亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        土壤生物膜的生態(tài)功能及其研究方法綜述

        2023-06-17 11:34:09李宇佳文翊駱樂丹趙升歐陽凱
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2023年10期
        關(guān)鍵詞:檢測技術(shù)

        李宇佳 文翊 駱樂丹 趙升 歐陽凱

        摘要:生物膜是指微生物附著于接觸表面并分泌多糖基質(zhì)、脂質(zhì)蛋白和胞外DNA等物質(zhì)包裹自身而形成的微生物微團聚體。生物膜的形成是微生物適應(yīng)自然環(huán)境的一種生存策略。生物膜具有各種各樣的功能特性(吸附性、抗藥性、降解性等),在環(huán)境保護領(lǐng)域具有廣大的應(yīng)用前景。近年來,生物膜已經(jīng)成為各大領(lǐng)域的研究熱點,在工業(yè)、醫(yī)學(xué)、水環(huán)境等領(lǐng)域都有其身影,但在土壤環(huán)境中的研究報道較少。主要介紹了土壤生物膜的組成及其形成過程,并對土壤生物膜高效攝取養(yǎng)分、抵御外部環(huán)境危害和充當胞外消化系統(tǒng)等重要生態(tài)功能進行綜述;同時比較分析了幾種常見的生物膜培養(yǎng)裝置(微量滴定板、卡爾加里培養(yǎng)、生物膜環(huán)、流動池、微流體等)和檢測技術(shù)(染色法、熒光原位雜交、光學(xué)相干斷層掃描、激光共聚焦顯微鏡、原子力顯微鏡等)的優(yōu)缺點;最后對生物膜在土壤環(huán)境相關(guān)方面的研究潛力提出展望,旨在深入理解土壤生物膜與土壤各組分之間的相互作用,為提高土壤微生物的生態(tài)環(huán)境效益提供理論依據(jù)。

        關(guān)鍵詞:土壤生物膜;生物膜功能;培養(yǎng)裝置;檢測技術(shù)

        中圖分類號:S154.3? 文獻標志碼:A

        文章編號:1002-1302(2023)10-0001-10

        收稿日期:2022-07-30

        基金項目:國家自然科學(xué)基金青年基金(編號:42007021);中國博士后科學(xué)基金(編號:2020M672498);湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)青年基金(編號:19QN39)。

        作者簡介:李宇佳(1997—),男,湖南婁底人,碩士,主要研究方向為土壤生物化學(xué)。E-mail:814708233@qq.com。

        通信作者:歐陽凱,博士,副教授,主要研究方向為土壤礦物-有機物-微生物界面互作與環(huán)境、土壤生物膜的生態(tài)環(huán)境效應(yīng)。E-mail:Kai_ouyang@hunau.edu.cn。

        微生物在介質(zhì)聚集,通過自身分泌物質(zhì)相互聯(lián)系形成一層膠狀薄膜,即生物膜。在土壤生態(tài)系統(tǒng)中,幾乎有99%的微生物以生物膜形式存在[1]。土壤環(huán)境是微生物的最大聚集地之一,微生物群落結(jié)構(gòu)多種多樣,為土壤生物膜的形成提供了良好的物質(zhì)條件[2]。土壤微生物以土壤顆?;蛑参锔底鳛榻缑孢M行吸附,釋放土壤顆粒中的礦質(zhì)元素或與植物進行物質(zhì)交換,為土壤生物膜的生長發(fā)育提供營養(yǎng)物質(zhì)[3]。土壤生物膜的形成可以對土壤結(jié)構(gòu)和質(zhì)量進行改良,增加土壤對外界不良環(huán)境的抵御能力,在提高農(nóng)作物產(chǎn)量和保護農(nóng)業(yè)環(huán)境方面有著重大的潛力[4]。

