[摘 要] 目的:分析外泌體(Exo)微小RNA-761(miR-761)通過(guò)調(diào)控腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞(TAM)極化對(duì)骨肉瘤(OS)細(xì)胞上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)進(jìn)程的影響,闡明其相關(guān)的作用機(jī)制。方法:miR-761質(zhì)粒和陰性對(duì)照(miR-NC) 質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至HEK239 細(xì)胞中,同時(shí)設(shè)不轉(zhuǎn)染的細(xì)胞為對(duì)照組,實(shí)時(shí)熒光定量PCR (RT-qPCR) 法檢測(cè)轉(zhuǎn)染效果。分離含miR-761 的Exo,采用透射電鏡觀察Exo 形態(tài),采用納米顆粒分析儀檢測(cè)Exo 樣品濃度和粒徑分布,Western blotting 法檢測(cè)Exo 表面標(biāo)志蛋白表達(dá)情況。采用佛波酯(PMA) 刺激人單核細(xì)胞白血病THP-1 細(xì)胞成為M0 巨噬細(xì)胞,采用含miR-761 的Exo 處理M0 巨噬細(xì)胞并與OS MG63 細(xì)胞建立共培養(yǎng)體系, 實(shí)驗(yàn)分組為M0 組、TAM 組、miR-761NC 組和miR-761 Exo 組,收集各組M0 巨噬細(xì)胞,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組細(xì)胞中M1 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD86 和M2 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD206 陽(yáng)性率,Western blotting 法檢測(cè)各組細(xì)胞中M1 巨噬細(xì)胞分泌因子白細(xì)胞介素1β (IL-1β) 及腫瘤壞死因子α (TNF-α) 和M2 巨噬細(xì)胞分泌因子白細(xì)胞介素10 (IL-10)及轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1 (TGF-β1) 蛋白表達(dá)水平;采用含miR-761 的Exo 處理M0 巨噬細(xì)胞并與MG63 細(xì)胞建立共培養(yǎng)體系,實(shí)驗(yàn)分為對(duì)照組、TAM 組、miR-NC Exo+TAM 組和miR-761 Exo+TAM 組,收集各組MG63 細(xì)胞,免疫熒光染色法觀察各組MG63 細(xì)胞中E-鈣黏附蛋白(E-cadherin) 和波形蛋白(Vimentin) 熒光強(qiáng)度,Western blotting 法檢測(cè)各組細(xì)胞中E-cadherin、Vimentin 及EMT 調(diào)控相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子Twist1、Snail 和Slug 蛋白表達(dá)水平,Transwell 小室實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組MG63 細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)。結(jié)果:通過(guò)轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)成功獲得含miR-761的HEK239細(xì)胞,并分離得到Exo。與M0組比較,TAM 組巨噬細(xì)胞中CD86 陽(yáng)性率降低(Plt;0. 05), CD206 陽(yáng)性率升高(Plt;0. 05), IL-1β 和TNF-α蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05), IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05); 與TAM 組比較,miR-761 Exo 組巨噬細(xì)胞中CD86 陽(yáng)性率升高(Plt;0. 05), CD206 陽(yáng)性率降低(Plt;0. 05), IL-1β 和TNF-α 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05),IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05)。與對(duì)照組比較,TAM 組MG63 細(xì)胞中E-cadherin 熒光表達(dá)強(qiáng)度減弱而Vimentin 熒光表達(dá)強(qiáng)度增強(qiáng),E-cadherin 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05),Vimentin、Twist1、Snail 和Slug 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05),遷移細(xì)胞數(shù)和侵襲細(xì)胞數(shù)增加(Plt;0. 