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        熱處理對(duì)杏仁分離蛋白結(jié)構(gòu)及熱穩(wěn)定性的影響

        2024-01-09 11:58:46王彥惠吳清濁孫瑜彤劉星雨陳振家
        食品工業(yè) 2023年12期
        關(guān)鍵詞:二硫鍵巰基亞基

        王彥惠,吳清濁,孫瑜彤,劉星雨,陳振家

        山西農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院(太谷 030800)

        杏仁屬薔薇科植物[1],可藥食兩用,富含44%~61%的脂肪、16%~26%的蛋白質(zhì)、較低含量的碳水化合物[2]及多種礦物元素和維生素[3],具有豐富的營養(yǎng)價(jià)值和藥用作用[1-4]。杏仁蛋白富含人體必需的8種氨基酸[5],與總氨基酸的比值(EA/TAA)接近于國際參考模式(FAO/WHO)[4-6],是良好的食用蛋白資源。近年來,隨著現(xiàn)代社會(huì)對(duì)健康飲食需求的增加,消費(fèi)者對(duì)以“健康、天然、營養(yǎng)”為品類特征的植物蛋白飲品表現(xiàn)出極大興趣。杏仁中含有18%~24%的水溶性蛋白,在植物蛋白飲品方面具有較大的發(fā)展空間。

        杏仁乳經(jīng)過熱處理后,蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)會(huì)發(fā)生變化,進(jìn)而影響到其熱穩(wěn)定性和消化性。Devnani等[7]研究熱處理(45~90 ℃,30 min)對(duì)杏仁奶蛋白結(jié)構(gòu)的影響,結(jié)果表明,55~75 ℃的中等溫度處理會(huì)導(dǎo)致杏仁蛋白發(fā)生變性和部分聚集,85~95 ℃的較高溫度則會(huì)引起更廣泛的變性和凝膠化,并形成自支撐的弱絮狀顆粒凝膠結(jié)構(gòu)。繼續(xù)研究pH和加熱程度對(duì)杏仁蛋白結(jié)構(gòu)和性質(zhì)的影響[8],結(jié)果表明在不同pH條件下,加熱處理會(huì)使得杏仁蛋白產(chǎn)生不同的微觀結(jié)構(gòu)凝膠強(qiáng)度。

        國內(nèi)關(guān)于熱處理對(duì)API結(jié)構(gòu)和特性的影響研究鮮有報(bào)道。試驗(yàn)分析不同熱處理對(duì)API結(jié)構(gòu)變化和聚集特性規(guī)律的影響,以確保高品質(zhì)杏仁乳的生產(chǎn)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        杏仁(市售)。

        1.2 試劑

        電泳試劑(AMRESCO分裝);考馬斯亮藍(lán)G-250、牛血清蛋白(上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司);低分子量標(biāo)準(zhǔn)蛋白(上海生物化學(xué)研究所)。

        1.3 主要儀器與設(shè)備

        T18-basic高速剪切儀(德國艾卡設(shè)備有限公司);FD-1冷凍干燥機(jī)(北京博醫(yī)康技術(shù)公司);YS-04A小型高速粉碎機(jī)(北京燕山正德機(jī)械設(shè)備有限公司);UV-1200紫外可見分光光度計(jì)(上海美譜達(dá)儀器有限公司);RF5301PC熒光分光光度計(jì)(日本島津公司);Cary 60紫外可見分光光度計(jì)(美國安捷倫科技公司);ZS90納米激光粒度儀(英國馬爾文帕納科公司)。

        1.4 方法

        1.4.1 API制備

        將新鮮杏仁高速粉碎5 min,料液比1︰5(g/mL)加入石油醚,室溫下攪拌4 h,待石油醚揮發(fā)干凈后得脫脂杏仁粉。采用堿提酸沉法制備API,在50 ℃恒溫水浴下調(diào)節(jié)pH 9.0溶出分離蛋白,取上清液,調(diào)節(jié)pH 4.5使杏仁蛋白沉淀,中和溶液pH后經(jīng)真空冷凍干燥得到API[9]。參考GB 5009.5—2016《食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定》對(duì)API進(jìn)行測(cè)定,杏仁蛋白質(zhì)含量=總氮含量×5.18,經(jīng)檢驗(yàn),制備的API含量為57.766 9%,符合國標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)[10-11]。

