曾 羲,王 宇,徐巨才,黃穗東,王 涓,徐振林,
(1.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,廣東省食品質(zhì)量安全重點實驗室,廣東 廣州 510642;2.廣州市食品檢驗所,廣東 廣州 511400;3.五邑大學(xué)生物科技與大健康學(xué)院,江門市大健康國際創(chuàng)新研究院,廣東 江門 529020)
蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus,Bc)是一種在自然環(huán)境廣泛分布、可產(chǎn)芽孢的革蘭氏陽性桿菌[1-2],也是一種檢出率極高的條件食源性致病菌[3-4],其在食品的污染率高達20%~40%,且大部分陽性樣的污染水平遠超現(xiàn)在國家限量標(biāo)準(zhǔn)[5-7]。Bc的多個致吐毒株可分泌產(chǎn)生對酸、堿及熱穩(wěn)定的環(huán)肽型嘔吐毒素Cereulide(圖1),被認為是亞洲“炒飯綜合征”的罪魁禍?zhǔn)譡8]。Cereulide為十二環(huán)肽,其不受蛋白酶干擾,且對自然殺傷細胞有作用抑制,會影響免疫功能和引發(fā)急性肝衰竭[9-11],在Bc活菌被消除的情況下依然可引起食物中毒[12]。僅被Cereulide污染的食品不會發(fā)生腐敗變質(zhì)、無異味,有極大的食品安隱患,2017年我國由Bc引發(fā)的食物中毒總?cè)藬?shù)比例高達3.63%[13];2019年我國即食食品樣本中Bc的檢出率高達35.1%[8];有研究表明,體質(zhì)量約70 kg的成年人食用含有0.01~1.28 μg Cereulide的食物即可發(fā)生嘔吐中毒[14]。因此,建立食品中低濃度Cereulide的快速高效分析篩查方法十分必要。
圖1 Cereulide的結(jié)構(gòu)示意圖Fig.1 Chemical structure of cereulide
隨著檢測技術(shù)的發(fā)展,Cereulide的檢測方法從早期不夠準(zhǔn)確且昂貴的動物實驗法[15]對其進行半定量,到使用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)法[16-17]對Bc毒株進行鑒定,但無法定量測定,再到準(zhǔn)確的儀器分析方法。張秀堯等[18]利用高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法可實現(xiàn)對食品中Bc嘔吐毒素Cereulide的準(zhǔn)確分析測定,但此方法前處理復(fù)雜、基質(zhì)效應(yīng)明顯,需加入同位素內(nèi)標(biāo)方可達到精準(zhǔn)檢測;José等[19]以苝酰亞胺為熒光探針和Cereulide競爭結(jié)合K+從而實現(xiàn)對Cereulide的定量分析測定,此法操作簡單,但基質(zhì)中其他離子對檢測結(jié)果的干擾較大;Veronika等[20]利用高效液相色譜-高分辨飛行時間質(zhì)譜聯(lián)合核磁共振法分析測定出Cereulide及其異構(gòu)體的化學(xué)結(jié)構(gòu),但無法進行定量測定?;|(zhì)輔助激光解吸電離飛行時間質(zhì)譜(matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry,MALDI-TOF MS)是一種新興的軟電離生物質(zhì)譜[21],其靈敏度高、能夠輔助被測物保持完整的分子結(jié)構(gòu),可用于表征并量化各種分子質(zhì)量的生物分子[22-24],近年來在多肽、蛋白質(zhì)[25-26]的篩選和測定中發(fā)揮了重要作用。Sebastian[27]和Doellinger[28]等均使用MALDI-TOF MS分析技術(shù)實現(xiàn)了對Cereulide的定性分析,但無法進行定量檢測。
本研究通過篩選MALDI-TOF MS傳統(tǒng)基質(zhì)對Cereulide的最佳響應(yīng)強度,簡化食品樣品前處理過程、優(yōu)化分析方法,實現(xiàn)大批量、多批次樣品中Cereulide高效快速的定性、定量檢測,為調(diào)研、評價日常食物中Cereulide殘留量及污染風(fēng)險狀況提供可靠的技術(shù)補充。