05); 與 TAM 組比較, miR-761 Exo+TAM 組 MG63 細(xì)胞中E-cadherin 熒光表達(dá)強(qiáng)度增強(qiáng)而Vimentin 熒光表達(dá)強(qiáng)度減弱, E-cadherin 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05),Vimentin、Twist1、Snail 和Slug 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05),遷移細(xì)胞數(shù)和侵襲細(xì)胞數(shù)減少 (Plt;0. 05)。結(jié)論:Exo傳遞miR-761能夠抑制OS細(xì)胞EMT進(jìn)程,進(jìn)而抑制細(xì)胞的遷移和侵襲,其作用機(jī)制可能與調(diào)控TAM 極化作用有關(guān)。
[關(guān)鍵詞] 骨肉瘤; 微小RNA-761; 外泌體; 上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化; 腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞極化
[中圖分類號(hào)] R738. 1 [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
骨肉瘤(osteosarcoma,OS) 是常見(jiàn)的原發(fā)性骨惡性腫瘤,主要累及長(zhǎng)骨的干骺端[1]。據(jù)統(tǒng)計(jì),全球 OS 的新發(fā)病例約為每年每百萬(wàn)人中 1~3 例[2]。雖然OS 患者通??梢圆捎檬中g(shù)和輔助化療進(jìn)行治療,但由于OS 具有高度異質(zhì)性,治療后易出現(xiàn)復(fù)發(fā)或轉(zhuǎn)移,且該部分OS 患者的5 年生存率低于20% [3-4]。OS 的腫瘤微環(huán)境是一個(gè)復(fù)雜且高度動(dòng)態(tài)的環(huán)境,由骨細(xì)胞、間充質(zhì)基質(zhì)細(xì)胞、血管細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和細(xì)胞外基質(zhì)等多種成分組成,OS 微環(huán)境的免疫細(xì)胞主要是腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞(tumor associated macrophage,TAM),TAM 通過(guò)多種途徑促進(jìn)OS 的發(fā)生和進(jìn)展,并具有保護(hù)腫瘤干細(xì)胞樣表型和促進(jìn)血管生成的作用[5]。上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition, EMT)是腫瘤發(fā)生和轉(zhuǎn)移的初始階段,在腫瘤轉(zhuǎn)移期間,TAM 通過(guò)上調(diào)基質(zhì)金屬蛋白酶水平來(lái)降解細(xì)胞外基質(zhì), 并通過(guò)激活多種信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑來(lái)刺激EMT[6]。
微小RNA (microRNA, miRNA) 是一組短的單鏈非編碼RNA,通過(guò)與mRNA 的3'非翻譯區(qū)(3' untranslated region, 3' UTR) 結(jié)合來(lái)調(diào)節(jié)基因表達(dá)[7]。研究[8-9] 顯示:miRNA 表達(dá)變化與OS 細(xì)胞的增殖、遷移、侵襲和凋亡等行為有密切關(guān)聯(lián)。miR-761 位于1p2 號(hào)染色體,通過(guò)調(diào)節(jié)腫瘤相關(guān)基因表達(dá)參與腫瘤進(jìn)展, 有研究[10] 表明: miR-761通過(guò)靶向人CXC 趨化因子受體1 (C-X-Cchemokine receptor 1, CXCR1) 抑制OS 細(xì)胞增殖和侵襲,提示miR-761 在OS 中發(fā)揮腫瘤抑制因子的作用。外泌體(exosome, Exo) 是直徑為40~100 nm 的囊泡, 其產(chǎn)生、組成、運(yùn)輸和遞送的機(jī)制已被廣泛研究, 并可作為內(nèi)源性信息載體[11]。本研究通過(guò)構(gòu)建Exo 傳遞miR-761 體系,探討其對(duì)OS 細(xì)胞中TAM 極化的影響, 并利用細(xì)胞共培養(yǎng)模型來(lái)驗(yàn)證Exo 傳遞miR-761 調(diào)控TAM 極化進(jìn)而介導(dǎo) EMT 的機(jī)制,以期為研究以Exo 為載體遞送miRNA 靶向調(diào)節(jié)OS 細(xì)胞的生長(zhǎng)和遷移進(jìn)而減緩OS 進(jìn)展提供一種新途徑。
1 材料與方法
1. 1 細(xì)胞和主要試劑