        1.4.2 API熱處理

        配制3%的API溶液,室溫下攪拌1 h后離心(4 000 r/min、15 min),取上清液完成后續(xù)試驗(yàn)。未經(jīng)熱處理的作為對(duì)照組,試驗(yàn)組分別放于水浴鍋(65 ℃、30 min,90 ℃、15 min)和油浴鍋(121 ℃、3 min)進(jìn)行熱處理,將熱處理后的樣品進(jìn)行離心操作(10 000 r/min、15 min)并進(jìn)行理化指標(biāo)的測(cè)定。

        1.4.3 API溶解度測(cè)定

        參照Bradford法[12]測(cè)定上清液蛋白溶解度。

        1.4.4 聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝膠電泳的測(cè)定

        參考Laemmli[13]的SDS-PAGE法對(duì)API進(jìn)行分析。取上述不同處理蛋白樣品中的上清液和底部沉淀制備電泳樣品,上清液和沉淀的添加量不超過1 mg/mL(m蛋白︰m電泳液)。制得的濃縮膠濃度5%、分離膠濃度12%、樣品上樣量6 μL。電泳前設(shè)置恒壓進(jìn)行電泳[14-15]。電泳結(jié)束后,電泳膠片先固定3 h后用考馬斯亮藍(lán)G-250染色2.5 h,過夜脫色后掃描成像,此為非還原SDS-PAGE。還原SDS-PAGE需添加2%β-巰基乙醇做還原處理進(jìn)行對(duì)比[16]。

        1.4.5 游離巰基和總巰基測(cè)定

        游離巰基的測(cè)定:定量API加入反應(yīng)緩沖液A(0.1 mol/L pH 8.0磷酸鈉緩沖液,含1 mmol/L EDTA),室溫下攪拌2 h,10 000×g離心10 min,取5.5 mL上清液加入0.1 mL Ellman’s試劑溶液,混合均勻后室溫避光放置15 min,在波長412 nm下測(cè)量吸光度;空白加5.5 mL反應(yīng)緩沖液A;根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線換算表面巰基含量。總巰基測(cè)定與游離巰基的測(cè)定類似,只需將反應(yīng)緩沖液換為緩沖液B(0.1 mol/L、pH 8.0磷酸鈉緩沖液,含1 mmol/L EDTA,8 mol/L尿素),其他步驟同游離巰基的測(cè)定[17]。

        1.4.6 熒光光譜分析

        對(duì)熱處理后的API上清液進(jìn)行測(cè)定。設(shè)置熒光光譜激發(fā)波長295 nm,發(fā)射光譜掃描范圍為300~400 nm,激發(fā)狹縫和發(fā)射狹縫寬均為3 nm[18]。

        1.4.7 紅外光譜分析

        參考Qi等[19]的方法,對(duì)熱處理離心后的白色沉淀凍干物進(jìn)行紅外測(cè)定。取5 mg凍干樣品與500 mg溴化鉀混合研磨(1︰100),壓片機(jī)壓成薄片。設(shè)置紅外光譜儀的分辨率4 cm-1,波數(shù)范圍400~4 000 cm-1,掃描次數(shù)32次。采用Peakfit 4.12(Systat Software,Inc.,San Jose,USA)軟件對(duì)酰胺Ⅰ區(qū)進(jìn)行擬合分析,用高斯解卷積方法對(duì)峰進(jìn)行處理并進(jìn)行2階導(dǎo)數(shù)擬合。

        1.4.8 粒徑、電位測(cè)定

        用Zetasizer Nano ZS90 instrument對(duì)熱處理離心后的API上清液進(jìn)行測(cè)定[20]。測(cè)定前用0.45 μm水系微孔濾膜過濾。

        1.4.9 紫外分析

        在近紫外光區(qū)對(duì)熱處理離心后的API上清液進(jìn)行掃描測(cè)試,掃描速度210 nm/min,對(duì)吸收曲線求2階倒數(shù),得到相應(yīng)導(dǎo)數(shù)光譜[21]。

        1.4.10 數(shù)據(jù)分析

        所有試驗(yàn)均設(shè)3次重復(fù),數(shù)據(jù)進(jìn)行均值與方差分析并以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。通過單因素方差分析對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行差異顯著性分析。所使用的分析軟件為SPSS 18.0,作圖軟件為Origin 8.0。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 杏仁分離蛋白溶解度

