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        過表達Sirt3通過Keap1/Nrf2通路調(diào)控高糖應激誘導的腎小管上皮細胞衰老*

        2023-12-04 02:10:10王自強王穎趙坤霄王保興李英
        中國病理生理雜志 2023年11期
        關鍵詞:高糖腎小管質(zhì)粒

        王自強, 王穎, 趙坤霄, 王保興, 李英△

        (1河北醫(yī)科大學第三醫(yī)院腎內(nèi)科,河北 石家莊 051000;2海南醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,海南 海口 570102)

        高糖誘導細胞產(chǎn)生過多的活性氧(reactive oxygen species, ROS),從而加速糖尿病腎?。╠iabetic nephropathy, DN)的進展[1-2]。過量的ROS產(chǎn)生細胞毒性,破壞蛋白質(zhì)和DNA,激活DNA損傷反應,誘導應激性衰老[3]。既往研究表明,在DN早期,腎小管上皮細胞即處于持續(xù)氧化應激狀態(tài),繼而呈現(xiàn)增生、肥大等應激性衰老過程[4]。

        沉默信息調(diào)節(jié)因子(silent information regulator,sirtuin/Sirt)家族屬于第Ⅲ類組蛋白去乙酰化酶,依賴煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)驅(qū)動其去乙?;富钚裕?]。在哺乳動物中,已鑒定出7個Sirt2同源物(Sirt1~7),在生物調(diào)控機制和亞細胞定位上各存在差異。Sirt3定位于線粒體,參與衰老相關的病理過程,如心血管和神經(jīng)退行性疾病、代謝綜合征等[6]。新近研究表明,Sirt3通過抗氧化機制發(fā)揮抗衰老作用[7]。我們前期研究表明,高糖環(huán)境下HK-2細胞中Sirt3的表達顯著降低[8]。通過上調(diào)Sirt3的表達可抑制高糖誘導的氧化應激和細胞凋亡過程[9]。Kelch樣ECH關聯(lián)蛋白1(Kelch-like ECH-associated protein 1, Keap1)/核因子E2相關因子2(nuclear factor E2-related factor 2, Nrf2)通路是調(diào)控氧化還原平衡的重要信號通路,而Nrf2介導的抗氧化途徑被破壞是導致細胞衰老的驅(qū)動力[10]。那么,Sirt3在高糖誘導的應激性衰老的過程中是否也起到保護作用,Keap1/Nrf2通路是否參與該過程,值得進一步探索。本研究擬觀察Sirt3在高糖刺激誘導的氧化應激和應激性衰老中的作用,并進一步探討其作用是否是通過影響Keap1/Nrf2通路的活性來實現(xiàn)的。

        材料和方法

        1 試劑耗材

        D-葡萄糖(Sigma);DMEM培養(yǎng)基、Lipofectmine 3000和P3000(Invitrogen);β-actin抗體(Proteintech);Sirt3、P16、P21、Nrf2、血紅素加氧酶(heme oxygenase 1, HO-1)、醌氧化還原酶1(NADPH quinone oxidoreductase 1, NQO1)、Keap1和histone H3抗體(Abcam);pCMV3載體質(zhì)粒和pCMV3-Sirt3質(zhì)粒(Sino Biological);衰老相關β-半乳糖苷酶(senescenceassociated β-galactosidase, SA-β-Gal)染色試劑盒和ROS測定試劑盒(Solarbio);Nrf2抑制劑ML385(Med-ChemExpress);反向轉錄系統(tǒng)和qPCR Master Mix(Promega);細胞核/質(zhì)分離試劑盒(Invent Biotechnologies)。