        已有研究表明,單一或多物種形成的土壤生物膜能夠定殖在礦物表面、土壤孔隙和植物根部等基質(zhì)或界面上[5-7]。在生物膜的形成過程中,微生物通過分泌胞外聚合物將細胞聚合在一起,同時黏附在物質(zhì)表面[8]。與單一物種形成的生物膜相比,多物種生物膜的競爭優(yōu)勢更明顯,能更好地適應(yīng)環(huán)境的變化。例如在缺水時期,多物種生物膜有更高的耐受性,并促進細菌水平基因的轉(zhuǎn)移[9]。Koele 等研究了在不良外部環(huán)境條件下松樹根際細菌生物膜對植物養(yǎng)分情況的影響,發(fā)現(xiàn)土壤中含碳物質(zhì)的礦化速率隨生物膜的生長而加快,植物根系獲得更多的養(yǎng)分,以此來緩解外部環(huán)境的侵蝕[10]。土壤生物膜的發(fā)育會改變土壤的理化性質(zhì),例如土壤孔隙中生物膜的形成會堵塞或縮小孔隙,從而降低土壤的含水量和水分的入滲[11-12]。生物膜具有致密且穩(wěn)定的結(jié)構(gòu),對土壤中的有毒有害物質(zhì)具有較高的耐受能力,對作物的生長發(fā)育具有促進作用。土壤生物膜提高了微生物在環(huán)境脅迫下的存活率,在土壤的形成和發(fā)育過程中承擔著至關(guān)重要的作用。

        隨著對土壤生物膜研究的深入,現(xiàn)已獲得了一些重要的成就和突破。總結(jié)前人的研究不難發(fā)現(xiàn),以往的絕大多數(shù)研究主要考察的是土壤中單一物種微生物形成的生物膜。如Ouyang等研究了腐殖酸介導(dǎo)下納米顆粒對惡臭假單胞菌KT2440生物膜形成的影響,發(fā)現(xiàn)不同的生物膜形成階段對納米顆粒的耐受性不同,且腐殖酸能夠減輕納米顆粒對細菌生物膜形成的抑制作用[13]。Ma等將土壤礦物(蒙脫石、高嶺石、針鐵礦)與枯草芽孢桿菌兩兩混合培養(yǎng),研究生物膜在礦物表面的形成狀況,結(jié)果表明3種土壤礦物表面形成的生物膜具有顯著的差異,且這種差異是由土壤礦物質(zhì)表面的理化性質(zhì)不同所造成[5]。Xing等研究在蒙脫石影響下Serratia marcescens S14對Cd2+的吸附效應(yīng),證實了低濃度Cd2+和蒙脫石或其組合能夠促進生物膜形成;相較于游離態(tài)的細菌,生物膜對Cd2+的吸附量增加了15倍[14]。在自然狀態(tài)下,土壤生物膜主要是以多種微生物相互聚集而形成。本文簡要綜述了土壤多物種生物膜的形成過程和功能及其對土壤改良、生態(tài)環(huán)境方面的影響;同時介紹了幾種常用的多物種生物膜培養(yǎng)方法和檢測技術(shù)及其優(yōu)缺點,期望這些方法有助于加深對生物膜形成機制、結(jié)構(gòu)、組成及功能的理解。

        1 生物膜的形成及生態(tài)功能

        Donlan等通過掃描電子顯微鏡和激光共聚焦掃描顯微鏡等儀器觀測到了生物膜的形態(tài)和結(jié)構(gòu),他們將生物膜定義為一種包含在自身分泌的胞外聚合物(EPS)中的復(fù)雜生物群落[15]。自然界中的生物膜不是由單個微生物形成,而是由多種微生物相互聚合在一起,黏附于物體表面,并且能夠通過基因表達來適應(yīng)環(huán)境的變化。生物膜可以黏附在許多界面上,例如生物組織、醫(yī)療器械、污水管道、作物根系、土壤顆粒等各種自然或非自然界面[5,16-18]。與游離細菌相比,生物膜分泌的EPS能夠為包裹在內(nèi)的細菌提供營養(yǎng)物質(zhì)、響應(yīng)外界不良環(huán)境的刺激;同時也可作為生物膜外部消化系統(tǒng)增強細胞的代謝能力[7,19-20]。

