馬承紅,王姜儼,蘇丹丹,謝佑紅,唐琳,周天宇,董群偉,孫平
1.廣東藥科大學(xué)附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌科,廣東 廣州 510062;
2.廣東藥科大學(xué)附屬第一醫(yī)院信息科,廣東 廣州 510062;
3.廣東藥科大學(xué)附屬第一醫(yī)院骨科,廣東 廣州 510062;
4.廣東省云浮市中醫(yī)院,廣東 云浮 527300
絕經(jīng)后骨質(zhì)疏松癥(postmenopausal osteoporosis,PMO)是一種因雌激素降低導(dǎo)致低骨量及骨折風(fēng)險顯著增加為特點的代謝性骨病[1]。已證實,腸道菌群是造成PMO骨代謝異常的重要因素。雌激素缺乏會導(dǎo)致腸道中有益菌群定植減少,有害菌定植增加,從而引發(fā)一系列促進骨吸收的免疫炎癥反應(yīng)[2-4]?!澳I藏精、主骨、生髓”是中醫(yī)經(jīng)典理論之一。補腎中藥是治療PMO的常見中藥類型,其在影響腸道菌群防治骨質(zhì)疏松中發(fā)揮了重要作用[5]。齊墩果酸(oleanolic acid,OA)是補腎中藥女貞子、墨旱蓮等的主要活性成分之一,具有潛在的抗炎、抗氧化作用。研究表明其對骨質(zhì)疏松癥的治療起到積極作用[6-10]。本研究以去卵巢(OVX)小鼠構(gòu)建PMO模型,通過觀察OA干預(yù)后OVX小鼠骨量、炎性因子及腸道菌群的變化,進一步探討OA防治OVX小鼠骨量丟失的效果及其作用機制,以期為OA防治PMO提供新的思路。
1.1 實驗動物、材料與試劑 19 只SPF 級11 周齡C57BL6/J雌性小鼠購于南方醫(yī)科大學(xué)實驗動物管理中心,動物許可證號:SYXK(粵)2017-0124。置于廣東藥科大學(xué)附屬第一醫(yī)院實驗動物中心SPF級環(huán)境中進行飼養(yǎng):給予小鼠普通飼料,室溫(22±2)℃,相對濕度40%~65%,12 h 光照,12 h 黑暗,保持良好通風(fēng),定時紫外線消毒,自由進水和進食。OA 試劑購于上海麥克林生化科技有限公司(CAS 號508-02-1);二甲基亞砜由天津市大茂化學(xué)試劑廠提供(批號00001);水合氯醛由深圳希景生物提供(批號Lot.22S04X17);0.9%氯化鈉溶液由四川科倫藥業(yè)股份有限公司提供(批號國字準號H20083400);ELISA檢測試劑盒購于江蘇酶免實業(yè)有限公司(批號20211123M)。
1.2 實驗動物分組及造模 所有小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d 后隨機分為假手術(shù)組(SHAM 組,n=6)、OVX 組(n=6)和OA 組(n=7)。10%水合氯醛以4 μL/g 麻醉OVX組和OA組小鼠,取背部正中旁側(cè)1 cm切口進入腹腔,結(jié)扎雙側(cè)輸卵管并切除雙側(cè)卵巢。SHAM 組按上述方法進行手術(shù),保留雙側(cè)卵巢,切除卵巢旁邊同卵巢等大的脂肪組織。OA組腹腔注射OA(10 mg/kg)[8],SHAM 組和OVX 組腹腔注射等劑量生理鹽水。隔日1次,實驗期12周。實驗結(jié)束后,無菌環(huán)境下取小鼠糞便用于16S rRNA 基因測序;小鼠眼眶血行ELISA 檢測;左側(cè)股骨行Micro-CT測定。本研究中關(guān)于動物的處置和操作均符合廣東藥科大學(xué)附屬第一醫(yī)院動物實驗倫理要求。
1.3 左側(cè)股骨Micro-CT測定 將肌肉筋膜剔除干凈的小鼠左側(cè)股骨統(tǒng)一方向擺入西門子Inveon Micro-CT 儀,以管電壓80 kV、管電流500 μA 為掃描參數(shù)對其進行掃描,掃描儀自帶軟件分析所獲取的圖像信息。從股骨遠端生長板遠端0.5 mm 為起點,提取其上方80 層骨組織的圖像信息,對去除皮質(zhì)骨的感興趣區(qū)域(region of interest,ROI)行三維重建并分析以下指標(biāo):骨密度(bone mineral density,BMD)、骨體積分數(shù)(bone volume/tissue volume,BV/TV)、骨表面積骨體積比值(bone surface/bone volume,BS/BV)、骨小梁數(shù)量(trabecular number,Tb.N)、骨小梁厚度(trabecular thickness,Tb.Th)及骨小梁分離度(trabecular separation,Tb.Sp)。