牛奶 市購;米飯及面制品由當(dāng)?shù)夭惋嫷晏峁?/p>
α-氰基-4-羥基肉桂酸(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid,HCCA)、介子酸(sinapic acid,SA)、2,5-二羥基苯甲酸(2,5-dihydroxybenzoic acid,DHB)(高效液相色譜級)德國Bruker公司;Cereulide標(biāo)準(zhǔn)品(2.0 mg/mL,純度99.0%,CAS號:157232-64-9)荷蘭Chiralix公司;甲醇、乙腈(色譜純)美國Thermo Fisher Scientific公司;三氟乙酸(trifluoroacetic acid,TFA)美國Sigma公司;其他試劑均為分析純。
MS205DU電子天平 梅特勒-托利多(上海)國際貿(mào)易有限公司;ultraflextreme MALDI-TOF MS儀(配384孔ground steel靶板)德國Bruker公司;2600TH超聲清洗儀 上海安譜科學(xué)儀器有限公司;M37610-33CN渦旋混合儀 美國Thermo Fisher Scientific公司;Allegra X-30R高速冷凍離心機 美國Beckman公司;Milli-Q超純水制備系統(tǒng) 美國Millipore公司。
1.3.1 溶液配制
1.3.1.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制
準(zhǔn)確移取Cereulide標(biāo)準(zhǔn)品溶液50 μL于10 mL容量瓶,用甲醇定容至刻度,得10 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,于-18 ℃避光儲存6 個月;精密量取上述儲備液1.0 mL于10 mL容量瓶中,用甲醇定容,得到1.0 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)中間液,臨用時將上述標(biāo)準(zhǔn)中間液用甲醇-水(50∶50,V/V)稀釋至指定標(biāo)準(zhǔn)曲線質(zhì)量濃度。
1.3.1.2 基質(zhì)的配制
稱取適量傳統(tǒng)基質(zhì)HCCA(SA或DHB)至離心管中,加入1.0 mL TA50(乙腈-水(1∶1,V/V))(含0.1% TFA)溶劑,配成對應(yīng)的質(zhì)量濃度HCCA(SA或DHB)基質(zhì)溶液,超聲溶解10 min。
1.3.2 樣品前處理
1.3.2.1 低脂肪制品
參考文獻[18]前處理方法并作適當(dāng)修改。稱取0.50 g米飯或米面制品,加入2 g無水Na2SO4和5.0 mL甲醇后超聲提取10 min,經(jīng)8000 r/min離心5 min后移取上清液,殘渣再用5.0 mL甲醇提取、離心1 次,合并提取液后用甲醇定容至10 mL,再吸取5.0 mL提取液,于60 ℃以氮氣吹干,溶于500 μL甲醇-水(50∶50,V/V),點靶上機測定。
1.3.2.2 乳制品
稱0.5 g乳制品(豆奶、牛奶、含乳飲料、奶粉等)加入1 mL水后,再加入0.5 mL乙酸鋅(92 g/L)和0.5 mL亞鐵氰化鉀(183 g/L)混勻,用甲醇定容至10 mL后旋渦2 min,經(jīng)超聲提取10 min后10000 r/min離心5 min,吸取5 mL上清液,55 ℃以氮氣吹至約1 mL,再用5 mL正己烷萃取2 次,合并上清液后轉(zhuǎn)移至由100 mgN-丙基乙二胺固相吸附劑、40 mg C18和20 mg石墨化碳黑吸附劑混合均勻的離心管,振搖2 min,超聲提取5 min后10000 r/min離心5 min,將上清液用甲醇-水(50∶50,V/V)定容至2 mL,點靶上機測定。
1.3.3 點靶方式與MALDI-TOF MS分析條件
1.3.3.1 點靶方式
按點靶方法[29],具體為雙鋪法1:先移取1 μL樣品于384 孔ground靶板上,自然揮干后,再移取1 μL基質(zhì)覆蓋,自然揮干待測;雙鋪法2:先移取1 μL基質(zhì)于384 孔ground靶板上,自然揮干后,再移取1 μL樣品覆蓋,自然揮干待測;混合點樣法:取2 μL樣品和2 μL基質(zhì)混合均勻后,取2 μL混合物直接于384 孔ground靶板上點樣,自然揮干待測;三明治法:取0.5 μL基質(zhì)溶液于384 孔ground靶板上,自然揮干后,取1 μL樣品覆蓋基質(zhì),自然揮干后,再取0.5 μL基質(zhì)溶液揮干待測。