人源胚胎腎HEK239細(xì)胞、人單核細(xì)胞白血病THP-1 細(xì)胞和人OS MG63 細(xì)胞購(gòu)自美國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心(American TypeCulture Collection, ATCC)。DMEM 培養(yǎng)基、RPMI-1640 培養(yǎng)基、青-鏈霉素溶液和消化用胰酶(美國(guó)Gibco 公司),胎牛血清(美國(guó)Sigma 公司),LipofectamineTM 2000 Reagent 試劑盒(美國(guó)Thermo公司), TRIzol 試劑盒(日本TaKaRa 公司),miRNA 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和miRcute 增強(qiáng)型miRNA 熒光定量檢測(cè)試劑盒[北京天根生化科技(北京) 有限公司], Exo 提取試劑盒(北京百奧博萊科技有限公司), RIPA 裂解液、 增強(qiáng)型 ECL 試劑液、DAPI 染料和結(jié)晶紫染料(上海碧云天生物技術(shù)有限公司),BCA 蛋白定量試劑盒(北京凱詩(shī)源生物科技有限公司),0. 4 μm Transwell 小室和12. 0 μmTranswell 小室(美國(guó)iCell 公司), Triton X-100(瑞士 Roche 公司), Matrigel 膠(美國(guó) Corning 公司), 流式抗體 FITC-CD206 和 PE-CD86 (美 國(guó)BD 公司),兔抗人 E-鈣黏蛋白(E-cadherin) 單克隆抗體、兔抗人波形蛋白(Vimentin) 單克隆抗體、兔抗人Snail 多克隆抗體、兔抗Slug 多克隆抗體、兔抗人GAPDH 多克隆抗體和Alexa Fluor 標(biāo)記的山羊抗兔IgG 抗體(英國(guó)Abcam 公司),兔抗人Twist1 單克隆抗體(美國(guó)Proteintech 公司)。miR-761 質(zhì)粒和陰性對(duì)照(miR-NC) 質(zhì)粒由生工生物工程(上海) 股份有限公司設(shè)計(jì)構(gòu)建。
1. 2 細(xì)胞培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染
HEK239細(xì)胞和 MG63細(xì)胞分別接種于DMEM 培養(yǎng)基中,THP-1 細(xì)胞接種于RPMI-1640 培養(yǎng)基中, 各培養(yǎng)基均含有10% 胎牛血清和1% 青-鏈霉素溶液,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育, 0. 25% 胰酶消化,常規(guī)傳代培養(yǎng)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期HEK239 細(xì)胞,PBS 緩沖液洗滌,調(diào)整密度后按照每孔1×105 個(gè)細(xì)胞的密度接種于6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板過(guò)夜培養(yǎng),將miR-761 質(zhì)粒和miR-NC質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至HEK239 細(xì)胞中,為miR-761 組和miR-NC 組,同時(shí)設(shè)未轉(zhuǎn)染的HEK239 細(xì)胞為對(duì)照組, 按照LipofectamineTM 2000 Reagent 試劑盒說(shuō)明書步驟操作,采用實(shí)時(shí)熒光定量 PCR (real-timefluorescence quantitative PCR, RT-qPCR) 法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后細(xì)胞中miR-761 表達(dá)水平,以確定轉(zhuǎn)染是否成功。
1. 3 含miR-761的Exo提取和鑒定
將轉(zhuǎn)染后的HEK239 細(xì)胞收集于無(wú)菌離心管中, 4 ℃、4 500 r·min-1 離心15 min, 獲取上清, 移至新離心管, 4 ℃ 、12 000 r·min-1 離心20 min, 獲取上清,移至另一新離心管。在上清中加入等體積提取液A,渦 旋 混 勻, 4 ℃ 靜 置 過(guò) 夜。 次 日, 4 ℃ 、12 000 r·min-1 離心60 min, 棄上清, 保留沉淀物,吸取適量保存液B 重懸沉淀物,即獲得 Exo 懸液,-20 ℃保存?zhèn)溆?。取適量Exo,滴入載樣銅網(wǎng),2%醋酸雙氧乙鈾溶液染色,雙蒸水清洗后晾干, 透射電鏡觀察Exo 形態(tài)表現(xiàn)。將Exo 懸液緩慢注入納米顆粒分析儀中,根據(jù)納米微粒的布朗運(yùn)動(dòng)成像測(cè)定樣品濃度和粒徑分布。
1. 4 RT-qPCR 法檢測(cè)HEK239 細(xì)胞中和 Exo 中miR-761表達(dá)水平