1.4 ELISA測定 采用摘眼球法收集小鼠血液,4℃、6 000 r/min離心10 min分離獲得血清。小鼠血清細胞因子的含量采取ELISA測定方法,具體操作步驟按試劑盒說明書進行。測量指標(biāo)如下:β-膠原降解產(chǎn)物(β-collagen degradation products,β-CTX)、1 型原膠原氨基端前肽(procollagen type 1 N-prepeptide,P1NP)、抗酒石酸酸性磷酸酶5b(tartrate resistant acid phosphatase 5b,TRACP5b)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factorα,TNF-α)、白細胞介素-10 (interleukin-10,IL-10)、白細胞介素-6(interleukin-6,IL-6)和脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)。
1.5 腸道菌群16S 擴增子測序 收集小鼠糞便于無菌EP管中,-80℃條件下冷凍保存,糞菌樣本使用E.Z.N.A.?soil DNA ki (Omega Bio-tek Norcross,GA,U.S.)提取DNA,對符合條件的DNA 用PCR 儀(ABI GeneAmp?9700型)擴增16S rRNA基因中的V3-V4區(qū)域,每個樣本重復(fù)3次,最后置于4℃保存。引物為:上游引物338F (5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3')、下游引物806R (5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3')。2%瓊脂糖凝膠回收同一樣本的PCR 產(chǎn)物混合物,并對其進行檢測和提純。純化后的PCR 產(chǎn)物用NEXTFLEX?Rapid DNA-Seq Kit 進行建庫,Illumina 公司Miseq PE300平臺測序。
1.6 統(tǒng)計學(xué)方法 Micro-CT 和ELISA 數(shù)據(jù)采用R軟件分析,樣本符合正態(tài)分布和方差齊性時,組間比較采用單因素ANOVA 檢驗;否則,組間比較采用Kruskal-Wallis 秩和檢驗。腸道菌群數(shù)據(jù)于美吉生物云平臺上分析,Ace、Chao和Shannon 指數(shù)采用mothur軟件計算Alpha 多樣性;采用基于Bray-Curtis 距離矩陣算法的主坐標(biāo)分析(PCoA 分析)檢驗樣本間微生物群落結(jié)構(gòu)的差異性。組間微生物群落結(jié)構(gòu)差異程度采用ANOSIM 非參數(shù)檢驗;Alpha 多樣性和菌群豐度的組間差異采用Wilxocon 秩和檢驗。以P<0.05 表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 OA 對小鼠骨微結(jié)構(gòu)及指標(biāo)的影響 如圖1 所示,OVX 組骨小梁數(shù)量顯著減少,骨微結(jié)構(gòu)受到破壞,OA 組骨小梁數(shù)量較OVX 組增加,骨微結(jié)構(gòu)破壞減少。如圖2 所示,與SHAM 組相比,OVX組BMD、BV/TV 和Tb.N 明顯降低,Tb.Sp 明顯增高,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);BS/BV 和Tb.Th 變化不明顯,差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。與OVX組相比,OA 組BMD 和BV/TV 明顯增高,Tb.Sp 明顯降低,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),Tb.N、BS/BV 和Tb.Th 變化不明顯,差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。
圖1 左側(cè)股骨遠端三維重建圖Figure 1 Three-dimensional reconstruction of the left distal femur