        圖1是不同熱處理?xiàng)l件下的API溶解度的變化情況。65 ℃、30 min處理的杏仁蛋白溶解度顯著上升,而121 ℃、6 min處理的蛋白溶解度顯著下降(P<0.05),這是因?yàn)榧訜釡囟瘸^變性溫度,蛋白發(fā)生變性聚集[22],同時(shí)蛋白亞基在熱作用下發(fā)生解離并選擇性進(jìn)行疏水締合,導(dǎo)致蛋白聚集沉淀,從而導(dǎo)致溶解度下降[17,23]。

        圖1 不同熱處理?xiàng)l件下API溶解度

        2.2 SDS-PAGE凝膠電泳分析

        由圖2和圖3可知,熱處理API上清液和沉淀的非還原和還原電泳圖譜有明顯差異,這說明API亞基結(jié)構(gòu)中存在分子間二硫鍵,還原劑β-巰基乙醇的加入致使二硫鍵被打斷進(jìn)而造成亞基分布的差異。由圖2(a)可知,90 ℃、15 min和121 ℃、3 min處理使得亞基間同時(shí)發(fā)生解離和締合,其中65.3,62.8和36.6 kDa條帶顏色變淺,部分消失并形成數(shù)條新的電泳條帶(97.4,41.2和66.2 kDa)。這說明部分亞基間二硫鍵斷裂的同時(shí)又形成新的分子間二硫鍵。由圖2(b)可知,還原電泳條帶基本相似,這說明熱處理雖然改變亞基間二硫鍵的形成方式和模式,但并未改變亞基組成也未造成亞基間的共價(jià)結(jié)合。圖3(a)則表明雖然熱處理同樣改變聚集并發(fā)生沉淀的杏仁蛋白亞基間的二硫鍵作用,但其影響程度小于可溶蛋白,這說明蛋白的聚集沉淀減弱了熱處理效應(yīng)。對(duì)比圖2(b)和圖3(b)可知,熱處理造成API沉淀的亞基組成相似,但亞基比例含量有較大差異且溫度呈正相關(guān)。其中,38.9 kDa和41.2 kDa這2個(gè)條帶在上清液中較寬且顏色很深,而在圖3(b)中變細(xì),且隨溫度升高逐漸變淺。62.8 kDa和65.3 kDa這2個(gè)條帶在121 ℃、3 min時(shí)甚至全部消失。這說明API亞基受熱處理的影響不同,相比22 kDa亞基,38.9,41.2,62.8和65.3 kDa在熱處理過程中更易發(fā)生聚集沉淀。同時(shí)隨溫度上升,所造成亞基參與數(shù)量越多且聚集程度越高。

        某公路在2002年開始通車,運(yùn)營了16年,現(xiàn)階段,已經(jīng)完全進(jìn)入到大修時(shí)期,在這16年期間,該公路總共經(jīng)歷數(shù)次保小修與中修,路面狀況比較差,使得養(yǎng)護(hù)維修難度不斷增強(qiáng),再加上該公路路面寬度大,養(yǎng)護(hù)過程之中,需要耗費(fèi)許多人力與物力。為了保證該公路大中修工程養(yǎng)護(hù)效率得到全面提升,養(yǎng)護(hù)單位需要仔細(xì)分析公路路面基礎(chǔ)信息數(shù)據(jù),并且結(jié)合公路施工技術(shù)指標(biāo),包括公路路面結(jié)構(gòu)特性與以往的養(yǎng)護(hù)情況等,對(duì)需要養(yǎng)護(hù)的路段進(jìn)行全面勘察,結(jié)合公路大中修養(yǎng)護(hù)管理單位提供的意見,了解公路養(yǎng)護(hù)需求,組織專業(yè)的養(yǎng)護(hù)人員實(shí)施養(yǎng)護(hù)。

