摘 要 以126份甜瓜種質(zhì)為試材，對其苗期子葉大小性狀進行測定，并依據(jù)此對甜瓜種質(zhì)資源進行聚類分析，利用50個SSR分子標記對126份甜瓜種質(zhì)進行評價，分析其遺傳多樣性，旨在為該126份甜瓜種質(zhì)的有效利用提供參考。結(jié)果表明：不同甜瓜種質(zhì)的子葉長和子葉寬均存在明顯差異，且子葉長與子葉寬間呈正相關(guān)關(guān)系；基于各甜瓜種質(zhì)的子葉長與子葉寬數(shù)據(jù)，可將91份種質(zhì)聚類為三類，即大子葉甜瓜種質(zhì)、小子葉甜瓜種質(zhì)和子葉大小中等的甜瓜種質(zhì)；50個多態(tài)性SSR分子標記在126份種質(zhì)中平均檢測出2.1個有效等位位點，變幅為1.18～4.11，Shannon-Weaver指數(shù)平均為0.80，變幅為0.33～1.50；基于50個SSR分子標記的基因型鑒定結(jié)果，126份甜瓜種質(zhì)可聚類為四類，表明分子標記相較形態(tài)指標在種質(zhì)資源評價中具有更高的精確性；由子葉大小和50個SSR分子標記的評價結(jié)果可見，本研究中126份甜瓜種質(zhì)的遺傳多樣性較為豐富。

關(guān)鍵詞 甜瓜; 子葉大小; 分子標記; 聚類分析; 遺傳多樣性

甜瓜（Cucumis melo L.）是葫蘆科甜瓜屬，一年生蔓性植物，其營養(yǎng)物質(zhì)豐富，深受消費者喜愛^［1］。甜瓜的種質(zhì)資源分布范圍廣，其品種類型較多，不同品種或種質(zhì)間的表型差異顯著，具有十分豐富的遺傳多樣性^［2］。遺傳多樣性是生物多樣性的主要構(gòu)成部分，通常指種內(nèi)不同種群之間或種群內(nèi)不同個體之間的遺傳變異總和^［3］。種質(zhì)資源是研究物種起源和進化以及培育新品種的重要材料基礎^［4］。分析和評價甜瓜種質(zhì)資源的遺傳多樣性，可為甜瓜種質(zhì)的有效利用提供重要依據(jù)，對甜瓜優(yōu)異基因的發(fā)掘、新種質(zhì)的創(chuàng)制、新品種的培育等也有重要的實踐意義。

SSR（Simple sequence repeat，SSR）分子標記，也稱微衛(wèi)星標記，因其數(shù)量多、共顯性遺傳和多態(tài)性高等優(yōu)點而被廣泛用于諸多園藝作物種質(zhì)資源的遺傳多樣性分析^［5-9］?；赟SR分子標記技術(shù)，Szamosi等^［10］對來自匈牙利和土耳其的58份甜瓜種質(zhì)進行遺傳多樣性分析、主成分分析和聚類分析，結(jié)果表明58份甜瓜種質(zhì)在各表型性狀上表現(xiàn)出豐富的多樣性；Chikh-Rouhou等^［11］對24份突尼斯甜瓜種質(zhì)進行遺傳多樣性分析和聚類分析，將其劃分為5個類群；徐小軍等^［12］對包括厚皮、薄皮和野生甜瓜的191份種質(zhì)進行了遺傳多樣性分析，發(fā)現(xiàn)厚皮與薄皮甜瓜種質(zhì)間的遺傳差異較大，野生種質(zhì)與薄皮或厚皮甜瓜種質(zhì)間的遺傳差異則相對較??；王建玉等^［13］對72份甜瓜種質(zhì)資源進行了聚類和遺傳多樣性分析，將72份甜瓜種質(zhì)資源分為7個類群，其中類群I有 64份材料，基本包括了試驗選用的所有新疆厚皮甜瓜種質(zhì)，表明其收集的新疆厚皮甜瓜種質(zhì)間的遺傳背景較狹窄。