圖2 骨微結(jié)構(gòu)參數(shù)變化Figure 2 Variation in bone microstructural parameters
2.2 OA 對小鼠血清ELISA 指標(biāo)的影響 如圖3所示,與SHAM 組相比,OVX 組促炎因子TNF-α、IL-6、骨吸收指標(biāo)TRACP5b、β-CTX、骨形成指標(biāo)P1NP 和LPS 明顯增高,抗炎因子IL-10 明顯降低,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);與OVX組相比,OA組P1NP、TRACP5b、β-CTX、TNF-α、IL-6、和LPS明顯降低,IL-10 明顯增高,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01或<0.05)。
2.3 OA對小鼠腸道菌群的影響 由圖4A 可知,三組小鼠腸道菌群中共有的OTU為437個,其中24個為SHAM 組所特有,30 個為OVX 組所特有,10 個為OA 組所特有,OVX 組的OTU 數(shù)量最多,OA 組最少。本研究通過PCoA 分析可知,SHAM 組主要分布于右下象限,OVX組主要分布于右上象限,OA組主要分布于左下象限,且P=0.001,R 值為0.837,表明可明顯區(qū)別三組樣本(圖4B)。隨著測序深度加大,在OTU水平的Shannon指數(shù)不再增加,表明測序數(shù)據(jù)量合理,能夠反映樣本中絕大多數(shù)的微生物多樣性信息(圖4C)。由圖4D 可知,與SHAM 組相比,OVX 組Chao、Ace 和Shannon 指數(shù)變化不明顯,差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與OVX 組相比,OA 組Chao 和Ace 指數(shù)明顯降低,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),Shannon 指數(shù)變化不明顯,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。
圖4 各組腸道微生物組分析Figure 4 Analysis of the gut microbiome of each group
如圖5A 所示,腸道菌群在門水平的相對豐度排名前7 的菌群分別為擬桿菌門(Bacteroidota)、厚壁菌門(Firmicutes)、脫硫桿菌門(Desulfobacterota)、疣微菌門(Verrucomicrobiota)、放線菌門(Actinobacteriota)、彎曲菌門(Campilobacterota)及變形菌門(Patescibacteria)。其中,OVX 組Actinobacteriota 豐度較SHAM 組明顯降低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),OA 組Actinobacteriota 豐度較OVX 組明顯增高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)(圖5B)。腸道菌群在屬水平的相對豐度如圖6A所示。與SHAM組相比,Staphylococcus、Coriobacteriaceae_UCG-002 和Enterorhabdus 豐度在OVX 組中明顯降低,Odoribacter 豐度明顯增高,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01 或<0.05);與OVX 組相比,OA 組Staphylococcus、Coriobacteriaceae_UCG-002和Enterorhabdus 豐度明顯增高,Odoribacter 豐度明顯降低,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01或<0.05)(圖6B)。
圖5 各組小鼠腸道菌群門水平上差異分析Figure 5 Difference of the gut microbiota of each group at the phylum level
圖6 各組小鼠腸道菌群屬水平差異分析Figure 6 Difference of the gut microbiota of each group at the genus level