1.3.3.2 MALDI-TOF MS條件
光源:氮氣激光;離子源:電噴霧電離源;波長:337 nm;檢測模式:反射線性正離子模式;采集范圍:100~1500 Da;激光強度:70%;質(zhì)譜響應(yīng)強度疊加次數(shù)均為20 次。
利用儀器配置的flexControl軟件對質(zhì)譜圖質(zhì)量軸質(zhì)荷比(m/z)進行標(biāo)記和默認平滑處理,并用flexAnalysis 3.4軟件分析原始數(shù)據(jù),根據(jù)疊加所得Cereulide對應(yīng)m/z的峰面積換算成標(biāo)準(zhǔn)曲線中標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的含量。結(jié)果以平均值表示(n=6),并采用Excel 2011進行數(shù)據(jù)分析及圖形繪制。
按1.3.1節(jié)中方法配制100 ng/mL的Cereulide標(biāo)準(zhǔn)溶液和10 mg/mL的HCCA、SA和DHB基質(zhì)溶液,觀察Cereulide標(biāo)準(zhǔn)溶液與基質(zhì)的成膜過程及成膜情況,并分別采用反射線性正離子模式和反射線性負離子模式分析Cereulide在3 種基質(zhì)的MALDI-TOF MS響應(yīng)情況,結(jié)果見圖2。結(jié)果表明,Cereulide在3 種基質(zhì)的負離子模式均無法檢測到目標(biāo)物;以HCCA和DHB作為基質(zhì)時,在正離子模式下可以檢測到離子化形式為[M+Na]+和[M+K]+的Cereulide質(zhì)譜峰,其m/z分別為1175.8138和1191.7983,與Sebastian等[27]的分析結(jié)果一致,且以DHB為基質(zhì)的疊加響應(yīng)強度達105以上;以SA為基質(zhì)時,僅在正離子模式下能檢測到離子化形式為[M+K]+的質(zhì)譜峰;以DHB為基質(zhì)時,在正離子模式下可產(chǎn)生[M+Na]+和[M+K]+的質(zhì)譜信號峰。但值得注意的是,在以HCCA為基質(zhì)時,其在靶板上的成膜性、響應(yīng)強度均優(yōu)于DHB,其原因是DHB與樣品重結(jié)晶的“甜點”效應(yīng)明顯[30-31],故選用HCCA作為Cereulide的分析基質(zhì)。
圖2 不同基質(zhì)下Cereulide的MALDI-TOF MS圖Fig.2 MALDI-TOF MS spectra of cereulide in different matrixes
基質(zhì)結(jié)晶質(zhì)譜信號不穩(wěn)定、響應(yīng)重復(fù)性差和“甜點”效應(yīng)是影響MALDI-TOF MS定量分析測定的關(guān)鍵問題[30]。為實現(xiàn)HCCA對Cereulide的準(zhǔn)確定量分析,以HCCA為基質(zhì),通過考察不同點樣方式對質(zhì)譜信號的影響,即按1.3.3.1節(jié)中操作采用雙鋪法1、雙鋪法2、混合點樣法和三明治法,將100 ng/mL的Cereulide標(biāo)準(zhǔn)溶液作為樣品在384 孔ground靶板上點樣,每種方式做6 次平行,并按1.3.3.2節(jié)儀器分析條件進行檢測,結(jié)果見圖3A。4 種不同的點靶方式對Cereulide的[M+Na]+和[M+K]+的質(zhì)譜峰響應(yīng)強度從高到低依次為三明治法、雙鋪法2、雙鋪法1和混合點樣法,且三明治法與雙鋪法2的響應(yīng)強度平均值均介于0.57×105~0.67×105,但因?qū)嶋H操作過程中雙鋪法2的操作步驟少及所需等待時間遠少于三明治法,可提高實驗效率,因此選用雙鋪法2作為Cereulide的點靶方式。
圖3 HCCA在不同點靶方式下(A)和HCCA分散在不同溶劑(B)Cereulide質(zhì)譜響應(yīng)強度Fig.3 Mass spectral response intensity of cereulide with HCCA using different spotting methods (A) and HCCA dispersed in different solvents (B)
