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        清腦滴丸通過(guò)調(diào)控miR-223-3p抑制NLRP3炎癥小體信號(hào)通路對(duì)急性腦缺血/再灌注損傷大鼠的抗炎作用機(jī)制*

        2023-12-04 02:09:58劉孟涵吳藝帆劉云婷王翎灃鞏俐劉嘉楊小蕊劉雪梅
        中國(guó)病理生理雜志 2023年11期
        關(guān)鍵詞:皮層腦缺血含水量

        劉孟涵, 吳藝帆, 劉云婷, 王翎灃, 鞏俐, 劉嘉, 楊小蕊, 劉雪梅

        (北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院,北京 100029)

        卒中是臨床最常見的腦血管疾病,是我國(guó)成年人首要致死及致殘病因,2020年我國(guó)40歲以上人群卒中死亡患者約230萬(wàn),其中缺血性卒中占卒中的62.4%~77.8%,給患者、家庭和社會(huì)帶來(lái)沉重的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[1-2]。缺血性卒中是由于腦血管栓塞,血液供應(yīng)中斷,造成局部腦組織缺血缺氧甚至壞死,然而臨床上觀察到即使恢復(fù)血液供應(yīng)仍然會(huì)導(dǎo)致嚴(yán)重的神經(jīng)細(xì)胞死亡和神經(jīng)功能障礙,即腦缺血再灌注損傷(cerebral ischemia reperfusion injury, CIRI),若不進(jìn)行干預(yù)或干預(yù)不及時(shí)可加重腦組織損傷。目前研究認(rèn)為炎癥級(jí)聯(lián)反應(yīng)在CIRI中起著關(guān)鍵作用,可導(dǎo)致“損傷-炎癥-再損傷”的惡性循環(huán)[3-4]。因此,通過(guò)調(diào)控炎癥反應(yīng)研究CIRI的發(fā)病機(jī)制及治療方法,對(duì)于改善患者預(yù)后和提升生活質(zhì)量具有重要的意義。

        核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體蛋白3(nucleotide-binding oligomerization domain-like receptor protein 3, NLRP3)炎癥小體由NLRP3、含caspase募集結(jié)構(gòu)域的凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白(apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase recruitment domain, ASC)和pro-caspase-1蛋白組成,通過(guò)調(diào)控白細(xì)胞介素1β(interleukin-1β, IL-1β)和IL-18的成熟和釋放,促進(jìn)炎癥反應(yīng),加重CIRI[5]。研究證實(shí)微小RNA-223-3p(microRNA-223-3p, miR-223-3p)可直接靶向結(jié)合NLRP3的3′-UTR調(diào)控NLRP3,參與炎癥反應(yīng),miR-223-3p過(guò)表達(dá)可發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[6-7]。清腦滴丸(Qingnao dripping pills, QNDP)由梔子、三七和冰片三味中藥組成,具有清熱活血,醒神開竅之功效。本團(tuán)隊(duì)前期研究已證實(shí)QNDP能夠降低CIRI大鼠的神經(jīng)元凋亡,減少腦缺血體積,改善神經(jīng)功能癥狀,降低炎癥反應(yīng)而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[8]。然而QNDP如何調(diào)控神經(jīng)炎癥值得進(jìn)一步研究。因此本項(xiàng)目通過(guò)建立腦缺血再灌注損傷大鼠模型,探討QNDP是否通過(guò)miR-223-3p介導(dǎo)NLRP3炎癥小體信號(hào)通路對(duì)CIRI大鼠發(fā)揮抗炎作用,為其臨床治療缺血性卒中提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

        材料和方法

        1 動(dòng)物

        6周齡雄性SD大鼠,SPF級(jí),體質(zhì)量(200±20) g,97只,購(gòu)自中國(guó)食品藥品檢定研究院,許可證號(hào)為SCXK(京)2022-0002,所有大鼠均在北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院動(dòng)物房飼養(yǎng),室溫24~26 ℃,相對(duì)濕度50%~60%,自由飲水、飲食,光晝交替12 h。本實(shí)驗(yàn)方案通過(guò)北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(No. DFYY202208)。