近年來，西北農(nóng)林科技大學甜瓜種質(zhì)資源利用與遺傳育種實驗室先后收集了來自中國、印度、西班牙、埃及和美國等23個國家的126份甜瓜種質(zhì)。然而，這126份甜瓜種質(zhì)材料間的遺傳關(guān)系尚不明確，制約了其在甜瓜遺傳改良、新種質(zhì)創(chuàng)制和新品種選育中的應用進程。因此，本研究利用苗期子葉長和寬的表型數(shù)據(jù)以及50個多態(tài)性SSR分子標記，分別對126份甜瓜種質(zhì)進行遺傳多樣性分析，研究結(jié)果對較全面了解這126份甜瓜種質(zhì)的遺傳關(guān)系和其在甜瓜新種質(zhì)創(chuàng)制和新品種選育過程中的有效利用均具有重要參考意義。

1 材料與方法

1.1 供試材料

供試甜瓜材料共計126份，收集自中國、印度、西班牙、埃及和美國等23個國家，各份甜瓜種質(zhì)材料的具體名稱及來源信息詳見表1。

1.2 試驗方法

1.2.1 甜瓜種質(zhì)苗期子葉長和寬的測定 分別取126份甜瓜種質(zhì)的種子，經(jīng)溫湯浸種后于28℃的恒溫培養(yǎng)箱進行催芽，待種子露白后播種于裝有育苗基質(zhì)的72孔穴盤中，放置于西北農(nóng)林科技大學科研溫室內(nèi)。甜瓜種質(zhì)出苗后，依據(jù)《甜瓜種質(zhì)資源描述規(guī)范和數(shù)據(jù)標準》^［14］，在第一片真葉展平期對各甜瓜種質(zhì)的子葉長和寬進行測量記錄。

1.2.2 基因組DNA提取 待126份甜瓜種質(zhì)出苗至子葉展平時，取1片子葉的1/2于2.0 mL的離心管中，置于冰盒中，帶回實驗室，保存在 -20℃的冰箱中，備用。參照宋芃垚^［15］的方法，采用CTAB法提取各份甜瓜種質(zhì)的基因組DNA，并用瓊脂糖凝膠電泳的方法檢測所提DNA的質(zhì)量，用Thermo Scientific NanoDrop 2000分光光度計進行DNA濃度測定。依據(jù)各種質(zhì)基因組DNA原液的濃度，用ddH₂O稀釋至 50～100 ng/μL的濃度，作為后續(xù)PCR擴增時的DNA模板。稀釋好的DNA模板于4℃冰箱中保存，備用。

1.2.3 SSR分子標記篩選 結(jié)合已發(fā)表相關(guān)文獻資料^［15-17］及甜瓜的參考基因組（DHL92V3.6.1，http：//cucurbitgenomics.org/organism/18），篩選均勻分布于甜瓜所有染色體上且多態(tài)性較好的SSR分子標記59個，依據(jù)各引物的堿基序列信息（表2），送至北京擎科生物科技有限公司西安分公司，進行引物合成，用于后續(xù)PCR擴增。

1.2.4 PCR擴增和聚丙烯酰胺凝膠電泳及銀染 PCR擴增體系10 μL包括： 2 μL DNA 模板（50～100 ng/μL），0.5 μL 上游引物（10 μmol/μL），0.5 μL 下游引物（10 μmol/μL），5 μL Taq Master Mix，2 μL ddH₂O。PCR擴增程序為95℃預變性3 min； 94℃變性20 s，68℃退火20 s，72℃延伸20 s，循環(huán)6次，每循環(huán)退火溫度降低2℃； 94℃變性20 s，58℃退火20 s，72℃延伸20 s，循環(huán)8次，每循環(huán)退火溫度降低 1℃；94℃變性20 s，50℃退火20 s，72℃延伸20 s，循環(huán)20次；72℃延伸5 min，4℃恒溫結(jié)束。

聚丙烯酰胺凝膠電泳及銀染：取0.5～1.0 μL PCR產(chǎn)物上樣至8% PAGE膠上，進行電泳檢測，180 V恒壓電泳60 min左右。電泳結(jié)束后將PAGE膠從玻璃板上剝離，置于蒸餾水中漂洗10 s，然后放入0.13%的硝酸銀溶液中銀染10 min，銀染結(jié)束后用蒸餾水漂洗PAGE膠10 s，再置于顯影液（15 g氫氧化鈉+3 mL甲醛+1 L蒸餾水）中，搖床晃動顯影至條帶清晰可見，顯影后與蒸餾水中再次漂洗3 min左右，取出PAGE膠并用保鮮膜封好，于膠片燈上用數(shù)碼相機拍照記錄結(jié)果。