收集轉(zhuǎn)染后的 HEK239細(xì)胞,TRIzol 法提取各組細(xì)胞或Exo 樣本總RNA, 核酸微量測(cè)定儀檢測(cè)總 RNA 的濃度和純度。取A (260) /A (280) 值范圍為1. 8~2. 0 的RNA,設(shè)計(jì)特異性反轉(zhuǎn)錄引物,進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄以合成cDNA。以U6 為內(nèi)參, 定量檢測(cè)各樣本中miR-761 表達(dá)水平, 嚴(yán)格按照miRcute 增強(qiáng)型miRNA 熒光定量試劑盒操作, 將配制好的反應(yīng)體系轉(zhuǎn)移至Bio-RadCFX96 系統(tǒng)內(nèi), 反應(yīng)程序: 95 ℃ 起始模板變性15 min;94 ℃變性20 s、60 ℃退火延伸34 s,循環(huán)45 次。擴(kuò)增結(jié)束后, 分析溶解曲線, 采用2-ΔΔCt 法計(jì)算細(xì)胞或Exo 中miR-761 表達(dá)水平。引物序列:miR-761,上游引物5'-ACAGCAGGCACAGAC- 3',下游引物5'-GAGCAGGCTGGAGAA-3'; U6, 上游引物5'-TCCGATCGTGAAGCGTTC-3', 下游引物5'-GTGCAGGGTCCGAGGT-3'。
1. 5 Western blotting 法 檢 測(cè) Exo 標(biāo) 志 蛋 白 和MG63細(xì)胞中相關(guān)目的蛋白表達(dá)水平
采用 RIPA蛋白裂解液提取Exo 或不同分組處理THP-1 細(xì)胞和MG63 細(xì)胞的總蛋白, BCA 法對(duì)蛋白定量。蛋白通過(guò)沸水浴變性,制備10%SDS-PAGE 凝膠,每孔上樣等量40 μg 蛋白進(jìn)行垂直電泳,結(jié)束后將分離的蛋白轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,恒流轉(zhuǎn)膜2 h。用5%脫脂奶粉室溫封閉2 h,以兔抗CD9、CD63、CD81、腫瘤易感基因101 (tumor susceptibility gene 101,TSG101)、白細(xì)胞介素1β (interleukin-1β,IL-1β)、腫瘤壞死因子α (tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素10 (interleukin-10, IL-10)、 轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1 (transforming growth factor- β1, TGF- β1)、E-cadherin、Vimentin、Twist1、Snail 和Slug 多克隆抗體(1∶ 1 000) 作為一抗加至膜上, 4 ℃ 過(guò)夜。次日取膜復(fù)溫, TBST 洗膜, 加入對(duì)應(yīng)二抗(1∶ 5 000), 常溫孵育2 h, TBST 洗膜, 增強(qiáng)型ECL 液顯影, 紫外凝膠儀上進(jìn)行圖像掃描, 觀察各蛋白條帶。以GAPDH 作為內(nèi)參, 采用Image J軟件分析各蛋白條帶灰度值,計(jì)算目的蛋白表達(dá)水平。目的蛋白表達(dá)水平=目的蛋白條帶灰度值/內(nèi)參蛋白條帶灰度值。
1. 6 含 miR-761 的 Exo 處 理 THP-1 細(xì) 胞 及 與MG63細(xì)胞共培養(yǎng)體系的制備
采用THP-1細(xì)胞模擬巨噬細(xì)胞形成,將細(xì)胞按照每孔5×105個(gè)的密度接種于6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板, 加入終濃度150 μg·L-1PMA 刺激 THP-1 細(xì)胞, 24 h 后得到未活化的M0 巨噬細(xì)胞。以M0 巨噬細(xì)胞為研究對(duì)象,將OSMG63 細(xì)胞按照每孔5×105 個(gè)細(xì)胞的密度接種于孔徑為0. 4 μm 的Transwell 小室上層,將不同處理的M0 巨噬細(xì)胞按照每孔5×105 個(gè)細(xì)胞的密度分別接種于細(xì)胞培養(yǎng)板中;二者均置于37 ℃、5%CO2 培養(yǎng)箱中,分開(kāi)培養(yǎng)至細(xì)胞貼壁后,將貼有MG63 細(xì)胞的上室移至含M0 巨噬細(xì)胞的細(xì)胞培養(yǎng)板中,建立上下雙層細(xì)胞共培養(yǎng)體系[12]。實(shí)驗(yàn)分為對(duì)照組、TAM 組、miR-NC Exo組和miR-761 Exo組。M0組:上室僅有培養(yǎng)基無(wú)MG63 細(xì)胞,下層為M0 巨噬細(xì)胞; TAM 組: 上室為MG63 細(xì)胞, 下層為M0 巨噬細(xì)胞;miR-NC Exo 組:上室為MG63 細(xì)胞,下層為含終濃度20 mg·L-1 miR-NC Exo 的M0 巨噬細(xì)胞;miR-761 Exo 組: 上室為MG63 細(xì)胞, 下層為含終濃度20 mg·L-1 miR-761 Exo 的M0 巨噬細(xì)胞。繼續(xù)培養(yǎng)48 h,收集各組下室細(xì)胞檢測(cè)其極化狀態(tài)。
1. 7 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組M0巨噬細(xì)胞中CD86和CD206 陽(yáng)性率
收集“1. 6”中獲得的各組下室細(xì)胞, 0. 25% 胰酶消化, PBS 緩沖液洗滌, 4 ℃、4 000 r·min-1 離心10 min 后, 4% 多聚甲醛固定;PBS 緩沖液洗滌,4 ℃、4 000 r·min-1 離心10 min,采用0. 1% Triton X-100 通透處理5 min;PBS 緩沖液洗滌, 再次離心后, 添加100 μL PBS 緩沖液重懸沉淀,加入FITC-CD206 抗體和PE-CD86 抗體,常溫避光孵育60 min,PBS 緩沖液洗滌,添加流式緩沖液重懸細(xì)胞,采用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組M0 巨噬細(xì)胞中CD86 和CD206 陽(yáng)性率,可反映巨噬細(xì)胞極化狀態(tài)。