        2 主要藥物與試劑

        QNDP(北京同仁堂股份有限公司科學(xué)研究所);栓線(北京西農(nóng)科技有限公司);Trizol總RNA提取試劑(天根生化科技北京有限公司);Reverse Transcriptase M-MLV、SYBR?Premix Ex Taq? Ⅱ (Tli RNaseH Plus);預(yù)染蛋白Marker(Amersham);NLRP3抗體和cleaved caspase-1抗體(Proteintech);ASC抗體(ImmunoWay);GAPDH抗體(Cell Signaling Technology);Alexa Fluor標(biāo)記的羊抗兔Ⅱ抗(Abcam);IL-18和IL-1β試劑盒(南京建成生物工程研究所);antagomiR-223-3p引物設(shè)計(jì)、合成委托蘇州吉瑪基因股份有限公司完成。

        3 主要儀器設(shè)備

        R530小動(dòng)物麻醉機(jī)(深圳市瑞沃德生命科技有限公司);大鼠數(shù)顯腦立體定位儀(北京眾實(shí)迪創(chuàng)科技發(fā)展有限公司);7300 RT-PCR儀(AppliedBiosysterms);Mini Blot Module小型轉(zhuǎn)印模塊(ThermoScientific);BOX Chemi XX9型化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(Gene);CM1900冷凍切片機(jī)(LEICA);BX53F熒光顯微鏡(OLYMPUS)。

        4 方法

        4.1 側(cè)腦室注射antagomiR-223-3p 大鼠禁食不禁水12 h,采用1%戊巴比妥鈉(30 mg/kg)腹腔注射麻醉,充分暴露前囟點(diǎn),大鼠俯臥位固定于數(shù)顯腦立體定位儀,調(diào)整定位并使微量注射器針尖對(duì)準(zhǔn)囟點(diǎn)向后1.1 mm,中線左旁開1.5 mm,用微型顱骨鉆小心鉆孔,將微量注射器插入顱內(nèi)4.5 mm注射antagomiR-223-3p 10 μL,1 μL/min,留針5 min,骨蠟封閉注射孔,縫合皮膚,24 h后制備CIRI模型。

        4.2 動(dòng)物模型制備 參考Longa法改良建立大鼠大腦中動(dòng)脈栓塞/再灌注(middle cerebral artery occlusion/reperfusion, MCAO/R)模型模擬CIRI[9]。造模前大鼠禁食不禁水12 h,采用4%~5%異氟烷氣體吸入誘導(dǎo)麻醉,再以1%異氟烷氣體吸入維持麻醉,將大鼠仰臥位固定,頸部正中切口,分離左側(cè)頸總動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈和頸外動(dòng)脈,結(jié)扎頸總動(dòng)脈近心端和頸外動(dòng)脈,暫時(shí)夾閉頸總動(dòng)脈遠(yuǎn)心端,在頸總動(dòng)脈靠近遠(yuǎn)心端位置剪一斜口,插入頭端直徑為0.24 mm的栓線,有阻力感時(shí)停止插入,此時(shí)插入深度約為(1.8±0.2)cm,造成大腦中動(dòng)脈供血相關(guān)區(qū)的缺血,栓塞1.5 h后,拔出栓線再灌注24 h。Sham組僅將栓線插入1 cm,余操作同模型組。術(shù)后注意肛溫,正常喂養(yǎng)。大鼠術(shù)后6 h進(jìn)行Longa評(píng)分,評(píng)分1~3分視為造模成功,隨機(jī)納入實(shí)驗(yàn)各組。實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,因麻醉、手術(shù)等原因死亡4只,Longa評(píng)分不符合要求的3只,均不入組。