        2 細胞培養(yǎng)與分組

        人近端小管上皮細胞HK-2細胞(American Type Culture Collection),培養(yǎng)環(huán)境:37 ℃,5% CO2, 95%空氣。當細胞生長至60%左右時,于指定時間點按照細胞分組給予不同的刺激。細胞分組1:擬觀察HK-2細胞在高糖環(huán)境下培養(yǎng)6、12、24、48、72 h時相關指標表達的變化。細胞分為正常糖(normal glucose,NG; 葡萄糖濃度為5.5 mmol/L)對照組、甘露醇高滲對照(甘露醇濃度24.5 mmol/L,葡萄糖濃度5.5 mmol/L)組和高糖(high glucose,HG;葡萄糖濃度為30 mmol/L)組,分別培養(yǎng)6、12、24、48、72 h。細胞分組2:為了觀察過表達Sirt3對高糖環(huán)境下HK-2細胞氧化應激、應激性衰老及相關通路的影響,將細胞分為NG(葡萄糖濃度為5.5 mmol/L)組、HG(葡萄糖濃度為30 mmol/L)組、高糖+空載質(zhì)粒轉染(HG+vector)對照組、高糖+轉染Sirt3質(zhì)粒(HG+Sirt3)組,各組均刺激48 h。細胞分組3:為了研究阻斷Keap1/Nrf2通路后,過表達Sirt3對高糖環(huán)境下HK-2細胞應激性衰老等蛋白表達的影響,將細胞分為NG(葡萄糖濃度為5.5 mmol/L)組、HG(葡萄糖濃度為30 mmol/L)組、HG+Sirt3組、高糖+轉染Sirt3質(zhì)粒+ML385(HG+Sirt3+ML385)組,各組均在刺激48 h后,進行相關檢測。

        3 實驗方法

        3.1 SA-β-Gal染色 使用SA-β-Gal染色試劑盒檢測細胞衰老。HK-2細胞經(jīng)相應刺激后,PBS洗滌兩次,室溫下4%甲醛固定15 min, PBS洗滌,用1 mL新鮮制備的SA-β-Gal染色液[包含溶液A(10 μL)、溶液B(10 μL)、染色溶液C(930 μL)和X-Gal溶液(50 μL),終濃度為1 mg/mL]于37 ℃無CO2培養(yǎng)箱中孵育過夜。普通光學顯微鏡下觀察。

        3.2 細胞內(nèi)ROS檢測 HK-2細胞以約1×106的密度傳代至6孔板,進行細胞爬片,予不同刺激結束后。采用活性氧檢測試劑盒,用10 μmol/L 2′、7′-二氯熒光素二乙酸酯(DCHF-DA)檢測細胞內(nèi)ROS水平。具體步驟:PBS洗滌細胞,用預先配制的DCFHDA染色30 min,PBS避光清洗,于熒光顯微鏡下觀察。綠光熒光強度與ROS水平呈正比。

        3.3 Western blot檢測相關蛋白的表達 HK-2細胞刺激結束后,用含有蛋白酶和磷酸酶抑制劑的RIPA裂解緩沖液提取總蛋白,核蛋白提取使用細胞核/質(zhì)分離試劑盒,BCA法測定蛋白濃度,蛋白質(zhì)樣品中加入SDS緩沖液,100 ℃變性7 min,-20 ℃保存。采用8%~12%的SDS-PAGE進行蛋白分離,轉膜,5%脫脂牛奶37 ℃封閉1 h。4 ℃過夜孵育Ⅰ抗 (兔抗Sirt3、HO-1、P16、P21、Keap1及Nrf2多克隆抗體均1∶1 000稀釋,兔抗NQO1多克隆抗體1∶10 000稀釋,兔抗β-actin多克隆抗體1∶2 000稀釋)。次日,TBST洗滌(3×15 min),37 ℃條件下孵育Ⅱ抗(1∶5 000) 1 h,TBST洗滌(3×15 min)。新鮮配置ECL發(fā)光液,Odyssey FC成像系統(tǒng)顯色,ImageJ軟件分析。