1.3 數(shù)據(jù)處理

針對各引物在126份甜瓜種質(zhì)中的擴增電泳條帶進行統(tǒng)計，有條帶記為“1”，無條帶記為“0”。利用R軟件（https：//www.r-project.org/）進行聚類分析并構(gòu)建系統(tǒng)聚類圖。根據(jù)引物擴增結(jié)果，利用POPGENE 1.32軟件（https：//sites.ualberta.ca/～fyeh/popgene_info.html）計算有效等位基因數(shù)和Shannon-Weaver指數(shù)等，從而在DNA水平對126份甜瓜種質(zhì)進行遺傳多樣性評價。

2 結(jié)果與分析

2.1 基于苗期子葉長與寬的甜瓜種質(zhì)多樣性分析

2.1.1 甜瓜種質(zhì)苗期子葉長與寬的差異及其相關(guān)性分析 各甜瓜種質(zhì)出苗至第一片真葉展平時，對126份種質(zhì)中的91份進行了子葉長和子葉寬的測量；其中，子葉長為0.93～4.02 cm，均值為2.20 cm，種質(zhì)M118的子葉最長，其次為M085（4.00 cm），而種質(zhì)M098的子葉最短，其次為M150（1.06 cm）；子葉寬為0.69～2.24 cm，均值為1.32 cm，種質(zhì)M112的子葉寬最寬，其次為M118（2.22 cm），種質(zhì)M150子葉寬最窄，其次為M098（0.70 cm）。針對91甜瓜種質(zhì)的子葉長和寬分別進行頻次分布作圖，由圖1可見，不同甜瓜種質(zhì)子葉長和子葉寬均存在明顯差異，且均呈連續(xù)分布；其中，子葉長位于 1.50～ 1.80 cm間的甜瓜種質(zhì)最多，有19份，而子葉寬在1.10～1.30 cm間的甜瓜種質(zhì)最多，有22份。此外，對 91份甜瓜種質(zhì)子葉長和子葉寬的相關(guān)性分析（圖2）表明兩者間具有正相關(guān)關(guān)系（y= 0.454 4x+ 0.318 0，R²=0.879 0）。

2.1.2 基于苗期子葉長與寬的甜瓜種質(zhì)聚類分析 依據(jù)子葉長和子葉寬的表型數(shù)據(jù)，對91份甜瓜種質(zhì)進行了聚類分析。由圖3可見，91份甜瓜種質(zhì)按其子葉長與子葉寬進行聚類時，可劃分為3個類別。其中，第一類包括31份種質(zhì)，其子葉長和子葉寬分別為2.60～4.20 cm和 1.44～ 2.24 cm，該類別屬于子葉較大的甜瓜種質(zhì)；第二類含有29份種質(zhì)，其子葉長范圍為1.70～2.51 cm，子葉寬范圍為1.05～1.62 cm，該類別甜瓜種質(zhì)具有中等大小的子葉；第三類有31份種質(zhì)，其子葉長介于1.06～1.75 cm，子葉寬則介于 0.69～1.20 cm，該類別為子葉較小的甜瓜種質(zhì)。

2.2 基于SSR分子標記的甜瓜種質(zhì)遺傳多樣性分析

2.2.1 SSR分子標記多態(tài)性分析 在本研究選用的59個SSR分子標記中，有50個SSR標記（占84.75%）的PCR擴增條帶清晰可辨，故將這50個標記用于126份甜瓜種質(zhì)的遺傳多樣性分析。由表2可知，50個SSR標記在126份甜瓜種質(zhì)中共檢測出163個等位位點，每個標記平均檢測到3.3個位點，標記CM07和CmSSR06184檢測到的位點最多（均為5個），其他標記檢測到的位點分別為3或4個；有效等位基因數(shù)N_e的變異范圍為1.18～4.11，平均為 2.10，其中標記CmSSR06184最大，標記CM43最??；觀測雜合度H_o的變幅為0.24～0.85，平均為0.50，標記CM43和CmSSR06184的H_o分別為0.85和 0.24；期望雜合度H_e的變幅為0.15～0.76，平均為0.50；Shannon-Weaver指數(shù)I的變幅為0.33～1.50，平均為0.80，標記CM43的I最小，而標記CmSSR06184的I最大。由H_o、H_e和I等可見，本研究中基于50個SSR分子標記評價的126份甜瓜種質(zhì)的遺傳多樣性較豐富。