        圖2 不同熱處理?xiàng)l件下上清液API非還原(N)和還原(R)SDS-PAGE

        圖3 不同熱處理?xiàng)l件下沉淀API非還原(N)和還原(R)SDS-PAGE

        2.3 總巰基和游離巰基測(cè)定

        總巰基包括游離巰基和埋藏在蛋白質(zhì)內(nèi)部的巰基[24],巰基是形成二硫鍵的官能團(tuán),而二硫鍵是維持蛋白質(zhì)分子三級(jí)結(jié)構(gòu)的重要作用力[25]。由圖4可知,65 ℃、30 min處理下API游離巰基含量最高,且隨著熱處理組別溫度的升高,API游離巰基含量顯著下降(P<0.05)。這可能是因?yàn)榈蜏丶訜釋?dǎo)致原本存在的二硫鍵斷裂或嵌入分子中的巰基被釋放,蛋白質(zhì)分子發(fā)生重鏈解折疊[26-27]??値€基在65 ℃、30 min處理下含量最低。游離巰基與總巰基的比值能夠反映蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)的解折疊程度,比值越大,蛋白的解折疊程度越強(qiáng)[28-29]。圖4表明65 ℃、30 min處理下,API三級(jí)結(jié)構(gòu)的解折疊程度最大,分子舒展。隨著溫度的升高,總巰基含量明顯增加,維系蛋白質(zhì)亞基間的二硫鍵斷裂,這本應(yīng)同時(shí)增加游離巰基的數(shù)量,但變性后的蛋白亞基在疏水作用的推動(dòng)下發(fā)生大量聚集,使得已暴露的游離巰基重新被包埋,API的解折疊程度降低。熱處理導(dǎo)致二硫鍵形成的游離巰基大多會(huì)形成新的二硫鍵以推動(dòng)聚集體的形成[17]。

        圖4 不同熱處理?xiàng)l件下API總巰基和游離巰基的含量和比例

        2.4 內(nèi)源性熒光光譜分析

        內(nèi)源性熒光光譜主要用于檢測(cè)蛋白質(zhì)的三級(jí)結(jié)構(gòu)變化[30]。由圖5可知,隨著熱處理溫度的升高,API內(nèi)源性最大熒光峰位從波長347 nm紅移到波長353 nm,這說明65 ℃、15 min和90 ℃、3 min的熱處理導(dǎo)致杏仁蛋白質(zhì)分子在溶液中的暴露程度增加,芳香殘基從蛋白質(zhì)內(nèi)部的疏水環(huán)境轉(zhuǎn)移到分子表面極性較強(qiáng)的環(huán)境中[17,31]。121 ℃、3 min時(shí)最大熒光峰位藍(lán)移,說明API中色氨酸殘基微環(huán)境非極性增強(qiáng)[32-33],這可能與高溫?zé)崽幚碚T導(dǎo)色氨酸殘基通過疏水側(cè)鏈的蛋白質(zhì)聚集有關(guān)[34]。

        圖5 不同熱處理?xiàng)l件下API的內(nèi)源熒光發(fā)射圖譜

        2.5 紅外光譜分析

        酰胺Ⅰ區(qū)常被用于分析蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)變化。參考Long等[35]的研究方法對(duì)酰胺Ⅰ帶進(jìn)行各峰歸屬,1 600~1 625 cm-1為分子間β-折疊,1 626~1 640 cm-1為分子內(nèi)β-折疊,1 641~1 650 cm-1為無規(guī)則卷曲,1 651~1 660 cm-1為α-螺旋,1 661~1 685 cm-1為β-轉(zhuǎn)角,1 686~1 700 cm-1為反向平行β-折疊[36-37]。

        由圖6可知,不同熱處理?xiàng)l件下蛋白質(zhì)的吸收光不同,有波數(shù)的變化也有波峰的偏移,說明API的二級(jí)結(jié)構(gòu)確實(shí)發(fā)生相應(yīng)的變化。從圖7可知,PI的二級(jí)結(jié)構(gòu)主要為β-折疊和β-轉(zhuǎn)角。65 ℃、30 min,90 ℃、15 min和121 ℃、3 min的熱處理導(dǎo)致API出現(xiàn)無規(guī)則卷曲,這表明熱處理?xiàng)l件下API的二級(jí)結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性下降,β-折疊等結(jié)構(gòu)被破壞[38],蛋白質(zhì)從有序結(jié)構(gòu)向無序轉(zhuǎn)變[39]。且β-折疊結(jié)構(gòu)變化較為復(fù)雜,包括分子內(nèi)、分子間和方向平行等多種形式。結(jié)合圖7可知,對(duì)照組中的β-折疊主要以反向平行β-折疊為主。隨著處理組別溫度的升高,反向平行β-折疊顯著減少并轉(zhuǎn)化為分子間和分子內(nèi)的平行β-折疊。總之,熱處理使得維持APIβ-折疊結(jié)構(gòu)中氫鍵斷裂,由相對(duì)有序的β-折疊結(jié)構(gòu)逐漸轉(zhuǎn)變?yōu)闊o序的β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu),API變性。