近年來,越來越多的研究表明,腸道菌群不僅可以調(diào)節(jié)局部反應(yīng),還可以調(diào)節(jié)包括骨代謝在內(nèi)的全身反應(yīng),影響宿主代謝、免疫反應(yīng)和激素分泌[11]。腸道菌群紊亂會造成成骨細胞和破骨細胞之間的失衡,導(dǎo)致骨量減少、骨質(zhì)疏松風(fēng)險增加[12]。中醫(yī)藥在預(yù)防和治療PMO 中起著積極作用,OA通過抑制破骨細胞生成和刺激成骨細胞生成發(fā)揮骨保護作用[6-8]。然而目前尚無報道OA對OVX小鼠腸道菌群的影響。因此,本實驗觀察了OA干預(yù)OVX小鼠其骨量、炎性因子及腸道菌群的變化。
TRACP5b是骨吸收敏感指標(biāo),能反應(yīng)破骨細胞活性[13]。β-CTX和P1NP 是目前國際公認的敏感性相對較好地反映骨吸收與骨形成的指標(biāo)[14]。本研究與既往研究一致[8],OA 可顯著增加OVX 小鼠股骨BMD 和BV/TV,顯著降低Tb.Sp 和血清TRACP5b、β-CTX 及P1NP含量,提示OA可增加OVX小鼠骨量,抑制骨吸收,促進骨形成,降低骨轉(zhuǎn)換,從而延緩骨丟失。
TNF-α可促進破骨細胞生成,間接激活骨吸收陷窩的形成,使破骨細胞骨吸收功能增強[15]。IL-6 能夠刺激破骨細胞活性,抑制成骨細胞活性,從而增加骨吸收,促進骨量流失,誘發(fā)骨質(zhì)疏松[16]。IL-10 對破骨細胞生成有明顯的抑制作用[17]。LPS是革蘭氏陰性細菌細胞壁的主要成分,可促使炎性細胞因子產(chǎn)生,損害腸道屏障,導(dǎo)致腸道通透性增高[18-19]。本實驗發(fā)現(xiàn),OA 能夠顯著降低OVX 小鼠血清IL-6、TNF-α和LPS水平,顯著升高IL-10水平,提示OA可降低OVX小鼠炎性反應(yīng),改善腸道通透性,發(fā)揮抗骨質(zhì)疏松作用。
α多樣性指數(shù)(Chao、Ace、Shannon 指數(shù))代表了小鼠腸道菌群整體上的組成差異,但不能代表細菌相對豐度的差異。因此,本團隊更深層次地探究了菌群在門和屬級別的差異。有研究發(fā)現(xiàn),在門水平,Actinobacteriota 豐度與BMD 呈正相關(guān)[20-21],與本實驗一致。OVX小鼠腸道菌群中Actinobacteriota豐度顯著升高,OA 干預(yù)可顯著降低Actinobacteriota 豐度。在屬水平,Odoribacter豐度與TNF-α呈顯著正相關(guān)[22]。Staphylococcus可產(chǎn)生具有抗菌活性的葡萄球菌素,該類物質(zhì)具有潛在抗炎作用[23]。在葡聚糖硫酸鈉(DSS)誘導(dǎo)的小鼠潰瘍性結(jié)腸炎模型中,Coriobacteriaceae_UCG-002 豐度與血清中IL-6、TNF-α和IL-1β水平呈負相關(guān),與IL-10 水平呈正相關(guān)[24]。已證實Enterorhabdus 豐度與促炎因子水平呈負相關(guān),表明其在腸道穩(wěn)態(tài)中起積極作用[25]。本實驗發(fā)現(xiàn)OVX 小鼠的Odoribacter豐度顯著增加,Staphylococcus、Coriobacteriaceae_UCG-002 和Enterorhabdus 豐度顯著降低,表明Actinobacteriota、Staphylococcus、Coriobacteriaceae_UCG-002和Enterorhabdus可能是防治骨質(zhì)疏松的有益菌,而Odoribacter可能是促使骨質(zhì)疏松發(fā)生的有害菌,OA干預(yù)可有效改善這種菌群結(jié)構(gòu),提示這可能是OA防治PMO的潛在作用靶點之一。
綜上所述,OA 能夠增加OVX 小鼠骨量、延緩骨丟失,其機制可能是通過改善腸道通透性、調(diào)節(jié)腸道菌群中Actinobacteriota、Staphylococcus、Coriobacteriaceae_UCG-002、Enterorhabdus和Odoribacter豐度及結(jié)構(gòu)、抑制炎性反應(yīng)實現(xiàn)的。本實驗尚存在一定局限,即未驗證OA 通過炎性因子及Actinobacteriota、Staphylococcus、Coriobacteriaceae_UCG-002、Enterorhabdus、Odoribacter 調(diào)控骨吸收的分子機制,需后續(xù)進一步研究證實。