        1.1 土壤生物膜的組成和形成過程

        土壤生物膜主要由兩部分組成,即微生物細胞和分泌的EPS。從微生物黏附開始,隨后產(chǎn)生和積累由1種或多種聚合物質(zhì)組成的細胞外基質(zhì),如蛋白質(zhì)、多糖、腐殖酸物質(zhì)、細胞外DNA(eDNA),有時還有其他分子,如參與細胞間通訊的信號分子[8],其中含量占比最多的是多糖和蛋白質(zhì)。

        土壤生物膜的形成不是一個恒定的過程,它會根據(jù)外部環(huán)境的變化來作出相對應(yīng)的動態(tài)響應(yīng)。在自然生態(tài)環(huán)境中,土壤生物膜的形成是一個復(fù)雜并由多種微生物相互作用的過程,膜內(nèi)各種微生物通過一系列的基因表達來應(yīng)對外部環(huán)境的刺激。土壤生物膜的形成過程一般可劃分成4個階段(圖1)。第一階段為微生物的黏附。微生物在物質(zhì)界面的黏附作用是生物膜形成的開始,微生物通過土壤空氣的流動到達物質(zhì)界面,經(jīng)過布朗運動、鞭毛運動、物理化學(xué)運動等運動方式相互聚集在一起,同時分泌出多糖、鞭毛蛋白等胞外基質(zhì)形成初步黏附[21]。起始階段,由于胞外基質(zhì)分泌較少導(dǎo)致細胞與物質(zhì)界面聯(lián)系不緊密,呈現(xiàn)的是可逆狀態(tài)的黏附作用;但隨著微生物分泌胞外物質(zhì)(多糖、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)和eDNA等)的增加,達到足以改變自身的形態(tài)特征時,生物膜與物質(zhì)表面形成緊密的黏附,呈現(xiàn)出不可逆狀態(tài)[8]。第二階段為生物膜的初步形成。包裹在膜內(nèi)的各種微生物快速地生長繁殖、分裂,并不斷積累空氣流動中的游離微生物,在界面上分散、擴大形成具有一定形態(tài)的菌落聚集體[22-23]。第三階段為生物膜的成熟,各種微生物之間以胞外基質(zhì)為基礎(chǔ)相互聯(lián)系,構(gòu)建出成熟穩(wěn)定的三維立體生物膜;這一階段形成的生物膜具有特定的空間結(jié)構(gòu)和功能,并且能夠?qū)ν饨绲牟涣即碳ぷ龀鲰憫?yīng)[24]。第四階段為生物膜的分解階段。因在有限空間內(nèi)養(yǎng)分的耗盡或有毒物質(zhì)的超負荷造成生物膜結(jié)構(gòu)崩塌,生物膜細胞發(fā)生解體回歸游離狀態(tài)進入外部環(huán)境,它們也可能在新的界面重新黏附形成新的生物膜,這一過程是生物膜的傳播和更新[25]。

        1.2 生物膜的功能

        生物膜可以被看成是一座“圍城”,胞外基質(zhì)就是“城墻”,它能夠保護膜內(nèi)細胞避免遭外部極端環(huán)境的干擾。大量具有功能多樣性的官能團存在于生物膜表面,為生物膜發(fā)育提供了許多好處,例如:營養(yǎng)物質(zhì)的吸收、調(diào)控膜內(nèi)物質(zhì)的穩(wěn)定以及對外界環(huán)境變化的響應(yīng)等。生物膜的胞外消化系統(tǒng)存在于生物膜內(nèi)部,由微生物分泌的胞外聚合物質(zhì)和酶組成,通過它們來吸收外界的水分和養(yǎng)料物質(zhì),同時膜內(nèi)的酶能夠分解自身的基底物質(zhì)來獲取養(yǎng)分[26]。