2.2.2 基于SSR分子標記的甜瓜種質(zhì)資源聚類分析 基于50個SSR分子標記的PCR擴增條帶帶型數(shù)據(jù)，對126份甜瓜種質(zhì)進行了聚類分析。由圖4可見，126份甜瓜種質(zhì)可劃分為4個類別。第一類包括15份種質(zhì)，40%的種質(zhì)材料來源于歐洲西部（M043、M059、M080、M087、M089、M112），20%來源于亞洲西南部（M067、M093、M091），個別來源于中國西部（M102、M105）、非洲北部（M071）、印度（M124、M135）以及美國（M109）；第二類包括51份種質(zhì)，其中約67%的種質(zhì)材料來源于印度（M002、M009、M011、M012、M013、M015、M016、M018、M023、M024、M025、M026、M032、M033、M034、M046、M057、M072、M073、M074、M075、M077、M081、M092、M100、M101、M106、M107、M110、M120、M129、M131、M137和M138），約18%來源于日本（M045、M047、M050、M052、M070、M096、M097和M098），少部分來源于北美洲南部（M017、M149、M150、M151和M152），個別來源于中國（M004）和土耳其（M066）；第三類包括29份種質(zhì)，其中79%的種質(zhì)來源于印度（M001、M005、M007、M008、M010、M027、M030、M031、M036、M038、M039、M040、M041 、M063、M069、M078、M079、M099、M108、M128、M133、M139和M140），個別來源于亞洲西南部（M044、M049、M065）、非洲中南部（M003）、美國（M114）以及法國（M118）；第四類包括31份種質(zhì)，其中45%的種質(zhì)資源來源于亞洲西南部和非洲的埃及（M006、M055、M068、M094、M111、M132、M136、M141、M142、M143、M144、M146、M147 和M148），約42%來自歐洲西部地區(qū)以及印度（M064、M082、M085、M113、M115、M116、M117、M119、M125、M126、M127、M130和M134），個別來自中國（M104）、俄羅斯（M048）和美國（M056、M145）。

3 討論與結(jié)論

作物的苗期是其植株生長發(fā)育的重要階段，通過苗期性狀可以對作物進行早期選擇。鑒于許多蔬菜作物的幼苗可進行集約化、標準化的工廠化育苗，對其苗期性狀進行評價，具有周期短、效率高、評價便捷且準確等優(yōu)點，利用苗期性狀（如子葉大小等）可對甜瓜種質(zhì)資源的遺傳多樣性進行快速的初步評價。高玉紅等^［18］對20份甜瓜種質(zhì)資源的10個主要苗期性狀進行了統(tǒng)計分析，發(fā)現(xiàn)20份甜瓜種質(zhì)資源苗期主要性狀間均有一定差異，表明20份甜瓜種質(zhì)間存在較豐富的遺傳多樣性。周亞峰等^［19］以30份甜瓜品種為材料，對甜瓜16個苗期進行統(tǒng)計分析，結(jié)果表明30份甜瓜品種的苗期性狀變異較大，且子葉長、子葉寬和真葉形狀這3個苗期性狀差異明顯，變異系數(shù)均大于60%。蘇艷等^［20］研究發(fā)現(xiàn)，甜瓜苗期的子葉寬度與甜瓜果重呈顯著正相關(guān)，相關(guān)系數(shù)達 0.62，該苗期性狀可作為甜瓜單果鮮重的早期評價指標，可在苗期對甜瓜產(chǎn)量性狀進行初步預測。本研究對91份甜瓜種質(zhì)的子葉長和子葉寬等子葉大小性狀進行了測定，發(fā)現(xiàn)不同甜瓜種質(zhì)的子葉長和子葉寬均差異明顯，且子葉長和子葉寬之間存在極顯著正相關(guān)關(guān)系；依據(jù)各甜瓜種質(zhì)的子葉長與子葉寬數(shù)據(jù)，對91份甜瓜種質(zhì)進行聚類分析，可將91份甜瓜種質(zhì)分為3個類別。