        4.3 實(shí)驗(yàn)分組、給藥 MCAO/R大鼠隨機(jī)分為CIRI模型(MCAO/R)組、MCAO/R+QNDP組、MCAO/R+antagomiR-223組和MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組,另設(shè)假手術(shù)(sham)組作為對(duì)照,共5組,每組18只。每組隨機(jī)取6只大鼠進(jìn)行神經(jīng)功能缺損評(píng)分;隨后6只取大腦用于TTC染色和腦含水量檢測(cè);3只取大腦用于免疫熒光染色檢測(cè);3只取缺血側(cè)皮層用于RT-qPCR和Western blot檢測(cè);6只取缺血側(cè)皮層用于ELISA檢測(cè)。MCAO/R+QNDP組和MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組均灌胃給予QNDP (150 mg/kg),從MCAO/R術(shù)后2 h給藥1次,間隔10 h給藥1次,末次給藥2 h后進(jìn)行指標(biāo)觀察,余各組給予等體積的蒸餾水。

        4.4 Garcia評(píng)分法測(cè)定大鼠神經(jīng)功能缺損程度 由對(duì)本實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)不知情者對(duì)所有大鼠進(jìn)行Garcia評(píng)分[10]。觀察大鼠自主運(yùn)動(dòng)狀態(tài),得分越低表示神經(jīng)功能缺損越嚴(yán)重,最高得分18分表示功能正常,最低得分3分表示損傷最嚴(yán)重。

        4.5 TTC染色法觀察大鼠腦缺血體積 大鼠大腦自額極開始行冠狀切片,共切5片,每片約2 mm。將腦片放入2% TTC染液中,37 ℃避光水浴孵育30 min,取出切片,進(jìn)行拍照。缺血腦組織呈白色,采用ImageJ軟件對(duì)TTC染色照片進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,腦缺血體積比(%)=(各腦切片缺血面積×切片厚度之和)/(各腦切片的總面積×切片厚度之和)×100%。

        4.6 干濕重法檢測(cè)大鼠腦含水量 完整大腦取出后先快速稱重,再將其置于110 ℃干燥箱中烘烤24 h,取出稱干重,按照Billiot公式計(jì)算腦含水量:腦含水量(%)=(濕重-干重)/濕重×100%。

        4.7 RT-qPCR法測(cè)定miR-22-3p表達(dá) 采用Trizol法提取皮層RNA,紫外分光光度計(jì)測(cè)定RNA濃度和純度。取1 μg RNA采用Reverse Transcriptase MMLV進(jìn)行cDNA反轉(zhuǎn)錄,再進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增條件:95 ℃ 30 s;92 ℃ 5 s,60 ℃ 40 s,40個(gè)循環(huán)。miR-223-3p的上游引物序列為5′-ACACTCCAGCTGGGTGTCAGTTTGTCAAATAC-3′,下游引物序列為5′-TCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGGGGGTAT-3′;內(nèi)參照U6的上游引物序列為5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′;下游引物序列為5′-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′。采用2-ΔΔCt法進(jìn)行定量分析。

        4.8 Western blot法檢測(cè)NLRP3、ASC和cleaved caspase-1蛋白表達(dá) 采用RIPA裂解液提取皮層總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度,10% SDS-PAGE分離蛋白,PVDF轉(zhuǎn)膜,5%脫脂牛奶進(jìn)行封閉1 h,加入兔多克隆NLRP3抗體(1:500)、兔多克隆ASC抗體(1∶1 000)和兔多克隆cleaved caspase-1抗體(1∶1 000),4 ℃孵育過(guò)夜,加入羊抗兔IgG-HRP Ⅱ抗(1∶1 000),室溫?fù)u床1 h,ECL顯色后,置于凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行拍照。應(yīng)用ImageJ軟件進(jìn)行蛋白條帶灰度值分析。

        4.9 免疫熒光法觀察NLRP3在缺血側(cè)皮層中的分布 大鼠采用多聚甲醛灌注固定后,取大腦行冰凍切片(厚度30 μm)。選用山羊血清和5% BSA進(jìn)行封閉1.5 h,加入兔多克隆NLRP3 Ⅰ抗(1∶300),4 ℃過(guò)夜孵育,加入羊抗兔Alexa Fluor Ⅱ抗(1∶2 000),含DAPI的防熒光淬滅封片劑進(jìn)行封片,熒光顯微鏡下觀察拍照。應(yīng)用ImageJ軟件進(jìn)行分析。