        1.2.1 高效攝取養(yǎng)分

        生物膜形成后,微生物獲取養(yǎng)分的效率要顯著高于單個游離態(tài)微生物。生物膜攝取養(yǎng)分主要依賴于微生物細胞所分泌的EPS,EPS能促進外部環(huán)境與生物膜間的物質(zhì)運輸和能量交換,如養(yǎng)分吸收、氣體排放以及各種離子、分子交換等[27]。

        生物膜獲取養(yǎng)分的過程十分復(fù)雜,細胞質(zhì)、細胞壁和細胞外基質(zhì)等不同部位的吸收機制和結(jié)合位點各不相同, 使環(huán)境中的陰離子和陽離子都能夠被吸收,當生物膜內(nèi)存在養(yǎng)分濃度梯度差時,營養(yǎng)物質(zhì)以吸收位點為通道進入膜內(nèi)細胞[28]。即使在濃度很低的營養(yǎng)環(huán)境條件下,生物膜也能通過這種吸附作用使微生物存活下來。生物膜的吸附作用是被動運輸,在運輸養(yǎng)分的同時也會有有毒物質(zhì)的運輸,有毒物質(zhì)的積累會損害生物膜的結(jié)構(gòu)甚至?xí)斐善浔缐模?9]。生物膜結(jié)構(gòu)破壞后,部分細胞死亡或裂解,細胞殘體會保存在胞外基質(zhì)中被酶降解形成養(yǎng)分提供給其他細胞。Pinchuk等發(fā)現(xiàn), 在枯草芽孢桿菌生物膜中,死亡細胞的DNA會被胞外酶分解形成磷源和碳源,為其他活性細胞提供能量[30]。相比于游離微生物,形成生物膜的微生物有更廣泛的養(yǎng)分來源,生物膜中所有的成分都會留在細胞外基質(zhì)中,形成有效的物質(zhì)循環(huán)。

        1.2.2 抵御外部環(huán)境脅迫

        生物膜的EPS能夠?qū)饘訇栯x子進行阻隔作用,防止其進入膜內(nèi)。Geng等通過研究發(fā)現(xiàn),EPS能夠聚集外部環(huán)境中的鉛、鎘、鋅等重金屬離子[31]。生物膜的形成會受到這種聚集作用影響,這種聚集作用也能促進生態(tài)環(huán)境中金屬的運輸。當過高的重金屬離子濃度對細菌有損傷刺激時,生物膜會聚集銅、鋅、鐵、鋁等重金屬陽離子來進行絡(luò)合作用或沉淀,減少其對生物膜的毒害[32]。

        生物膜內(nèi)含有大量的腐殖質(zhì)和活化酶,能夠增強微生物對干旱、高溫等不利環(huán)境的耐受能力。在干旱環(huán)境下,疏水分子會不斷地積累在生物膜基質(zhì)中,減少生物膜中水分的流失,同時形成一層保護屏障來降低水分的蒸發(fā)以此來保護生物膜。Weaver等將缺水生物膜放回水分充足的環(huán)境中發(fā)現(xiàn),原本因缺水而失活的酶重新活躍起來[33];對比未形成生物膜的浮游細菌,擁有胞外基質(zhì)保護的膜內(nèi)細菌有更高的干旱耐受性[34]??梢姡锬さ男纬墒俏⑸锉Wo自身免受外部環(huán)境迫害的一種生存策略,不同微生物間相互作用分泌各種活性物質(zhì)來抵御不良環(huán)境的危害,提高了微生物的存活機率。

        1.2.3 充當胞外消化系統(tǒng)