        3.4 RNA提取及RT-qPCR分析 TRIzol試劑提取細胞總RNA,cDNA試劑盒合成cDNA,采用qPCR Master Mix進行qPCR。反應條件:95 ℃ 30 s;95 ℃10 s,60 ℃ 30 s,40個循環(huán)。以β-actin作為內(nèi)參照,采用2-ΔΔCt法分析基因的相對表達量。詳細引物序列見表1。

        表1 RT-qPCR中所用的引物序列Table 1. The sequences of the primers for RT-qPCR

        3.5 質(zhì)粒轉染 應用Lipofectamine 3000和P3000試劑,pCMV3或空pCMV3載體轉染HK-2細胞。將HK-2細胞以每孔1×106個細胞的密度接種于6孔板中,質(zhì)粒及轉染試劑加至無血清、無抗生素培養(yǎng)基中,孵育6 h后,將培養(yǎng)基改為含抗生素和10%胎牛血清的新鮮DMEM培養(yǎng)基繼續(xù)孵育6 h。

        4 統(tǒng)計學處理

        計量資料以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,采用SPSS 23.0軟件進行統(tǒng)計學分析,數(shù)據(jù)來自至少3次獨立實驗,各組間比較采用單因素方差分析或Kruskal-Wallis檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        結果

        1 過表達Sirt3可減輕高糖刺激誘導的HK-2細胞衰老

        1.1 高糖對HK-2細胞Sirt3表達的影響及高糖刺激誘導細胞衰老過程 Western blot及RT-qPCR結果顯示,與NG組比較,在高糖刺激48 h后,HK-2細胞中Sirt3蛋白及mRNA表達顯著降低(P<0.05)。高糖環(huán)境下HO-1的表達隨刺激時間的延長而變化,呈先上升后下降的趨勢(P<0.05)。P16和P21蛋白的表達均呈時間依賴性,NG組中P16蛋白表達很少,P21幾乎不表達。與NG組相比,在高糖培養(yǎng)48 h后,HK-2細胞中P16和P21蛋白的表達顯著增加(P<0.05),且可觀察到更多的SA-β-Gal陽性細胞,見圖1。

        Figure 1. High glucose decreased the expression of the Sirt3 protein, induced oxidative stress, and accelerated cellular senescence in HK-2 cells. A: HK-2 cells were treated with HG (30 mmol/L) for different time periods. The protein levels of Sirt3, P16,P21 and HO-1 were analyzed by Western blot; B: Sirt3 mRNA expression under the different conditions was examined by RT-qPCR; C: image of SA-β-Gal staining in the NG and HG groups treated for 48 h, as captured by microscope, blue staining reflects positive cells. Mean±SD. n=3. *P<0.05, **P<0.01 vs NG group.圖1 高糖可降低HK-2細胞中Sirt3蛋白的表達,誘導氧化應激,加速細胞衰老

        1.2 探索過表達Sirt3能否使HK-2細胞對抗高糖刺激誘導的細胞衰老 如圖2A,Western blot結果顯示,與NG組相比,高糖刺激48 h后HO-1蛋白的表達明顯減低,P16和P21蛋白的水平顯著升高(P<0.05)。與HG+vector組比較,過表達Sirt3后P16和P21蛋白的表達水平均明顯降低(P<0.05),且過表達Sirt3可顯著逆轉高糖環(huán)境下細胞內(nèi)ROS的積聚(圖2B)。與HG組相比,HG+Sirt3組SA-β-Gal陽性細胞較少(圖2C)。

        Figure 2. Overexpression of Sirt3 protects against HG-induced oxidative stress and cellular senescence. A: the protein levels of HO-1, P16 and P21 were analyzed by Western blot; B: intracellular ROS accumulation was detected by a fluorescence microscope; C: stress-induced senescence of HK-2 cells was detected by SA-β-Gal staining, blue staining reflects positive cells. Mean±SD. n=3. *P<0.05 vs NG group; ##P<0.01 vs HG+vector group.圖2 過表達Sirt3可使HK-2細胞對抗高糖誘導的氧化應激和應激性衰老