        圖6 不同熱處理后API的酰胺I帶曲線擬合圖譜

        圖7 不同熱處理后API二級(jí)結(jié)構(gòu)的含量變化

        2.6 Zeta電位分析

        Zeta電位的絕對(duì)值大小直接關(guān)系靜電排斥相互作用的強(qiáng)弱及溶液中顆粒之間的空間大小[40]。Zeta電位的絕對(duì)值越高,溶液體系越均勻穩(wěn)定[41-42]。絕對(duì)值越低則表明懸浮顆粒易于凝結(jié)或絮凝[43]。由圖8可知,熱處理?xiàng)l件為90 ℃、30 min和121 ℃、3 min時(shí),Zeta電位絕對(duì)值小于30 mV,蛋白表面所帶的同性電荷較少,分子間存在聚集沉淀趨勢(shì)[44],這可能是因?yàn)闊崽幚硎沟鞍踪|(zhì)結(jié)構(gòu)發(fā)生去折疊,原本暴露在表面的帶電氨基酸隨蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變而發(fā)生內(nèi)折,表面靜電荷密度減小[45]。

        圖8 不同熱處理?xiàng)l件下API電位的變化

        2.7 粒徑分析

        乳液的穩(wěn)定性在很大程度上受平均粒徑的影響,通常情況下,乳液粒徑越小越穩(wěn)定[46]。API粒徑的變化主要是由熱處理導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子內(nèi)的交聯(lián)和聚集引起的[47-48]。由圖9可知,對(duì)照組和65 ℃、30 min處理的API只出現(xiàn)有一個(gè)波峰,位于100~1 000 nm之間,平均粒徑分別為198.3 nm和183.6 nm。而90 ℃、15 min和121 ℃、3 min處理下API表現(xiàn)出多峰結(jié)構(gòu)且分布范圍變寬,這表明升溫處理導(dǎo)致蛋白質(zhì)解離破碎成更小的聚集體,且當(dāng)熱處理?xiàng)l件為121 ℃、3 min時(shí),API的平均粒徑顯著增大至393.0 nm(P<0.05),這是因?yàn)樾滦纬傻木奂w在熱力學(xué)上并不穩(wěn)定,表面基團(tuán)在疏水推動(dòng)力和高溫作用下重聚的可能性增加[24]。

        圖9 不同熱處理?xiàng)l件下API粒徑分布和平均粒徑圖

        2.8 紫外吸收光譜分析

        紫外吸收光譜可以反映蛋白質(zhì)近紫外區(qū)域的三級(jí)結(jié)構(gòu)和聚集狀態(tài),用于研究蛋白質(zhì)構(gòu)象變化[49]。與25℃對(duì)照組相比,65 ℃、30 min和90 ℃、15 min下的表征色氨酸和酪氨酸殘基的紫外吸收峰均發(fā)生紅移,這表明疏水區(qū)域的芳香族氨基酸發(fā)生不同程度的暴露,部分酪氨酸殘基轉(zhuǎn)移到極性微環(huán)境中[50]。由圖10可知,121 ℃、3 min時(shí)紫外吸光度基本消失,這可能是因?yàn)榈鞍踪|(zhì)高度折疊變性,生色基團(tuán)被完全包裹或熱處理導(dǎo)致生色氨基酸基團(tuán)發(fā)生氧化。

        圖10 不同熱處理?xiàng)l件下杏仁蛋白的紫外2階導(dǎo)數(shù)光譜

        3 結(jié)論

        熱處理對(duì)杏仁蛋白的結(jié)構(gòu)及熱穩(wěn)定性有較大影響。121 ℃、3 min的超高溫?zé)崽幚頃?huì)導(dǎo)致杏仁分離蛋白發(fā)生不可逆變性,β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)則卷曲含量增加,粒徑變大,溶解度降低。而65 ℃、15 min模擬巴氏加熱的熱處理方式可通過使杏仁分離蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生一定程度解折疊,從而提高其熱穩(wěn)定性。雖然不同熱處理方式改變亞基間二硫鍵的形成方式和模式,但實(shí)際上并未改變亞基組成也未造成亞基間的共價(jià)結(jié)合。試驗(yàn)結(jié)果為實(shí)踐中生產(chǎn)杏仁蛋白乳制品提供理論基礎(chǔ)。

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