將HCCA分別按1.3.3.1節(jié)中方法分散在TA50、TA50(含0.1% TFA)和甲醇-水(1∶1,V/V)溶劑后,分別觀察其與100 ng/mL標(biāo)準(zhǔn)溶液點樣成膜過程,并按1.3.3.2節(jié)儀器條件分析其響應(yīng)強度,結(jié)果見圖3B。結(jié)果表明,3 種溶劑均可用于HCCA基質(zhì)的溶解和MALDITOF MS分析,但在實際操作過程中發(fā)現(xiàn)甲醇-水所需的分散時間遠多于其他2 種溶劑;3 種溶劑對Cereulide的[M+Na]+和[M+K]+的質(zhì)譜峰響應(yīng)強度從高到低依次為TA50(含0.1% TFA)、TA50和甲醇-水,且以TA50(含0.1% TFA)作為溶劑時,HCCA在ground靶板上可均勻鋪展,分散性好、成膜性佳,Cereulide的質(zhì)譜信號強度高重復(fù)性好,疊加的[M+Na]+質(zhì)譜峰響應(yīng)強度可達105,故選用TA50(含0.1% TFA)作為HCCA溶劑。
在1 mL TA50(含0.1% TFA)中加入2.0、4.0、6.0、8.0 mg和10.0 mg不同質(zhì)量的HCCA基質(zhì),考察其對100 ng/mL Cereulide標(biāo)準(zhǔn)溶液的MALDI-TOF MS分析效果,結(jié)果見圖4A。隨著HCCA質(zhì)量濃度的增加,Cereulide的[M+Na]+質(zhì)譜信號強度呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,在4.6×104~1.4×105之間,且在6.0 mg/mL時達最大值,為1.4×105;而Cereulide的[M+K]+質(zhì)譜信號強度較為穩(wěn)定,整體介于0.4×105~0.5×105;說明基質(zhì)濃度對[M+Na]+質(zhì)譜峰信號影響較大,對[M+K]+質(zhì)譜峰信號影響較小。因此,后續(xù)實驗均采用6.0 mg/mL HCCA的TA50(含0.1% TFA)基質(zhì)溶液。
圖4 不同質(zhì)量濃度HCCA(A)和HCCA在不同激光強度下(B)的Cereulide質(zhì)譜信號強度Fig.4 Mass spectral intensity of cereulide as a function of HCCA concentration (A) and laser intensity (B)
以100 ng/mL的Cereulide標(biāo)準(zhǔn)溶液為樣品,分析MALDI-TOF MS不同激光強度(10%~90%)對HCCA與Cereulide的共結(jié)晶物的質(zhì)譜信號強度影響情況,以10%的能量間隔遞增,各質(zhì)譜信號響應(yīng)強度的結(jié)果如圖4B所示。結(jié)果表明,隨著激光強度的增加,[M+Na]+和[M+K]+的質(zhì)譜離子峰響應(yīng)強度也增加,即分別從9.0×103增加到1.9×105、5.9×103增加到1.2×105,說明激光強度對兩個目標(biāo)質(zhì)譜離子峰信號影響較大,且2 個目標(biāo)離子峰在激光強度達20%以上時信號較強。具體地,當(dāng)激光強度增加到60%時,[M+Na]+的響應(yīng)強度達最大,當(dāng)激光強度增加到70%時,[M+K]+的響應(yīng)強度達最大;當(dāng)激光強度超過70%時,2 個目標(biāo)離子峰的信號強度均呈現(xiàn)下降趨勢。故選擇70%的激光強度作為MALDITOF MS對Cereulide的分析條件。
2.5.1 檢出限、定量限和線性范圍