1. 8 MG63 細(xì)胞分組和處理方法
MG63 細(xì)胞分為對(duì)照組、TAM 組、miR-NC Exo+TAM 組和miR-761 Exo+TAM 組。按照“1. 6” 中方法建立雙層細(xì)胞共培養(yǎng)體系: 對(duì)照組, 在孔徑為0. 4 μm的Transwell 上室接種MG63 細(xì)胞, 下室僅有培養(yǎng)基;TAM 組,上室接種MG63 細(xì)胞,下層細(xì)胞培養(yǎng)板接種M0 巨噬細(xì)胞; miR-NC Exo+TAM 組,上室接種MG63 細(xì)胞,下層細(xì)胞培養(yǎng)板接種含終濃度20 mg·L-1 miR-NC Exo 處理的M0 巨噬細(xì)胞;miR-761 Exo+TAM 組,上室接種MG63 細(xì)胞,下層細(xì)胞培養(yǎng)板接種含終濃度20 mg·L-1 miR-761Exo 處理的M0 巨噬細(xì)胞。處理結(jié)束后,收集各組MG63 細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1. 9 免 疫 熒 光 染 色 法 檢 測(cè) 各 組 MG63 細(xì) 胞 中E-cadherin和Vimentin熒光強(qiáng)度
將處理后的各組MG63 細(xì)胞接種至防脫載玻片上, 37 ℃ 、5%CO2條件下培養(yǎng)12 h。PBS 緩沖液洗滌,4% 多聚甲醛固定, 0. 1%Triton X-100 通透處理10 min, 采用10% 山羊血清常溫孵育 2 h, 加入稀釋的兔抗人E-cadherin 單克隆抗體(1∶ 200) 和兔抗人Vimentin 單克隆抗體(1∶200),4 ℃過(guò)夜。次日,PBS 緩沖液洗滌, 加入稀釋的Alexa Fluor 標(biāo)記的山羊抗兔IgG 抗體(1∶500),常溫孵育1 h。PBS緩沖液洗滌, DAPI 避光染核, 清洗多余染料后,防淬滅封片劑封固,自然晾干,采用熒光顯微鏡觀察各組細(xì)胞中蛋白表達(dá)熒光強(qiáng)度。
1. 10 Transwell小室實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組 MG63細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)
細(xì)胞分組同上。在孔徑為12. 0 μm 的Transwell 小室上層加入適量Matrigel膠, 置于37 ℃恒溫箱內(nèi)待膠凝固。0. 25% 胰酶消化處理后的MG63 細(xì)胞,按照每孔2×103個(gè)細(xì)胞的密度接種于含24 孔細(xì)胞培養(yǎng)板的Transwell 小室上層,下層加入500 μL 含10% 胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液。將Transwell 小室體系置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h 后取出,棄培養(yǎng)液,棉簽擦去上室未穿孔細(xì)胞, PBS 緩沖液洗滌, 4% 多聚甲醛固定, 0. 1% 結(jié)晶紫染色10 min, PBS 緩沖液洗滌,中性樹(shù)膠封固,自然晾干,采用光學(xué)顯微鏡觀察細(xì)胞穿過(guò)小室情況,隨機(jī)選擇6 個(gè)視野統(tǒng)計(jì)侵襲細(xì)胞數(shù),結(jié)果取平均數(shù)。檢測(cè)遷移細(xì)胞數(shù)時(shí)除不在上層鋪Matrigel 膠外,其余操作均與上述方法一致。
1. 11 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
采用 GraphPad Prism 8. 30 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。各組HEK239 細(xì)胞中miR-761 表達(dá)水平,各組巨噬細(xì)胞中CD86 和CD206陽(yáng)性表達(dá)率及IL-1β、TNF-α、IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)水平, 各組 MG63 細(xì)胞中E-cadherin、Vimentin、Twist1、Snail 和Slug 蛋白表達(dá)水平,各組MG63 細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)均符合正態(tài)分布, 以-x±s 表示, 多組間樣本均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間樣本均數(shù)兩兩比較采用LSD-t 檢驗(yàn)。以Plt;0. 05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié) 果
2. 1 轉(zhuǎn)染后 HEK239 細(xì)胞中 miR-761 表達(dá)水平