        生物膜內(nèi)細胞分泌的胞外酶會存儲在生物膜胞外基質(zhì)中,胞外酶可以和胞外聚合物質(zhì)相互作用[8]。游離態(tài)細菌分泌的胞外酶沒有胞外基質(zhì)進行依托,因此會隨著細菌的移動而擴散,逐漸遠離細胞,所以其胞外酶的作用效果并不明顯;而生物膜分泌的胞外酶相對集中,可以更有效地利用胞外酶去降解物質(zhì)而轉(zhuǎn)化成自身所需的養(yǎng)分物質(zhì),胞外基質(zhì)就像是生物膜的一個胞外代謝系統(tǒng)[35]。已經(jīng)有多種細胞外酶被發(fā)現(xiàn)存在于陸地和水生生態(tài)系統(tǒng)中[36]。生物膜中的胞外酶是所有膜內(nèi)微生物都可以驅(qū)使的,不局限于某一類微生物。Worm等通過研究蛋白水解和非蛋白水解銅綠假單胞菌形成的生物膜,發(fā)現(xiàn)蛋白水解細菌分泌的降解酶可以分解非蛋白水解細菌分泌的蛋白質(zhì),生物膜中所有微生物能夠共享膜內(nèi)細胞分泌的酶[37]。生物膜中不同種類的微生物分泌各種胞外酶進入胞外基質(zhì)中,胞外酶的效果各不相同,極大地提高了生物膜中各種物質(zhì)的消化效率,增加了養(yǎng)分來源。

        除上述3種功能外,其他功能還包括吸附重金屬離子[38]、降解抗生素[39]、提高土壤養(yǎng)分[40]等。生物膜已然成為研究熱點,近些年也不斷涌現(xiàn)出各種生物膜的培養(yǎng)裝置以及檢測技術(shù),有關(guān)生物膜的常見培養(yǎng)裝置及關(guān)鍵測定技術(shù)總結(jié)如下。

        2 生物膜的培養(yǎng)裝置

        生物膜的培養(yǎng)因?qū)?shù)據(jù)獲取的精度要求不同而有所差異。以下介紹了幾種培養(yǎng)裝置,并將其優(yōu)缺點簡單的總結(jié)在表1中。

        2.1 微量滴定板法

        利用微量滴定板(圖2)培養(yǎng)生物膜是最常用的方法[41]。將菌液置于微孔中,在適當溫度下靜置培養(yǎng),細菌生物膜會在孔壁上形成。在不同時間段對附著在滴定板孔表面上的生物膜進行染色之前,需要將孔清洗并且去除浮游細菌。微量滴定板分析是通過測定所有附著的細胞來計算生物膜生物量。但是,生物量的一部分可能是沉積在孔底部的細胞,被胞外聚合物所隱藏。因此,這種方式所得到的數(shù)據(jù)并不太精確。

        2.2 卡爾加里培養(yǎng)裝置

        在卡爾加里裝置(圖2)中,生物膜的形成是在蓋子上進行,蓋子由安裝在含有生長培養(yǎng)基和微生物的微量滴定板孔中的銷釘組成。生物膜附著在銷釘上,這就避免了細胞的沉積,體現(xiàn)了生物膜的黏附。在該裝置中,生物量定量需要用到超聲波來回收細胞,這就造成了一定的限制??赡苤挥胁糠旨毎軌蛲ㄟ^超聲波進行懸浮,通常在群落的 5%~90%之間[49-50];分離群體的生理特性也不能夠完全反應(yīng)出黏附細胞的生理特性,因為不同群體在材料上可能表現(xiàn)出不同的黏附和分離特性[51]。

