稞基因組組裝研究進(jìn)展青稞(HordeumvulgareL.var.nudumHook.f.)是禾本科,大麥屬一年生草本植物,因內(nèi)外穎殼分離[54],籽粒裸露,又稱裸大麥,是大麥的一個(gè)變種,主要在中國(guó)西藏、青海、四川、云南、甘肅等地種植,其生育期短,耐寒性強(qiáng),適宜青藏高原等地寒冷的氣候,是青藏高原地區(qū)的主要糧食作物[55-57].正是因?yàn)榍囡龑?duì)極端氣候良好的適應(yīng)性,使得它成了作物遺傳改良的重要遺傳資源.解析其基因組序列就顯得尤為重要.2015年,Zeng等[58利用全基因組鳥槍法(IlluminaPE),對(duì)青稞地方品種“拉薩鉤芒”進(jìn)行了基因組測(cè)序組裝,成功構(gòu)建了大小為3.9Gb的基因組,其ContigN50長(zhǎng)度為 18.1Kb ,ScaffoldN50長(zhǎng)度為242Kb ,共注釋到36151個(gè)蛋白編碼基因,基因組中約 81.4% 被識(shí)別為重復(fù)序列,與“Morex”基因組相似.該研究在全球范圍內(nèi)首次成功構(gòu)建了青稞的參考基因組,此外,該研究還對(duì)10個(gè)代表野生和栽培品種的西藏大麥進(jìn)行了全基因組重測(cè)序,發(fā)現(xiàn)野生群體的SNP數(shù)量幾乎是栽培群體的兩倍.2020年,Zeng等[59]利用二代測(cè)序(IluminaMP)和三代測(cè)序(PacBioSMRT)技術(shù)相結(jié)合的策略和遺傳圖譜更新了“拉薩鉤芒”的基因組組裝,該基因組組裝的Scaffold總大小為3.89Gb,其中 3.48Gb 的Scaffold序列能夠被錨定在7條染色體上,ContigN50長(zhǎng)度為1.6Mb,ScaffoldN50長(zhǎng)度為 4Mb ,共鑒定出40457個(gè)基因模型,BUSCO評(píng)估指數(shù)為 95.7% ,重復(fù)序列占全基因組的長(zhǎng)度占比為81. 39% . Dai等[60]結(jié)合二代測(cè)序 Illumina PE/MP 和 PacBioSMRT長(zhǎng)讀長(zhǎng)測(cè)序技術(shù),對(duì)青稞品種“藏青320”進(jìn)行了基因組的從頭組裝,構(gòu)建了4.84Gb的基因組序列,并將4.59Gb的序列錨定到7個(gè)染色體上,該基因組ContigN50長(zhǎng)度為 5.9Kb ,Scaffold N50長(zhǎng)度為 200Kb ,共注釋了46787個(gè)高置信度基因,其中31564個(gè)基因通過39個(gè)野生和栽培大麥基因型的RNA測(cè)序數(shù)據(jù)得到驗(yàn)證.