與 對(duì) 照 組 和 miR-NC 組 比 較, miR-761 組HEK239 細(xì)胞中miR-761 表達(dá)水平均升高(Plt;0. 05)。見(jiàn)圖1。
2. 2 含 miR-761的 Exo提取和鑒定結(jié)果
透射電鏡下觀察: 提取的顆粒物呈圓形或橢圓形囊泡結(jié)構(gòu), 大多徑粒分布在100 nm 左右(圖2A~2D)。Exo 標(biāo)志蛋白檢測(cè)結(jié)果顯示: 轉(zhuǎn)染 miR-NC 和miR-761 的HEK239 細(xì)胞中CD9、CD63、CD81 和TSG101 蛋白表達(dá)水平均明顯低于轉(zhuǎn)染miR-NC 和miR-761 的HEK239 細(xì)胞來(lái)源Exo (圖2E)。轉(zhuǎn)染miR-761 細(xì)胞來(lái)源的Exo 中miR-761 表達(dá)水平高于轉(zhuǎn)染miR-NC 細(xì)胞來(lái)源的Exo (Plt;0. 05)(圖2F)。以上結(jié)果表明:成功分離到含miR-761 的Exo。
2. 3 各組巨噬細(xì)胞中極化相關(guān)蛋白陽(yáng)性率和極化相關(guān)細(xì)胞因子蛋白表達(dá)水平
與M0組比較,TAM組巨噬細(xì)胞中M1 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD86 陽(yáng)性率降低(Plt;0. 05), M2 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD206 陽(yáng)性率升高(Plt;0. 05); 與TAM 組比較, miR-761 Exo 組細(xì)胞中CD86 陽(yáng)性率升高(Plt;0. 05),CD206 陽(yáng)性率降低(Plt;0. 05), miR-NC Exo 組細(xì)胞中CD86和CD206 陽(yáng)性率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見(jiàn)圖3 和表1。
與M0 組比較, TAM 組巨噬細(xì)胞中IL-1β 和TNF- α 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05), IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05);與TAM 組比較,miR-761 Exo 組細(xì)胞中IL-1β 和TNF-α 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05), IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05),miR-NC Exo 組上述各蛋白表達(dá)水平差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見(jiàn)圖4。
2. 4 各組 MG63細(xì)胞中 E-cadherin和 Vimentin熒光強(qiáng)度
與對(duì)照組比較,TAM 組 MG63 細(xì)胞中E-cadherin 熒光強(qiáng)度減弱,Vimentin 熒光強(qiáng)度增強(qiáng);與TAM 組比較,miR-761 Exo+TAM 組MG63 細(xì)胞中E-cadherin 熒光強(qiáng)度增強(qiáng),Vimentin 熒光強(qiáng)度減弱,miR-NC Exo+TAM 組MG63細(xì)胞中E-cadherin和Vimentin 熒光強(qiáng)度無(wú)明顯變化。見(jiàn)圖5。
2. 5 各 組 MG63 細(xì) 胞 中 E-cadherin、Vimentin、Twist1、Snail和 Slug 蛋白表達(dá)水平
與對(duì)照組比較,TAM 組MG63 細(xì)胞中E-cadherin 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05),Vimentin、Twist1、Snail 和Slug蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05); 與TAM 組比較,miR-761 Exo+TAM 組MG63 細(xì)胞中E-cadherin 蛋白表達(dá)水平升高(Plt;0. 05), Vimentin、Twist1、Snail 和 Slug 蛋白表達(dá)水平降低(Plt;0. 05),miR-NC Exo+TAM 組MG63 細(xì)胞中上述各蛋白表達(dá)水平差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見(jiàn)圖6。
2. 6 各組 MG63細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)
與對(duì)照組比較,TAM 組MG63 細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)增加(Plt;0. 05); 與 TAM 組比較, miR-761Exo+TAM 組MG63 細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)減少(Plt;0. 05), miR-NC Exo+TAM 組MG63 細(xì)胞中侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05)。見(jiàn)圖7 和8。