        2.3 生物膜環(huán)裝置

        生物膜環(huán)裝置(圖3)是一種用于研究生物膜形成早期階段的方法[43,52],該裝置主要基于細菌在表面形成生物膜時固定微球的能力。將細菌懸浮液與順磁性微球混合,然后裝入微量滴定板的孔中進行培養(yǎng),在不同時間點進行直接測量,無需任何染色和清洗步驟。首先,在孔上覆蓋一層對比液(一種惰性不透明油),能夠使用專門的生物膜環(huán)掃描儀器讀取微量滴定板;然后將滴定板放置在一個由單個磁鐵組成的塊上,在孔底部中間放置1 min。磁鐵作用后,游離(未堵塞)的磁性微珠集中在孔底部中心位置,形成一個黑色圓點或圓環(huán);而被細胞固定的則保持在原位置。生物膜環(huán)裝置不需要對最初接種物進行干預(yù),如染色或固定,從而避免了人員操作上的結(jié)果偏差。但與微量滴定板一樣,生物膜環(huán)裝置對重力沉降很敏感,然而由于其主要用于早期生物膜形成時,這個問題可能不那么重要。

        2.4 流室法

        流室法是一種動態(tài)培養(yǎng)生物膜的方式,由通過管道連接的2個液室組成(圖4)。啟動流動泵, 將適當濃度的菌液通過玻片,使細菌能夠依附在玻片表面,培養(yǎng)液從一個液室流出,穿過流動池,然后被另一個液室收集,黏附在玻片上的細菌逐漸向生物膜發(fā)展。在這種流動的方式中,培養(yǎng)液會對生物膜產(chǎn)生一種沖刷力,即剪切力,對生物膜的生長和發(fā)育產(chǎn)生相當重要的作用[44]。同時,生物膜的生長狀況可以利用顯微鏡進行實時監(jiān)測。流室法由于剪切力的存在所以會淘汰掉黏附能力弱的細菌,形成的生物膜量相對來說較少,并且保持裝置良好的氣密性并防止?jié)B漏是一大難點。但流室法可以直接接觸生物膜并取樣,能夠?qū)ι锬さ纳L狀況進行實時監(jiān)測,如細菌的黏附、初始菌落的形成和成熟生物膜結(jié)構(gòu)的建立等。

        2.5 微流體裝置

        微流體提供了一個封閉的系統(tǒng),生物膜可以與水動力環(huán)境相互作用,并能夠開發(fā)數(shù)學(xué)模型來解釋這些相互作用的影響;同時,也可以揭示水動力條件對生物膜發(fā)育的影響[46]。目前,現(xiàn)有的微流控裝置可以分為連續(xù)流動裝置、紙基裝置和數(shù)字微流控裝置[53],由通道、腔室、多孔壁、夾縫等結(jié)構(gòu)組成的微流體可制成人工微觀生態(tài)系統(tǒng)。微流控系統(tǒng)中的捕獲設(shè)備通常是光學(xué)顯微鏡(常規(guī)、熒光或共聚焦激光顯微鏡),為了追蹤微生物細胞,顯微鏡需要自動聚焦和焦點偏移補償或者收集高分辨率圖像數(shù)據(jù),通過對圖像和數(shù)據(jù)的處理獲取所需信息[47]。與傳統(tǒng)的方法相比,微流控的精度可達亞細胞,因此可從單細胞尺度上實現(xiàn)不同物理化學(xué)特性的生境[54];液體流動的性質(zhì)能夠調(diào)節(jié)養(yǎng)分、空氣、溫度等環(huán)境因素與生物膜之間的相互作用[55]。

        3 生物膜的檢測技術(shù)

        生物膜的生物量和活力可以通過微生物學(xué)或分子學(xué)方法來檢測,主要依賴于生物膜的物理和化學(xué)特性;顯微鏡技術(shù)可以更直觀地描述生物膜的空間結(jié)構(gòu)、異質(zhì)性及其與群落功能的聯(lián)系。表2總結(jié)了常用到的生物膜檢測技術(shù)及其優(yōu)缺點。

