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        液相色譜-質(zhì)譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀測(cè)定花生油中黃曲霉毒素B1

        2023-07-24 00:57:24劉新月李紹仙張曉花譚文涵
        食品安全導(dǎo)刊 2023年18期
        關(guān)鍵詞:親和柱花生油黃曲霉

        周 琴,劉新月,李紹仙,張曉花,譚文涵

        (普洱市質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督綜合檢測(cè)中心,云南普洱 665000)

        花生油含有豐富的不飽和脂肪酸,其中油酸能降低低密度脂蛋白膽固醇水平,而不會(huì)破壞高密度脂蛋白,有助于維持血脂平衡,預(yù)防心血管疾病[1]。此外,油酸還具有抗炎、預(yù)防肥胖、預(yù)防衰老、預(yù)防動(dòng)脈硬化和增強(qiáng)自身免疫力的功能[2-3]。然而,在對(duì)人體有益的同時(shí),花生油也存在安全隱患。黃曲霉毒素(Aflatoxin,AFT)是造成花生油污染的主要原因之一[4],在自然界中其主要以黃曲霉毒素B1、B2、G1和G2存在,具有強(qiáng)毒性、致癌性、致畸性和致突變性,而黃曲霉毒素B1(AFB1)含量最高[5-6]。何景等[7]2019年在抽檢北京小包裝花生油時(shí),黃曲霉毒素檢出率為26.67%。胡振等[8]在對(duì)2016—2017年廣西14個(gè)地級(jí)市抽檢食用植物油樣品時(shí)發(fā)現(xiàn),花生油中黃曲霉毒素B1檢出率達(dá)到8.85%,花生油合格率僅為87.83%。真菌毒素是對(duì)人和動(dòng)物有嚴(yán)重慢性毒性的物質(zhì)[9],如果大量攝入或長(zhǎng)期少量攝入黃曲霉毒素,可能會(huì)導(dǎo)致慢性中毒、增加致癌風(fēng)險(xiǎn)。因此,研究花生油中黃曲霉毒素B1的檢測(cè)方法具有重要意義。

        黃曲霉毒素檢測(cè)方法有酶聯(lián)免疫法(Enzyme-Linked Immunosorbent Assay,ELISA)[10]、高效液相色譜法(High Performance Liquid Chromatography,HPLC)[11]等,酶聯(lián)免疫吸附法簡(jiǎn)單、快速、特異性高,但假陽(yáng)性較多;高效液相色譜法具有良好的準(zhǔn)確性和高靈敏度,但需要衍生,檢測(cè)周期長(zhǎng),且較浪費(fèi)溶劑。液相色譜-質(zhì)譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(LC-MS/MS)特異性強(qiáng),定性定量準(zhǔn)確,檢出限低,從而被廣泛應(yīng)用于農(nóng)殘、獸殘以及真菌毒素類的痕量檢測(cè)領(lǐng)域[12-15]。黃曲霉毒素的離子化狀態(tài)可利用電噴霧離子源實(shí)現(xiàn),電噴霧離子源有正、負(fù)離子兩種模式,在正離子模式下效果最好[16],因此,黃曲霉毒素離子化模式為ESI+。黃曲霉毒素凈化小柱包括兩個(gè)類型:多功能凈化柱與免疫親和柱。其中,多功能凈化柱采用復(fù)合材料,可以吸附蛋白質(zhì)、色素等[16]。盡管這種方法的凈化速度相對(duì)較快,但不能全面有效地消除干擾物質(zhì)。因此,在實(shí)際實(shí)驗(yàn)中,多使用免疫親和柱來(lái)凈化樣品。本研究利用液相色譜-質(zhì)譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀對(duì)花生油中黃曲霉毒素B1進(jìn)行定量分析,并對(duì)實(shí)驗(yàn)條件進(jìn)行了探討。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與試劑