3 討 論
TAM 通過(guò)特異性分化可以進(jìn)化成2 種不同的極化狀態(tài):經(jīng)典活化的M1 型和替代活化的M2 型。在腫瘤微環(huán)境中, M1 型 TAM 可由干擾素 γ(interferon-γ,IFN-γ)、脂多糖(lipopolysaccharide,LPS) 和TNF- α 等細(xì)胞因子誘導(dǎo)產(chǎn)生, M1 型TAM 表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗原呈遞能力,具有促進(jìn)輔助性T 細(xì)胞(T helper cell,Th1) 免疫反應(yīng)、吞噬細(xì)菌及病毒和殺死腫瘤細(xì)胞的作用, 并分泌白細(xì)胞介素6 (interleukin-6, IL-6)、白細(xì)胞介素 23(interleukin-23, IL-23)、活性氧(reactive oxygenspecies,ROS) 及其他參與炎癥反應(yīng)并發(fā)揮抗腫瘤免疫作用的炎癥介質(zhì), 進(jìn)而抑制腫瘤的發(fā)生和發(fā)展[13]。在白細(xì)胞介素4 (interleukin-4,IL-4)、IL-10、白細(xì)胞介素13 (interleukin-13, IL-13) 和糖皮質(zhì)激素誘導(dǎo)下可以促進(jìn)TAM 向M2 型極化, M2 型TAM 分泌IL-10 和TGF-β1 等抗炎細(xì)胞因子,促進(jìn)血管生成、組織重塑、組織損傷修復(fù)和腫瘤生長(zhǎng)[14]。在腫瘤微環(huán)境中,TAM 主要具有M2 樣巨噬細(xì)胞的表型,通過(guò)促進(jìn)腫瘤血管生成或間接誘導(dǎo)腫瘤微環(huán)境中免疫細(xì)胞之間的相互作用來(lái)促進(jìn)腫瘤免疫抑制。已有研究[15] 表明: M1 型TAM 抑制OS 轉(zhuǎn)移,而M2 型TAM 通過(guò)分泌相關(guān)細(xì)胞因子促進(jìn)OS 轉(zhuǎn)移。TAM 極化是一種高度可塑性的生理過(guò)程,因此使用藥物或天然免疫制劑通過(guò)改變其表型甚至抑制TAM 向M2 型極化,有望成為OS 新的治療方式。
作為一種通用調(diào)節(jié)因子, miRNA 在功能上參與多種關(guān)鍵的細(xì)胞過(guò)程, 包括 TAM 極化。miR-195-5p 通過(guò)抑制結(jié)直腸癌細(xì)胞中GATA 結(jié)合蛋白3 (GATA binding protein 3, GATA3) 介導(dǎo)的IL-4 分泌途徑來(lái)抑制TAM 向M2 型極化,并有助于TAM 向M1 型極化,起到了抑制結(jié)直腸癌體內(nèi)外生長(zhǎng)的作用[16]; miR-498 可抑制鼠雙微體2(murine double minute 2, MDM2) 介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄激活因子3 (activating transcription factor 3, ATF3)降解,進(jìn)而抑制食管癌中TAM 自噬和向M2 表型極化, 對(duì)食管癌進(jìn)展起到抑制作用[17]; 巨噬細(xì)胞中的miR-182 誘導(dǎo)其向M2 型極化,在乳腺癌小鼠模型和巨噬細(xì)胞中敲除 miR-182 會(huì)抑制 TAM 向M2 型極化,從而抑制M2 型TAM 發(fā)揮的促腫瘤作用[18]。由于Exo 體積小、穩(wěn)定性強(qiáng)、免疫原性低和生物相容性高等特點(diǎn),已被作為納米級(jí)載體在研究中廣泛使用[19-20]。將調(diào)控TAM 極化的miRNA通過(guò)Exo 遞送至腫瘤微環(huán)境中,可影響腫瘤的生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移。本研究中,采用PMA 刺激THP-1 細(xì)胞產(chǎn)生M0 型巨噬細(xì)胞, 并與OS MG63 細(xì)胞建立共培養(yǎng)體系,結(jié)果顯示:巨噬細(xì)胞中M1 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD86 陽(yáng)性率降低, M2 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD206 陽(yáng)性率升高, M1 巨噬細(xì)胞分泌因子IL-1β 和TNF-α蛋白表達(dá)下調(diào), M2 巨噬細(xì)胞分泌因子 IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)上調(diào), 表明OS MG63 細(xì)胞可誘導(dǎo)TAM 向M2 型極化;含miR-761 Exo 的M0 型巨噬細(xì)胞與OS MG63 細(xì)胞建立共培養(yǎng)體系培養(yǎng)后,巨噬細(xì)胞中M1 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD86 陽(yáng)性率升高,M2 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD206 陽(yáng)性率降低, M1 巨噬細(xì)胞分泌因子IL-1β 和TNF- α 蛋白表達(dá)上調(diào)而M2 巨噬細(xì)胞分泌因子IL-10 和TGF-β1 蛋白表達(dá)下調(diào), 表明Exo 傳遞的miR-761 可能抑制TAM 向M2 型極化并促進(jìn)TAM 向M1 型極化。