相較于基于形態(tài)指標的種質(zhì)資源的遺傳多樣性評價，分子標記具有適用性廣、穩(wěn)定性高、準確性強和可重復等優(yōu)勢^［5］。SSR分子標記有數(shù)量多、多態(tài)性高且呈共顯性遺傳等諸多優(yōu)點，故其在許多植物中被廣泛用于遺傳多樣性評估、遺傳圖譜構(gòu)建和遺傳系譜/關(guān)系評價等^［21-24］。本研究從已發(fā)表的相關(guān)文獻中篩選了59個多態(tài)性較好的SSR分子標記對甜瓜種質(zhì)資源的遺傳多樣性評價，其中50個SSR標記擴增良好并用于126份甜瓜種質(zhì)的鑒定，結(jié)果表明126份甜瓜種質(zhì)在50個SSR位點上共檢測出163個等位變異，各SSR標記檢測出的等位變異為3～5個，平均為3.26個；基于50個SSR分子標記的鑒定結(jié)果，對126份甜瓜種質(zhì)材料進行聚類分析，可將其分為4個類別。該結(jié)果表明分子標記相較形態(tài)指標在種質(zhì)資源評價中具有更高的精確性?？傃灾徽撌腔诿缙谧尤~長和子葉寬的聚類分析，還是基于SSR分子標記的聚類分析，均表明本研究中的126份甜瓜種質(zhì)具有較豐富的遺傳多樣性，該結(jié)果為這126份甜瓜種質(zhì)的有效利用提供了重要參考，對甜瓜優(yōu)異基因發(fā)掘、種質(zhì)創(chuàng)新、遺傳改良、新品種培育等研究工作的開展提供了重要的前期材料基礎。

參考文獻 Reference：

［1］ 潘秀蘭，梁改榮.甜瓜種質(zhì)資源的研究與應用［J］.河南農(nóng)業(yè)，2017（15）：7-38.

［2］張凱歌，胡倩梅，靳志恒，等.219份甜瓜種質(zhì)資源的遺傳多樣性分析［J］.河南農(nóng)業(yè)大學學報，2020，54（2）：216-230.

［3］馬 靜，安永平，王彩芬，等.遺傳多樣性研究進展［J］.陜西農(nóng)業(yè)科學，2010，56（1）：126-130.

［4］卿東山，江 鴻，張露瑤，等.甜瓜種質(zhì)資源形態(tài)學性狀遺傳多樣性分析［J］.中國蔬菜，2023 （4）：39-49.

［5］張曉煜，王仕鵬，曹昆山，等.基于表型性狀與SSR標記的馬鈴薯種質(zhì)資源遺傳多樣性研究［J］.西北農(nóng)業(yè)學報，2023，33（8）：1436-1447.

［6］劉志琨，陳雪峰，王 端，等.基于SSR標記的普通杏種質(zhì)資源遺傳多樣性分析［J/OL］.分子植物育種，https：//kns.cnki.net/kcms2/detail/46.1068.s.20230724.1435.007.html.

［7］向艷濤，劉昌燕，韓雪松，等.基于SSR標記的毛豆種質(zhì)資源遺傳多樣性分析［J］.中國油料作物學報，2023，46（5）：1029-1037.

［8］李喬喬，王宇晴，邳 植，等.基于SSR分子標記的甜菜種質(zhì)資源遺傳多樣性分析［J］.中國糖料，2023，45（1）：1-7.

［9］田奇琳，何炎森，敬月美，等.基于SSR分子標記的多花水仙資源遺傳多樣性分析［J］.種子，2023，42（5）：91-96，2.

［10］ SZAMOSI C，SOLMAZ I，SARI N，et al.Morphological evaluation and comparison of Hungarian and Turkish melon （Cucumis melo L.） germplasm［J］.Scientia Horticulturae，2010，124（2）：170-182.

［11］CHIKH-ROUHOU H，MEZGHANI N，MNASRI S， et al.Assessing the genetic diversity and population structure of a Tunisian Melon （Cucumis melo L.） collection using phenotypic traits and SSR molecular markers［J］.Agronomy，2021，11（6）：1121.

［12］徐小軍，劉海英，梁長志，等.不同類型甜瓜種質(zhì)SSR遺傳多樣性及耐冷性評價［J］.植物遺傳資源學報，2020， 21（3）：568-578.

［13］王建玉，鄧志斌，張愛萍，等.甜瓜種質(zhì)資源遺傳多樣性的SSR分析［J］.中國蔬菜，2013（18）：42-47.

［14］馬雙武.甜瓜種質(zhì)資源描述規(guī)范和數(shù)據(jù)標準［M］.北京： 中國農(nóng)業(yè)出版社，2006.