        2大麥野生種基因組研究進(jìn)展

        野生大麥?zhǔn)窃耘啻篼湹淖嫦确N,含有大量與抗病和抗逆等性狀相關(guān)的基因[61].它們?cè)谛螒B(tài)、遺傳和生理等多個(gè)領(lǐng)域都具有廣泛的多樣性,是理想的遺傳和生理研究模式作物[62].Kuang等[63]采用Ⅱl-luminaPE、PacBioSMRT、 10× Genomics 和 Hi-C技術(shù)相結(jié)合的測(cè)序策略對(duì)大麥的野生近緣種[4海大麥亞種材料“H559”進(jìn)行基因組測(cè)序組裝,組裝了大小為3.69Gb的基因組序列,其ContigN50長(zhǎng)度為 6.83Mb ,ScaffoldN50長(zhǎng)度為 524.47Mb ,共注釋到41045個(gè)高置信度基因,BUSCO評(píng)估指數(shù)為98.4% ,重復(fù)序列長(zhǎng)度為3.14Gb占全基因組82.2% .此外,他們還成功建立了海大麥的高效轉(zhuǎn)化體系和基因編輯體系.Liu等[65]利用IlluminaHiSeq平臺(tái)進(jìn)行短讀測(cè)序,組裝了野生大麥品系“AWCS276“的基因組序列,組裝大小為 4.28Gb ,同流式細(xì)胞儀估計(jì)的4.6Gb基因組大小接近,通過轉(zhuǎn)錄組測(cè)序預(yù)測(cè)到36395個(gè)高置信度蛋白編碼基因,該基因組BUSCO評(píng)估指數(shù)為 95.3% .通過與栽培大麥“Morex”基因組比較,發(fā)現(xiàn)野生大麥“AWCS276”含有更多參與生物和非生物脅迫抗性的基因.SATO等[66]發(fā)布了野生大麥品系“OUH602”的短讀序列組裝,該組裝利用IlluminaPE/MP和Hi-C技術(shù),使用TRITEX管道,該組裝大小為 4.32Gb ,ScaffoldN50長(zhǎng)度為 11.3Mb ,BUSCO評(píng)估指數(shù)為 95.5% ,基于“Morex”基因模型,預(yù)測(cè)了46807個(gè)蛋白編碼序列和43375個(gè)蛋白編碼基因,該組裝 72% 的序列區(qū)域被鑒定為重復(fù)區(qū)域.此外,比較顯示,該基因組與大麥參考基因組“Morex”V3具有高度的共線性,但也存在一些倒位.Zhang等[]對(duì)來自“進(jìn)化峽谷\"南坡和北坡的2個(gè)野生大麥品系(EC-S1和EC-N1)進(jìn)行了基因組從頭組裝,他們使用了OxfordNanopore長(zhǎng)讀測(cè)序技術(shù),二代短讀長(zhǎng)測(cè)序技術(shù)、Hi-C和Bionano光學(xué)圖譜技術(shù),組裝的EC-S1和EC-N1的基因組大小分別為5.03Gb和5.05Gb,ContigN50長(zhǎng)度分別為 3.52Mb 和3.45Mb ,分別鑒定了39179和38737個(gè)高置信度的蛋白編碼基因.他們?cè)?個(gè)基因組之間發(fā)現(xiàn)了大量的結(jié)構(gòu)變異(SV)與SNP,RNA-seq數(shù)據(jù)顯示2個(gè)品系之間的差異表達(dá)基因與干旱響應(yīng)和物候等性狀相關(guān),該研究為理解作物的局部適應(yīng)和進(jìn)化提供了重要的理論支持,此外,他們認(rèn)為這2個(gè)基因組已達(dá)到接近T2T完整拼裝級(jí)別.

        3大麥泛基因組研究進(jìn)展

        泛基因組(pangenome)是一個(gè)物種所有個(gè)體的基因組信息,代表了一個(gè)物種的基因組多樣性,包括在所有個(gè)體中發(fā)現(xiàn)的核心基因[68-69].相較于單一個(gè)體參考基因組,泛基因組可以更全面揭示某一物種的遺傳信息,對(duì)于挖掘新的功能基因和加深對(duì)物種遺傳多樣性的認(rèn)識(shí)具有重要意義[70-71].

        大麥泛基因組研究進(jìn)展取得了一些初步成果,Monat等[2]提到國(guó)際大麥基因組測(cè)序聯(lián)盟提供了大麥的高質(zhì)量參考基因組,促進(jìn)了多樣性分析、性狀定位、基因隔離和基因組輔助育種,并回顧了在其他谷物作物(如水稻、玉米)中的泛基因組研究進(jìn)展,提出了大麥泛基因組研究的策略,主要包括:1)為一小批代表性基因型構(gòu)建高質(zhì)量的序列組裝;2)對(duì)大量多樣性基因庫樣本進(jìn)行中等覆蓋度的短讀序列測(cè)序;3)使用互補(bǔ)方法,如染色體構(gòu)象捕獲測(cè)序和基于 k -mer的關(guān)聯(lián)遺傳學(xué).2020年,Jayakodi等[73]公布了20個(gè)具有代表性的大麥種質(zhì)資源(包括11個(gè)地方品種、8個(gè)栽培品種和1個(gè)野生種)的染色體級(jí)別基因組序列組裝成果,其中16個(gè)種質(zhì)的基因組使用Minia、SOAPdenovo和TRITEX方法組裝,3個(gè)種質(zhì)使用DeNovoMAGIC3平臺(tái)組裝,1個(gè)種質(zhì)使用DeNovoMAGIC3平臺(tái)和 10× Genomics測(cè)序組裝,并利用Hi-C和POPSEQ遺傳圖譜數(shù)據(jù)對(duì)這些序列進(jìn)行染色體錨定,最終共獲得了20個(gè)染色體水平的基因組,組裝大小介于 3.8~4.5Gb 之間,ScaffoldN50長(zhǎng)度介于 5.0~42.7Mb 之間,共注釋了35859至40044個(gè)高置信度基因.通過對(duì)300個(gè)基因庫種質(zhì)進(jìn)行全基因組鳥槍法測(cè)序,發(fā)現(xiàn)了豐富的大倒位多態(tài)性,并對(duì)當(dāng)前大麥優(yōu)良種質(zhì)中常見的2個(gè)倒位進(jìn)行了詳細(xì)分析,一種可能是突變育種的產(chǎn)物,另一種與涉及地理范圍擴(kuò)大的基因座緊密相連.2024,Jayakodi等[74使用PacBioHiFi和Hi-C測(cè)序技術(shù)對(duì)76個(gè)大麥(包括53個(gè)馴化大麥種質(zhì),23個(gè)野生大麥種質(zhì))進(jìn)行了染色體水平的基因組組裝,并加上1315個(gè)基因型的短讀序列數(shù)據(jù)構(gòu)建了泛基因組.研究者們探究了關(guān)于與作物進(jìn)化和適應(yīng)相關(guān)的結(jié)構(gòu)變異的影響,量化了基因存在/缺失變異的程度,并構(gòu)建了一個(gè)基于注釋泛基因組的基因中心同源框架,他們發(fā)現(xiàn)了95237個(gè)層次同源基因組(HOGs),其中16672個(gè)是“核心基因組”的一部分,此外,他們還聚焦于4個(gè)與疾病抗性、植物結(jié)構(gòu)、營(yíng)養(yǎng)釋放和毛狀體發(fā)育相關(guān)的位點(diǎn),發(fā)現(xiàn)了新的等位變異.大麥泛基因組的構(gòu)建對(duì)于促進(jìn)大麥種質(zhì)的利用,發(fā)掘更多優(yōu)異的基因或位點(diǎn)提供了數(shù)據(jù)基礎(chǔ).