        2 過表達Sirt3對HK-2細胞中Keap1/Nrf2通路及其下游蛋白NQO1的影響

        Western blot結果顯示,在高糖刺激后6 h,Nrf2和NQO1蛋白水平均升高,并持續(xù)升高至24 h,在48 h后逐漸下降(P<0.05)。如圖3B所示,與NG組相比,高糖(48 h)環(huán)境下HK-2細胞中Nrf2、NQO1蛋白降低,Keap1蛋白表達升高(P<0.05),質(zhì)粒轉染過表達Sirt3后,Nrf2及其下游蛋白NQO1的表達增加,keap1表達降低(P<0.05)。為了評估Nrf2轉錄的變化,我們檢測了核Nrf2蛋白的表達水平。結果顯示,與HG+vector組相比,在Sirt3轉染的HK-2細胞中,細胞核Nrf2的表達顯著增加(P<0.05),見圖3C。

        Figure 3. Effects of Sirt3 overexpression on Keap1/Nrf2 pathway-related proteins in HK-2 cells under high glucose environment. A:the levels of Keap1/Nrf2 signaling pathway related proteins in HK-2 cells detected by Western blot; B: the effect of Sirt3 overexpression on the Keap1/Nrf2 signaling pathway related proteins in HK-2 cells detected by Western blot; C: the effect of Sirt3 overexpression on the nuclear Nrf2 in HK-2 cells detected by Western blot. Mean±SD. n=3. *P<0.05 vs NG group; #P<0.05, ##P<0.01 vs HG+vector group.圖3 Sirt3過表達對高糖環(huán)境下HK-2細胞中Keap1/Nrf2信號通路相關蛋白的影響

        3 抑制Keap1/Nrf2通路的活性可削弱Sirt3對HK-2細胞的作用

        為進一步驗證Sirt3是否通過Keap1/Nrf2通路保護HK-2細胞,對抗高糖刺激誘導的細胞衰老,我們采用ML385(Nrf2抑制劑)抑制Keap1/Nrf2通路活性。Western blot結果顯示,與HG+Sirt3組相比,加入ML385后,Nrf2、NQO1和HO-1的蛋白表達水平顯著降低(P<0.05),衰老相關蛋白P16和P21的表達水平顯著升高(P<0.05),見圖4。

        Figure 4. Effects of Sirt3 overexpression on Keap1/Nrf2 pathway-related proteins such as Nrf2, NQO1, HO-1 (A), p16 and p21 (B)in HK-2 cells under a high glucose environment after adding ML385. Mean±SD. n=3. *P<0.05 vs NG group; #P<0.05 vs HG group; △△P<0.01 vs HG+Sirt3 group.圖4 ML385可逆轉過表達Sirt3對高糖環(huán)境下HK-2細胞應激性衰老的影響

        討論

        本研究結果表明高糖可誘導HK-2細胞應激性衰老,過表達Sirt3可減輕高糖誘導的氧化應激,增加抗氧化酶的表達,降低細胞內(nèi)ROS的集聚,抑制細胞衰老。過表達Sirt3激活Keap1/Nrf2信號通路及其下游蛋白,而特異性抑制Keap1/Nrf2信號通路活性可導致上述作用明顯減弱。提示Sirt3可通過激活Keap1/Nrf2通路及其下游蛋白的表達,在抗氧化應激和高糖應激誘導的衰老中發(fā)揮作用。

        既往研究表明,在DN早期,腎小管上皮細胞即表現(xiàn)出應激性衰老和腎小管功能障礙,這可能是各種病理損傷的重要原因[11]。動物實驗中,在早期糖尿病大鼠模型發(fā)現(xiàn)衰老的腎小管上皮細胞。建模10天后,衰老相關蛋白P16、P21和SA-β-Gal的表達顯著增加[12]。在體外,高糖環(huán)境下腎小管上皮細胞亦出現(xiàn)應激誘導的衰老[13]。本研究結果表明,在高糖刺激的腎小管上皮細胞中,P16和P21蛋白的表達呈時間依賴性,于高糖刺激12 h時開始增加,48 h達到峰值,SA-β-Gal陽性細胞數(shù)量在48 h顯著增加。