        4.10 ELISA法檢測(cè)IL-1β和IL-18的水平 取皮層按重量體積比加生理鹽水制成10%的組織勻漿,嚴(yán)格按照IL-1β和IL-18的ELISA測(cè)定試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行操作。

        5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        采用SPSS 26.0進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,符合正態(tài)分布或近似符合的計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。若方差齊,多組間采用單因素方差分析(oneway ANOVA)進(jìn)行多組間比較,采用LSD檢驗(yàn)進(jìn)行組間兩兩比較;若方差不齊,則采用Dunnett′s T3檢驗(yàn)法。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié)果

        1 QNDP對(duì)大鼠神經(jīng)功能損傷評(píng)分的影響

        與sham組比較,MCAO/R組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分顯著降低(P<0.01);與MCAO/R組相比,MCAO/R+QNDP組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分顯著升高(P<0.01),antagomiR-223組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分顯著降低(P<0.01);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分顯著降低(P<0.01),見圖1。

        Figure 1. The neurological deficit scores of the rats in each group.Mean±SD. n=6. ##P<0.01 vs sham group; **P<0.01 vs MCAO/R group; △△P<0.01 vs MCAO/R+QNDP group.圖1 各組大鼠神經(jīng)功能缺損評(píng)分

        2 QNDP對(duì)大鼠腦缺血體積的影響

        與sham組比較,MCAO/R 組大鼠缺血側(cè)白色區(qū)域顯著增大,腦缺血體積明顯增加(P<0.01);與MCAO/R組相比,MCAO/R+QNDP組大鼠腦缺血體積顯著降低(P<0.01),而MCAO/R+antagomiR-223組顯著增加(P<0.01);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組大鼠腦梗死體積顯著增加(P<0.01),見圖2。

        Figure 2. The cerebral infarct volume of the rats in each group (TTC staining). Mean±SD. n=6. ##P<0.01 vs sham group; **P<0.01 vs MCAO/R group; △△P<0.01 vs MCAO/R+QNDP group.圖2 各組大鼠腦缺血體積

        3 QNDP對(duì)大鼠腦含水量的影響

        與sham組比較,MCAO/R組大鼠腦含水量增加(P<0.05);與MCAO/R組相比,MCAO/R+QNDP組大鼠腦含水量顯著降低(P<0.01);MCAO/R+antagomiR-223組大鼠腦含水量升高(P<0.05);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組大鼠腦含水量升高(P<0.05),見圖3。

        Figure 3. The brain water content of the rats in each group.Mean±SD. n=6. #P<0.05 vs sham group; *P<0.05,**P<0.01 vs MCAO/R group; △P<0.05 vs MCAO/R+QNDP group.圖3 各組大鼠腦含水量

        4 QNDP對(duì)缺血皮層miR-223-3p表達(dá)的影響

        與sham組相比,MCAO/R組缺血側(cè)皮層區(qū)miR-223-3p表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.01);與MCAO/R組比較,MCAO/R+QNDP組大鼠miR-223-3p表達(dá)增加(P<0.05),MCAO/R+antagomiR-223組則顯著減少(P<0.01);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組大鼠miR-223-3p表達(dá)顯著減少(P<0.01),見圖4。