        總結(jié)與展望

        在本綜述中,探討了基因組測(cè)序技術(shù)的發(fā)展與近20年來大麥基因組組裝的進(jìn)展,采用不同的測(cè)序技術(shù)和組裝策略(表1),目前已完成6個(gè)不同栽培品種的11個(gè)基因組的拼裝,包括栽培大麥與其變種青稞,野生大麥基因組拼裝完成了5個(gè),通過這些組裝好的參考基因組,系統(tǒng)地揭示了大麥基因組的大小、基因數(shù)量、重復(fù)序列占比等關(guān)鍵信息.此外,通過綜合利用公共數(shù)據(jù)以及從頭組裝建立的2個(gè)大麥泛基因組,充分揭示了大麥的基因組變異、遺傳多樣性和馴化特征等信息.這些基因組資源,為下游研究中諸多領(lǐng)域提供了重要的參考.

        表1大麥基因組測(cè)序信息統(tǒng)計(jì)Tab.1 The information statistics of barley genome sequencing
        表1(續(xù))

        測(cè)序技術(shù)以及拼裝策略的快速發(fā)展,極大地促進(jìn)了人們對(duì)復(fù)雜基因組的解析.拼裝良好的參考基因組是下游分析的基礎(chǔ),然而,植物基因組組裝往往極具挑戰(zhàn)性,因?yàn)樗鼈兺ǔ>哂卸啾痘录弑壤貜?fù)序列等.無間隙端粒到端粒(telomere-totelomere,T2T)序列組裝,是利用多種測(cè)序策略,構(gòu)建染色體端粒到端粒無缺口的基因組組裝5.植物T2T基因組序列組裝已經(jīng)取得了較好的進(jìn)展,擬南芥[76-77]、水稻[78]、玉米[79]、大豆[80-81]等眾多植物的T2T級(jí)別基因組均已完成組裝陸續(xù)發(fā)表,T2T基因組已經(jīng)成為基因組學(xué)研究的重要基礎(chǔ).截至目前,大麥T2T級(jí)別的基因組還未見報(bào)道,即使有研究使用超長(zhǎng)測(cè)序策略組裝到接近T2T水平,完成高質(zhì)量的T2T組裝將是未來大麥基因組拼裝的突破方向.2022年Navrátilová等[82分析了大麥T2T組裝的前景,基于已有植物染色體的T2T序列組裝取得了突破的背景下,他們分析了大麥“Morex”V3組裝的序列間隙,發(fā)現(xiàn)該組裝幾乎缺少所有的中心粒序列和45S核糖體DNA重復(fù)陣列,原因是基因組本身的高度復(fù)雜性衛(wèi)星重復(fù)序列導(dǎo)致了拼裝故障,他們提出了使用超長(zhǎng)序列讀取來覆蓋間隙的可能性.因此,未來利用更長(zhǎng)的測(cè)序讀長(zhǎng)拼接T2T大麥基因組是具有極大可行性的.

        在測(cè)序技術(shù)水平不斷提升的背景下,物種的參考基因組開始從單一基因組組裝向多個(gè)參考基因組發(fā)展,單個(gè)參考基因組可能已經(jīng)不足以支撐下游研究,基因組研究已經(jīng)邁入泛基因組時(shí)代,如何快速尋找目標(biāo)基因和位點(diǎn)已經(jīng)成為基因組時(shí)代的研究熱點(diǎn).大麥在進(jìn)化以及馴化中的人工選擇下,已經(jīng)形成了極為廣泛的遺傳多樣性,通過構(gòu)建全面準(zhǔn)確的泛基因組參考,利用GWAS等技術(shù)鑒定更多的功能位點(diǎn).物種核心基因、非核心基因和種間基因組變異等信息能夠受到更多的關(guān)注及應(yīng)用.