        液相色譜-質(zhì)譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(3200QTRAP,美國(guó)AB Scies);色譜柱(phenomenex Kinetex 2.6 μm Biphenyl 100A,100 mm×3.0 mm);3K15臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(德國(guó)Sigma公司);渦旋攪拌混勻器(英國(guó)Grant公司);AL204電子天平(瑞士梅特勒);IKA HS501振蕩器(德國(guó)IKA儀器設(shè)備有限公司);N-EVAP-24氮吹儀(美國(guó)Organomation公司);微量可調(diào)移液槍(0.1~1.0 mL,德國(guó)Eppendorf公司)。

        花生油,購(gòu)于沃爾瑪超市。黃曲霉毒素B1(100 μg·mL-1,天津阿爾塔科技有限公司);黃曲霉毒素B1內(nèi)標(biāo)液(0.5 μg·mL-1,天津阿爾塔科技有限公司);乙腈(色譜純,德國(guó) Merck 公司);黃曲霉毒素B1免疫親和柱(普瑞邦公司);質(zhì)控樣[MRM-AO,質(zhì)控值范圍為(12.44±1.38)μg·kg-1,普瑞邦];甲酸(分析純,阿拉丁公司)。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)使用液配制

        準(zhǔn)確移取1 mL濃度為100 μg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,用甲醇定容至10 mL,配制濃度為10 μg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,再準(zhǔn)確移取1 mL濃度為 10 μg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液用甲醇定容至10 mL,配制濃度為1 μg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)中間液,分別吸取1 μL、2 μL、4 μL、6 μL、8 μL、10 μL和20 μL標(biāo)準(zhǔn)中間液于1 mL進(jìn)樣瓶中,并同時(shí)加入40 μL濃度為0.05 μg·mL-1的黃曲霉毒素B1內(nèi)標(biāo)液,用初始流動(dòng)相定容至1 mL配制系列標(biāo)準(zhǔn)工作液濃度為1.0 ng·mL-1、2.0 ng·mL-1、4.0 ng·mL-1、6.0 ng·mL-1、8.0 ng·mL-1、10.0 ng·mL-1和20.0 ng·mL-1。

        1.2.2 樣品前處理

        準(zhǔn)確稱取5 g試樣于50 mL離心管中,加入20 μL濃度為1 μg·mL-1的黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)品和200 μL濃度為0.05 μg·mL-1的黃曲霉毒素B1內(nèi)標(biāo)液,加入20 mL乙腈-水溶液(80+20),渦旋混勻,置于振蕩器振蕩20 min,離心,取上清液備用。準(zhǔn)確移取4 mL上清液,加入46 mL 0.1%吐溫-20 PBS溶液混勻,將待凈化液轉(zhuǎn)移至50 mL注射器筒內(nèi),以恒定流速流經(jīng)已活化的免疫親和柱,20 mL超純水淋洗免疫親和柱,真空泵抽干。2 mL甲醇洗脫黃曲霉毒素B1免疫親和柱,真空泵抽干全部親和柱,在水浴條件下將洗脫液濃縮至近干,初始流動(dòng)相定容至1 mL,過(guò)0.22 μm濾膜,濾入樣品瓶上機(jī)測(cè)定。

        1.2.3 儀器條件

        色譜條件:phenomenex Kinetex 2.6 μm Biphenyl-100A色譜柱(100 mm×3.0 mm,2.6 μm),進(jìn)樣量10.0 μL;流動(dòng)相A為乙腈,B為0.1%甲酸水溶液;柱溫35 ℃,梯度洗脫程序見表1。

        表1 梯度洗脫程序

        質(zhì)譜條件:離子化模式ESI+,電子能量70 eV;離子源溫度280 ℃;接口溫度280 ℃;掃描方式多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(Multiple Reaction Monitoring,MRM)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 儀器分析參數(shù)

        將體積濃度為1 μg·mL-1的黃曲霉毒素B1和內(nèi)標(biāo)單標(biāo)分別通過(guò)質(zhì)譜儀所配的外置進(jìn)樣泵進(jìn)樣,分別尋找其母離子和子離子并優(yōu)化碰撞電壓和去簇電壓。黃曲霉毒素B1及其內(nèi)標(biāo)在串聯(lián)質(zhì)譜上的檢測(cè)參數(shù)見表2,黃曲霉毒素B1及其內(nèi)標(biāo)基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液的總離子流色譜圖見圖1。