按1.3.1節(jié)中方法配制標(biāo)準(zhǔn)曲線,以HCCA為基質(zhì),采用雙鋪法2,在1.3.3.2儀器條件下對Cereulide的MALDI-TOF MS峰面積進行測定,繪制Cereulide的[M+Na]+和[M+K]+疊加峰面積(y)與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)質(zhì)量濃度(x/(ng/mL))的線性曲線,線性范圍、線性方程和相關(guān)系數(shù)見表1。在5~100 ng/mL的線性范圍內(nèi),Cereulide的2 個目標(biāo)離子峰的疊加峰面積與質(zhì)量濃度的r均>0.99,說明線性關(guān)系良好。本研究在信噪比RSN≥3條件下確定檢出限(表1),結(jié)果表明,以HCCA作為基質(zhì)的MALDI-TOF MS對Cereulide的[M+Na]+和[M+K]+檢出限分別為3.0 ng/g和5.0 ng/g。
表1 Cereulide的線性范圍、線性方程和檢出限Table 1 Linear ranges,linear equations,correlation coefficients and limits of detection and quantification for cereulide
2.5.2 加標(biāo)回收實驗和精密度結(jié)果
選擇米飯和牛奶進行低、中和高3 個質(zhì)量濃度(即20、50 ng/g和100 ng/g)進行Cereulide加標(biāo)回收實驗。按1.3.2節(jié)方法制備樣品,以HCCA為基質(zhì)采用雙鋪法2,按照1.3.3.2節(jié)儀器方法上機測定,每個樣品點靶6 次,同時用外標(biāo)法定量并計算回收率,結(jié)果見表2。結(jié)果表明,Cereulide在米飯和牛奶中的加標(biāo)回收率為73.3%~118.2%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.3%~10.9%,說明本研究建立的MALDI-TOF MS對Cereulide的定量分析檢測方法準(zhǔn)確可靠。
表2 Cereulide標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)在低、中和高3 個水平的加標(biāo)回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n =6)Table 2 Recoveries and relative deviations for cereulide at three spiked concentration levels (n=6)
將本方法用于廣州市餐飲和銷售環(huán)節(jié)中9 批次米飯和6 批次乳制品中Cereulide污染情況篩查和檢測,通過比較實際樣品在MALDI-TOF MS的質(zhì)譜離子峰和信號強度進行篩查確證,檢測結(jié)果表明,1 批次米飯樣品為陽性,其MALDI-TOF MS定量分析結(jié)果為(10.3±0.6)ng/g,陰性樣品與陽性樣品的MALDI-TOF MS圖見圖5。
圖5 米飯陰性(A)和陽性(B)樣品的MALDI-TOF MS圖Fig.5 MALDI-TOF MS spectra of negative (A) and positive (B)cooked rice samples
通過優(yōu)化基質(zhì)和儀器分析條件,建立了以HCCA為基質(zhì)的反向線性正離子模式定量測定蠟樣芽孢桿菌嘔吐毒素Cereulide的MALDI-TOF MS分析方法,將傳統(tǒng)的Bc菌株定性檢測方法轉(zhuǎn)移到其確定蛋白質(zhì)代謝物的定量分析檢測,提高了對Cereulide污染準(zhǔn)確性的判定。該方法不僅靈敏度高、篩查結(jié)果準(zhǔn)確、精密度好、節(jié)能環(huán)保高效,而且不需要內(nèi)標(biāo)即可實現(xiàn)Cereulide的定性定量分析;同時,每個樣品經(jīng)儀器分析僅需0.3 s即獲得篩查結(jié)果,可實現(xiàn)日常檢驗和應(yīng)急抽檢對大批量、多批次樣品中Cereulide的定性篩查。
MALDI-TOF MS在生物毒素分析測定方面有巨大優(yōu)勢,目前已基本可以代替?zhèn)鹘y(tǒng)生化方法,通過優(yōu)化樣品凈化條件也可為食品非法添加物的風(fēng)險評估提供快速、準(zhǔn)確和極其高效的篩查方法,但由于目前MALDITOF MS在生物毒素方面的數(shù)據(jù)庫并不完整,因此不斷完善此數(shù)據(jù)庫或開發(fā)出不依賴數(shù)據(jù)庫的鑒定方法是亟待解決的問題和研究方向。