        5 QNDP對(duì)缺血皮層NLRP3炎癥小體的影響

        Western blot結(jié)果顯示,與sham組相比,MCAO/R組大鼠NLRP3、ASC及cleaved caspase-1蛋白表達(dá)顯著增加(P<0.01);與MCAO/R組比較,MCAO/R+QNDP組大鼠上述蛋白表達(dá)減少(P<0.05),MCAO/R+antagomiR-223組大鼠三者蛋白表達(dá)升高(P<0.05,P<0.01);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組大鼠NLRP3和cleaved caspase-1蛋白表達(dá)均上調(diào)(P<0.05,P<0.01),ASC蛋白無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;進(jìn)一步與MCAO/R+antagomiR-223組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組大鼠ASC蛋白顯著降低(P<0.01),見圖5A。免疫熒光染色結(jié)果顯示,與sham組相比,MCAO/R組NLRP3細(xì)胞數(shù)量顯著增加(P<0.01);與MCAO/R組比較,MCAO/R+QNDP組大鼠顯著降低NLRP3細(xì)胞數(shù)量(P<0.01),MCAO/R+antagomi-R223組反而顯著增加(P<0.01);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組中NLRP3表達(dá)的細(xì)胞數(shù)量顯著升高(P<0.01),見圖5B。

        Figure 5. The expression NLRP3 inflammsome-related proteins in the cortex of the rats in each group. A: the protein expression of NLRP3, cleaved caspase-1 and ASC detected by Western blot; B: representative immunofluroscence images of NLRP3(green) and DAPI (blue), and the quantification of NLRP3 positive cell number. Mean±SD. n=3. ##P<0.01 vs sham group; *P<0.05, **P<0.01 vs MCAO/R group; △P<0.05, △△P<0.01 vs MCAO/R+QNDP group; ▲▲P<0.01 vs MCAO/R+antagomiR-223 group.圖5 各組皮層NLRP3炎癥小體相關(guān)蛋白的表達(dá)

        6 QNDP對(duì)缺血皮層IL-1β和IL-18水平的影響

        與sham組相比,MCAO/R組大鼠IL-1β和IL-18水平顯著升高(P<0.01);與MCAO/R組比較,MCAO/R+QNDP組大鼠二者水平顯著降低(P<0.01),MCAO/R+antagomiR-223組反而顯著增加(P<0.01);與MCAO/R+QNDP組比較,MCAO/R+QNDP+antagomiR-223組的IL-1β和IL-18水平顯著增加(P<0.01),見圖6。

        Figure 6. The IL-1β (A) and IL-18(B) levels in the cortex of the rats in each group. Mean±SD. n=6. ##P<0.01 vs sham group; **P<0.01 vs MCAO/R group; △△P<0.01 vs MCAO/R+QNDP group.圖6 各組皮層IL-1β和IL-18水平

        討論

        缺血性卒中呈現(xiàn)出高發(fā)病率、高致殘率、高死亡率,高經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)率,已成為我國(guó)亟需解決的重大難治性疾病。近年來(lái)溶栓、血管內(nèi)治療等治法取得了較好療效,然而臨床上溶栓有限的治療時(shí)間窗(<4.5 h)和禁忌癥等問題導(dǎo)致僅約10%的患者獲益[2]。因此為大多數(shù)非溶栓的缺血性卒中患者尋求有效的治療方案,仍然是目前臨床實(shí)踐中面臨的主要問題。急性缺血性卒中患者加以中醫(yī)辨證施治,綜合治療效果可有所提高,臨床上采用清熱活血化瘀法治療已得到肯定,有利于患者神經(jīng)功能恢復(fù),且一定程度提升患者日常生活和質(zhì)量水平[11]。QNDP由梔子、三七和冰片組成。君藥梔子,清熱、瀉火、涼血;臣藥三七,長(zhǎng)于活血化瘀,化瘀而不傷正;冰片作為佐使藥,醒神開竅。三藥共同導(dǎo)火熱下行,瘀血散結(jié),發(fā)揮清熱活血之功效。本團(tuán)隊(duì)前期實(shí)驗(yàn)證實(shí)QNDP能夠降低大鼠CIRI誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng),減輕神經(jīng)功能損傷,改善神經(jīng)功能[7,12]。然而QNDP通過(guò)調(diào)控何種分子機(jī)制發(fā)揮抗炎作用,正是本研究的目的。