        圖1 黃曲霉毒素B1及其內(nèi)標(biāo)基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液的總離子流色譜圖

        表2 黃曲霉毒素B1及其內(nèi)標(biāo)的LC-MS/MS檢測(cè)參數(shù)

        2.2 方法線性范圍和檢出限

        在1.2.3儀器條件下,根據(jù)1.2.1配制的系列標(biāo)準(zhǔn)工作液:1 ng·mL-1、2 ng·mL-1、4 ng·mL-1、6 ng·mL-1、8 ng·mL-1、10 ng·mL-1和20.0 ng·mL-1進(jìn)樣分析;工作曲線橫坐標(biāo)為目標(biāo)物質(zhì)量濃度C(ng·mL-1);工作曲線縱坐標(biāo)為黃曲霉毒素B1峰面積與內(nèi)標(biāo)峰面積之比。圖2為黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)曲線所擬合的線性方程。由圖2可知該檢測(cè)方法在1~20 ng·mL-1的質(zhì)量濃度內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)R2為0.999 3。

        圖2 黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)曲線

        2.3 方法的準(zhǔn)確度和精密度

        在花生油空白基質(zhì)中分別加入3個(gè)水平的黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)品,混勻1 min,使花生油空白基質(zhì)與所加入的標(biāo)準(zhǔn)品充分接觸后,加入200 μL濃度為0.05 μg·mL-1的黃曲霉毒素B1內(nèi)標(biāo)液,按1.2.2中的方法充分提取和凈化后檢測(cè)。每個(gè)進(jìn)行6次平行實(shí)驗(yàn),計(jì)算其平均回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(Relative Standard Deviation,RSD),以考察方法的準(zhǔn)確度和精確度,結(jié)果見表3。

        表3 花生油中黃曲霉毒素B1的加標(biāo)回收率及其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)

        由表3可知,在不同加標(biāo)水平下,黃曲霉毒素B1的回收率在94.1%~107.4%,相對(duì)偏差(RSD)為5.6%~9.3%,回收率滿足《實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量控制規(guī)范食品理化檢測(cè)》(GB/T 27404—2008)食品理化檢驗(yàn)中回收率要求即加標(biāo)量小于0.1 mg·kg-1時(shí)回收率為60%~120%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于15%。表明該方法的回收率和精密度滿足花生油中黃曲霉毒素B1殘留檢測(cè)的要求。

        2.4 質(zhì)控樣測(cè)定

        將所購(gòu)質(zhì)控樣采用該方法進(jìn)行測(cè)定,測(cè)定結(jié)果為13.12 μg·kg-1,質(zhì)控樣質(zhì)控值為(12.44±1.38)μg·kg-1,測(cè)定值在質(zhì)控值范圍內(nèi),表明該方法對(duì)花生油中黃曲霉毒素B1陽(yáng)性樣品的測(cè)定具有較高的準(zhǔn)確性,適用于實(shí)驗(yàn)室中花生油中黃曲霉毒素B1的準(zhǔn)確定量分析。

        3 結(jié)論

        本研究建立了花生油中黃曲霉毒素B1的LCMS/MS測(cè)定方法,樣品前處理采用免疫親和柱技術(shù),該方法無(wú)需進(jìn)行衍生,簡(jiǎn)便快捷、靈敏度高,特異性強(qiáng)、準(zhǔn)確度和精密度均滿足定量分析的要求。在1~20 ng·mL-1線性內(nèi)呈良好線性關(guān)系(R2為0.999 3),在2.0 μg·kg-1、5.0 μg·kg-1、10.0 μg·kg-1的加標(biāo)水平下,回收率在94.1%~107.4%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)為5.6%~9.3%,采用該方法測(cè)定花生油中黃曲霉毒素質(zhì)控樣,檢測(cè)結(jié)果在質(zhì)控樣質(zhì)控值范圍內(nèi)。因此,該方法可用于花生油中黃曲霉毒素B1的快速檢測(cè)。

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