［15］宋芃垚.甜瓜遺傳多樣性分析及甜瓜黃綠葉片基因ygl的精細定位［D］.鄭州：河南農(nóng)業(yè)大學，2019.

［16］趙鴻飛.甜瓜遺傳多樣性及鉀素對不同基因型甜瓜品質(zhì)影響的分析［D］.武漢：華中農(nóng)業(yè)大學，2014.

［17］KONG Q，XIANG C，YANG J，et al.Genetic variations of Chinese melon landraces investigated with EST-SSR markers［J］.Horticulture，Environment，and Biotechnology，2011，52（2）：163-169.

［18］高玉紅，閆生輝，陳海燕，等.甜瓜種質(zhì)幼苗期主要性狀的變異性及主成分和聚類分析［J］.中國瓜菜，2017，30（11）：10-14.

［19］周亞峰，許彥賓，王盼喬，等.河南省主栽甜瓜品種苗期表型性狀變異分析［J］.北方園藝，2016 （5）：17-21.

［20］蘇 艷，王盼喬，胡建斌.十五份甜瓜種質(zhì)苗期性狀的聚類分析及相關(guān)分析［J］.北方園藝，2014 （7）：5-8.

［21］張紅瑞，李 鑫，陳振夏，等.基于SSR分子標記的裸花紫珠種質(zhì)資源遺傳多樣性分析及DNA指紋圖譜構(gòu)建［J］.中草藥，2023，54（12）：3971-3982.

［22］GYRGY ZSUZSANNA，ALAM SAMEENA，PRIYANKA PRIYANKA，et al.Genetic diversity and relationships of Opium Poppy accessions based on SSR markers［J］.Agriculture，2022，12（9）：1343-1343.

［23］貫春雨，陳 肅，邢政華，等.11個楊樹品種SSR指紋圖譜構(gòu)建及遺傳關(guān)系研究［J］.西北林學院學報，2023， 38（2）：107-112.

［24］MANJULATHA MEKAPOGU，HYUN YOUNG SONG， SO HYEON LIM，et al.Assessment of genetic diversity in the white-colored variants of spray-type Chrysanthemum cultivars using SSR markers［J］.Horticulturae，2023， 9：7.

Genetic Diversity Analysis of 126 Melon Germplasms Based on SSR Markers

ZHOU Yuqing¹，DAI Wenjing²，YANG Yuqing¹，YAO Senyang¹，ZHOU Yuan¹，CHENG Zhihui¹ and PAN Yupeng¹

（1.College of Horticulture，Northwest Aamp;F University，Yangling Shaanxi 712100，China；2.Horticultural Technology Workstation of Shaanxi Province，Xi’an 710003，China）

Abstract To enhance the effective utilization of melon germplasm resources，this study evaluated the genetic diversity of 126 melon germplasms using cotyledon size （length and width） measurements at the seedling stage and genotypic analysis with 50 polymorphic SSR markers. The results indicated significant difference in cotyledon length and width among various melon germplasms， with a positive correlation observed between these two traits. Based on the cotyledon size data，91 melon inbred lines used for cotyledon size measurements were clustered into three categories：large，small，and medium cotyledon size groups. An average of 2.1 effective alleles was detected per SSR marker across 126 melon germplasms，with a range of 1.18 to 4.11. The Shannon-Weaver index averaged 0.80，with a range of 0.33 to 1.50. Based on the genotypic data of 50 SSR markers，all the 126 melon germplasms were clustered into four categories，suggesting that molecular markers are more accurate than morphological indicators in the evaluation of melon germplasms. Overall，the findings demonstrate that the 126 melon germplasms possess a relatively high genetic diversity.

Key words Melon; Cotyledon size; Molecular markers; Cluster analysis; Genetic diversity

Received 2023-09-04

Returned 2023-12-20

Foundation item the Fundamental Research Fund for the Central Universities（No.2452019017）; China’s Modern Agriculture Industry Technology System（No.CARS-23-G22）.

First author ZHOU Yuqing，female，master student.Research area：cucumber germplasms utilization and molecular breeding. Email：zhouyuqing@nwafu.edu.cn

Corresponding author PAN Yupeng，male，Ph.D，associate professor.Research area：cucumber and melon germplasms utilization and genetic breeding. E-mail：yupeng.pan@nwafu.edu.cn

（責任編輯：成 敏 Responsible editor：CHENG Min）