        值得注意的是,青稞作為大麥重要的變種,它的基因組組裝相較于普通大麥?zhǔn)窍鄬?duì)缺少的,在中國(guó),青稞是極為重要的作物之一,尤其是對(duì)于青藏高原地區(qū),它的高產(chǎn)穩(wěn)產(chǎn)對(duì)于確保藏區(qū)糧食安全甚至社會(huì)穩(wěn)定具有重大意義.青稞生長(zhǎng)于極端的氣候環(huán)境條件中,西藏青稞大部分種植區(qū)是屬于干旱、半干旱區(qū)域,且年降水分配不均,其生產(chǎn)受干旱脅迫的影響較為嚴(yán)重[83;青稞生長(zhǎng)在青藏高原暴露于強(qiáng)的紫外線輻射,使青稞成為分析植物紫外線適應(yīng)機(jī)制的理想作物[84].所以青稞本身就可以作為重要的作物環(huán)境適應(yīng)研究材料,加之我國(guó)青稞產(chǎn)區(qū)保有豐富的青稞種質(zhì)資源與育成品種,在這樣的背景條件下,組裝高質(zhì)量的青棵參考基因組,進(jìn)一步豐富青稞的基因組資源對(duì)于大麥環(huán)境適應(yīng)、抗逆、馴化、進(jìn)化歷程等研究都是重要的補(bǔ)充.

        在信息化時(shí)代的背景下,傳統(tǒng)農(nóng)業(yè)研究已經(jīng)向智慧農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)向,作物育種進(jìn)人4.0時(shí)代,全面精準(zhǔn)的基因組信息,海量的基因組數(shù)據(jù)庫是基礎(chǔ),基因組學(xué)、表觀組學(xué)、代謝組學(xué)以及表型組學(xué)等多組學(xué)相結(jié)合進(jìn)行生物學(xué)機(jī)制解析,結(jié)合人工智能基因組輔助育種,能夠?yàn)樽魑锔牧贾腔塾N等提供重要的理論支撐.盡管大麥基因組研究已經(jīng)取得了顯著進(jìn)展,但仍存在挑戰(zhàn),特別是在結(jié)構(gòu)變異和基因組復(fù)雜區(qū)域的精確組裝上.未來的研究需要進(jìn)一步優(yōu)化組裝算法,采用合適的測(cè)序技術(shù)組合策略,可以預(yù)見未來將會(huì)有更多的大麥基因組完成測(cè)序組裝.同時(shí)我們也期待完整的大麥T2T基因組拼裝完成.

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        Research Advances in Barley Genome Sequencing

        WANG Hao1, LIAO Qianhuan1, LIU Tinghui2, ZHU Bo 1,3

        (1.CollegeofLife Sciences,Sichuan Normal University,Chengdu 61o1o1,Sichuan;

        2. Ganzi Academy of Agricultural Sciences,Ganzi 626o, Sichuan;

        3.PlantFunctionalGenomicsandBioinformaticsResearchCenter,SichuanNormalUniversity,Chengdu61oio1,Sichuan)

        Abstract:Barley(HordeumvulgareL.)hasbeenadopted forboth human staplefoodandlivestock forage,and itisoneof the earliestdomesticatedandoneofteostgograpicallywidelycultivatedrops.Deciphringbarleygenomicinorationisofgreatsig nificanceforudestandingitsomesicationevolutionomentaladaptatioandgeticdiversity,sellsfacilitatestein ingofimportantfunctionalgenesanditsgeneticimprovement.AsamemberofteTiticeae,arleyhasalargegenomewithaighpro portionofrepetitivesequences,makingtheassemblyof thegenomechallenging.Inrecentyears,tremendousprogreseshaveben madeinbarleygenomiceseachincludingthedenoaemblyndanotatioofteenome,hichevealitsasicgenomicarac teristics,whileapangenome,consistingof76barleygenomes,hasbeenconstructed.Thisarticlecomprehensivelyreviewsthepro gressachievedinthfeldofbarleygenomicsovertepast2Oyears,anddiscuestheorigindomestcationhstoryandteaplication valuesofbarley.Tisreviewalsoextendsourinsightintotheprospectofconstructingahigherqualitybarleygenomeasemblyandits potential values on barley genomic research and future applications for the genetic engineering and breeding.

        Keywords:barley; high-throughput sequencing;genome assembly;pan-genome

        (編輯 鄭月蓉)

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