        Sirtuins是依賴NAD+的蛋白去乙?;?,介導對應激刺激的適應性反應[14]。其中,Sirt3在維持線粒體穩(wěn)態(tài)及功能等方面發(fā)揮重要作用,如調(diào)節(jié)ROS的生成。研究表明,Sirt3介導的線粒體抗氧化應激效應參與apigenin對糖尿病大鼠腎臟的保護作用,且顯著提高細胞內(nèi)NAD+/NADH比值,繼而減輕高糖環(huán)境下近端腎小管上皮細胞損傷[15]。Sirt3具有抗細胞衰老的作用。體外實驗表明,通過激活Sirt3信號可抑制高糖誘導內(nèi)皮細胞衰老過程[16]。Sirt3對晚期糖基化終末產(chǎn)物誘導的骨髓間充質(zhì)干細胞衰老和老年性骨質(zhì)疏松癥有保護作用[17]。本研究結果表明,Sirt3參與高糖刺激誘導的HK-2細胞應激性衰老過程。過表達Sirt3可顯著上調(diào)HO-1蛋白的表達,降低細胞內(nèi)ROS水平。而過表達Sirt3顯著降低了P16和P21蛋白的表達,SA-β-Gal陽性細胞數(shù)量顯著減少。這些結果表明,過表達Sirt3可以減輕高糖刺激誘導的氧化應激和應激性衰老。

        Keap1/Nrf2通路是體內(nèi)氧化還原平衡的重要調(diào)控途徑。有研究表明,Keap1/Nrf2通路參與糖尿病腎病的發(fā)生發(fā)展。Nrf2的激活可減輕高糖刺激誘導的氧化應激損傷,抑制腎系膜基質(zhì)的形成,恢復腎病理損傷[18]。本研究還觀察到高糖條件下HK-2細胞中Nrf2及其下游蛋白NQO1的表達隨刺激時間的變化而變化,呈先增加后下降的趨勢。過表達Sirt3部分逆轉了高糖引起的Nrf2和NQO1蛋白的下調(diào),增加了細胞核Nrf2的表達。結果表明,過表達Sirt3可上調(diào)Keap1/Nrf2信號通路的活性,促進Nrf2向細胞核的易位。

        近年來,研究發(fā)現(xiàn)Nrf2介導的抗氧化通路的破壞是細胞衰老的驅(qū)動力[10,19]。另有研究發(fā)現(xiàn),雙氫青蒿素通過Nrf2/HO-1通路降低了骨髓源性抑制細胞(MDSCs)中衰老相關蛋白P16、P21、P53和衰老相關分泌表型的表達[20]。抗氧化劑肉桂醛可以通過激活Nrf2,下調(diào)CDKN2A/P16INK4A的表達來抑制角質(zhì)細胞衰老[21]。本研究采用Nrf2特異性抑制劑ML385進行干預。結果表明,加入ML385后,HK-2細胞中Nrf2及其下游蛋白NQO1的表達顯著下調(diào),而Sirt3對氧化應激和應激性衰老的保護作用消失。以上結果進一步表明,Sirt3通過激活Keap1/Nrf2信號通路,降低高糖刺激誘導的氧化應激反應并對抗應激性衰老的發(fā)生。

        綜上所述,Sirt3通過上調(diào)Keap1/Nrf2通路及其下游蛋白,降低氧化應激反應,減輕高糖環(huán)境下應激誘導的細胞衰老(圖5)。Sirt3作為DN治療的潛在靶點,其作用機制仍有待進一步探索。

        Figure 5. The possible mechanism by which Sirt3 reduces stress-induced cellular senescence.圖5 Sirt3保護HK-2細胞對抗高糖應激誘導的細胞衰老的可能機制

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