EMT 是細(xì)胞失去上皮特征并獲得間充質(zhì)特性的過(guò)程,可觸發(fā)癌細(xì)胞與原發(fā)部位的解離,使癌細(xì)胞侵入鄰近組織并隨后擴(kuò)散至遠(yuǎn)處器官,有助于腫瘤惡性生物學(xué)特性, 包括細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移。研究[21] 表明:TAM 極化參與不同類型癌癥的EMT進(jìn)程調(diào)節(jié)。在三陰性乳腺癌中不僅檢測(cè)到M2 型TAM 高度浸潤(rùn), 且與患者的不良預(yù)后有關(guān); 與M2 型 TAM 共培養(yǎng)的三陰性乳腺癌 BT549 和HCC1937 細(xì)胞中間充質(zhì)標(biāo)志物 N- 鈣黏蛋白(N-cadherin)、Vimentin 和轉(zhuǎn)錄因子Snail 表達(dá)明顯增加, 而上皮標(biāo)志物E-cadherin 表達(dá)受到抑制[22];M2 型TAM 與肝內(nèi)膽管癌細(xì)胞共培養(yǎng)后可促進(jìn)肝內(nèi)膽管癌細(xì)胞的EMT,增強(qiáng)細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移能力;此外, M2 型TAM 通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞因子如細(xì)胞間黏附分子1 (intercellular cell adhesion molecule-1、ICAM-1)、IL-6、CC 趨化因子配體 1 (C-Cchemokine ligand 1,CCL1) 和CC 趨化因子配體3(C-C chemokine ligand 3,CCL3) 等分泌來(lái)調(diào)節(jié)肝內(nèi)膽管癌微環(huán)境[23]。推測(cè)打破TAM 和EMT 之間的信號(hào)通路或串?dāng)_循環(huán)能夠?qū)鼓[瘤轉(zhuǎn)移。本研究結(jié)果顯示: 與M0 巨噬細(xì)胞共培養(yǎng)的OS MG63 細(xì)胞中E-cadherin 熒光強(qiáng)度減弱、Vimentin 熒光強(qiáng)度增強(qiáng), E-cadherin 蛋白表達(dá)水平下調(diào), Vimentin、Twist1、Snail 和Slug 蛋白表達(dá)水平上調(diào), 侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)均增加,表明MG63 細(xì)胞誘導(dǎo)TAM 向M2 型極化后促進(jìn)了EMT,同時(shí)提高了細(xì)胞遷移和侵襲能力; 而與含miR-761 Exo 的M0 型巨噬細(xì)胞共培養(yǎng)的OS MG63 細(xì)胞中E-cadherin 熒光強(qiáng)度增強(qiáng)、Vimentin 熒光強(qiáng)度減弱, E-cadherin 蛋白表達(dá)水平上調(diào)而Vimentin、Twist1、Snail 和Slug 蛋白表達(dá)水平下調(diào), 侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)均減少, 表明Exo 傳遞的miR-761 抑制TAM 向M2 型極化及其介導(dǎo)的EMT,進(jìn)而抑制腫瘤轉(zhuǎn)移。
綜上所述, Exo 傳遞的miR-761 能夠調(diào)節(jié)OS微環(huán)境下TAM 極化,通過(guò)抑制TAM 向M2 型極化進(jìn)而抑制EMT 進(jìn)程可抑制腫瘤轉(zhuǎn)移,本研究結(jié)果為OS 的臨床治療提供了新思路。但本研究只在體外進(jìn)行了初步研究,關(guān)于miR-761 作用的具體機(jī)制及在體內(nèi)是否發(fā)揮同樣作用尚有待進(jìn)一步探討。
利益沖突聲明:
所有作者聲明不存在利益沖突
作者貢獻(xiàn)聲明:
高世磊參與實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和論文撰寫, 王家強(qiáng)、田志超、李超和梁瀟瀟參與數(shù)據(jù)收集、數(shù)據(jù)整理和統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,姚偉濤和王鑫參與實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)指導(dǎo)和論文審閱。
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[基金項(xiàng)目] 河南省科技廳科技發(fā)展計(jì)劃項(xiàng)目(222102310131)
吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2024年4期