        NLRP3是目前研究較深入的炎癥小體,作為炎癥反應(yīng)的中樞,在缺血性卒中發(fā)病及發(fā)生發(fā)展中扮演著關(guān)鍵作用[13]。NLRP3直接或通過(guò)ASC蛋白間接招募pro-caspase-1,產(chǎn)生活化的caspase-1(cleaved caspase-1),后者將pro-IL-1β和pro-IL-18裂解為成熟形式IL-1β和IL-18并釋放,介導(dǎo)炎癥反應(yīng)。Wang等[14]采用NLRP3基因敲除小鼠建立MCAO/R模型后,腦缺血體積和神經(jīng)功能損傷均明顯降低,表明NLRP3炎癥小體加重急性CIRI。Ward等[15]和Zhu等[16]分別應(yīng)用NLRP3抑制劑MCC950干預(yù)MCAO/R小鼠,可顯著降低缺血皮層NLRP3、ASC和cleaved caspase-1蛋白表達(dá),減輕腦缺血體積。這也與本研究結(jié)果相一致,大鼠MCAO/R損傷后可導(dǎo)致NLRP3、cleaved caspase-1和ASC的蛋白表達(dá)均顯著增加,神經(jīng)功能缺損嚴(yán)重,經(jīng)QNDP治療后,缺血皮層NLRP3炎癥小體相關(guān)蛋白表達(dá)水平降低,IL-1β和IL-18水平顯著減少,表明QNDP對(duì)CIRI大鼠具有較好的抗炎作用,是一個(gè)潛在的有效治療缺血性卒中的中藥復(fù)方。

        miRNA是一類小的非編碼內(nèi)源性RNA分子,通過(guò)與靶基因的mRNA特異性結(jié)合,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控靶基因的表達(dá),具有調(diào)節(jié)細(xì)胞分化、增殖等功能,超過(guò)20%的miRNA在缺血性腦卒中發(fā)生改變,參與神經(jīng)細(xì)胞死亡,炎癥,神經(jīng)再生以及血管生成等生物學(xué)過(guò)程[17-18]。miR-223-3p主要在骨髓和中性粒細(xì)胞中高度表達(dá),但也在大腦中海馬、皮層區(qū)表達(dá)相對(duì)富集,是一種具有神經(jīng)保護(hù)作用的miRNA[7,19]。Li等[20]證實(shí)腦缺血72 h患者的血清miR-223表達(dá)上調(diào),但與神經(jīng)功能損傷程度和腦缺血體積呈負(fù)相關(guān)。Voelz等[21]證實(shí)大鼠MCAO/R 24~72 h,缺血側(cè)的皮層、杏仁核區(qū)的miR-223-3p顯著增加,這可能與血小板活化,以及應(yīng)激反應(yīng)等因素有關(guān)。本研究同樣觀察到大鼠MCAO/R 24 h時(shí),缺血側(cè)皮層的miR-223-3p出現(xiàn)升高,給予miR-223-3p拮抗劑后可顯著上調(diào)IL-1β和IL-18水平,腦缺血體積增大,提示miR-223-3p過(guò)表達(dá)可保護(hù)CIRI,miR-223缺乏導(dǎo)致腦損傷加重,這也與Harraz等[7]研究結(jié)果相一致。多項(xiàng)研究表明miR-223-3p可特異性地靶向結(jié)合NLRP3 mRNA的3′端非翻譯區(qū),對(duì)NLRP3 mRNA轉(zhuǎn)錄水平實(shí)行負(fù)向調(diào)控,抑制NLRP3蛋白表達(dá)和NLRP3炎癥小體活化[22-23]。Sha等[24]采用電針治療可增加急性MCAO/R大鼠的miR-223水平,抑制NLRP3炎癥小體,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。本研究結(jié)果顯示QNDP聯(lián)合miR-223-3p拮抗組干預(yù)后,QNDP顯著上調(diào)MCAO/R大鼠的miR-223-3p表達(dá),減弱NLRP3炎癥小體激活,降低神經(jīng)炎癥,減輕CIRI。

        綜上所述,本研究證實(shí),大鼠MCAO/R損傷后可激活NLRP3炎癥小體,加重神經(jīng)炎癥;QNDP可能通過(guò)miR-223-3p調(diào)控NLRP3通路抑制炎癥反應(yīng),從而減輕大鼠CIRI,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。

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