        3.1 染色法

        如圖5所示,利用生物膜內(nèi)物質(zhì)(如EPS)對某些染料或熒光染料的特異性結(jié)合和吸附,可以通過染色的辦法對生物膜進行間接性定量測定。這種檢測方法可對活細胞、死細胞以及生物膜基質(zhì)中存在的一些成分進行染色,因此非常適合于定量生物膜總生物量[56]。染色法適用于各種生物膜生物量的測定,但在洗滌染液過程中如操作不當可能會分離和去除固著的細菌細胞,導(dǎo)致數(shù)據(jù)產(chǎn)生人工誤差,因此洗滌時需要控制好沖洗強度。

        3.2 熒光原位雜交(fluorescent in situ hydridization,F(xiàn)ISH)

        熒光原位雜交(圖6)利用熒光染料直接或間接標記核酸探針,待標記的探針與樣本的核酸序列堿基互補雜交后,將其置于顯微鏡下觀察。熒光染料的多樣性使得生物膜的觀察更具選擇性。這種技術(shù)的應(yīng)用能夠讓我們更深層次地對生物膜內(nèi)部物質(zhì)的分布有所認識[21],同時也能明確生物膜應(yīng)對外界環(huán)境變化時基因的表達和調(diào)控。熒光原位雜交能夠通過使用組合標記技術(shù)識別更多的物種,其中每個物種用多個熒光探針標記,然后光譜成像,對多物種生物膜形成的研究具有重大的意義。

        3.3 光學(xué)相干斷層掃描(optical coherence tomography,OCT)

        光學(xué)相干斷層掃描(圖7)是近年來發(fā)展較快的一種最具發(fā)展前景的新型層析成像技術(shù),利用寬帶光源的低時間相干性分辨檢測樣品不同深度的反射光或背散射光,以獲取樣品的斷層掃描圖像。它能夠檢測生物膜不同深度層面的入射信號,通過掃描可以得到生物膜的三維結(jié)構(gòu)圖像,具有快速、無接觸、無損傷、成像分辨率高的優(yōu)點。Dreszer等對超濾膜表面生物膜應(yīng)用OCT進行了觀測,發(fā)現(xiàn)生物膜呈“蘑菇”狀突起結(jié)構(gòu),且生物膜厚度的局部差異是由這種突起結(jié)構(gòu)所引起[68]。

        3.4 激光共聚焦掃描顯微鏡(confocal laser scanning microscope,CLSM)

        激光共聚焦掃描顯微鏡(圖8)出現(xiàn)在20世紀后期,是一種廣泛應(yīng)用的新技術(shù)。它將一些現(xiàn)代科學(xué)技術(shù)(如激光、電子攝像、計算機圖像處理等)相結(jié)合,是研究生物膜常用和有效的原位觀測儀器。

        CLSM在傳統(tǒng)熒光多功能顯微鏡成像的基礎(chǔ)上安裝了激光掃描裝置,通過紫外線或可見光觸發(fā)熒光探測器,并利用計算機對所觀測的對象進行數(shù)碼影像處理觀察、數(shù)據(jù)分析并傳輸,由此獲得了生物膜內(nèi)微觀構(gòu)造的熒光圖像信息。其最大的優(yōu)勢是可以對生物膜進行斷層掃描和成像,無損傷地觀測和分析生物膜的三維空間結(jié)構(gòu)[62],能夠得到生物膜的厚度、粗糙度等信息。Xue等分別將銅綠假單胞菌和突變菌形成的生物膜進行染色,用激光共聚焦顯微鏡成像后發(fā)現(xiàn),與銅綠假單胞菌生物膜相比,突變菌生物膜的厚度顯著降低,粗糙度顯著增加[69]。

        3.5 原子力顯微鏡(atomic force microscope,AFM)

        原子力顯微鏡是一種功能強大的、無損生物樣品的納米到微米級成像技術(shù)(圖9),通過測量生物試樣表面與一些微力敏感元件間的極輕微的原子間作用力,來探究生物膜表面的構(gòu)造和特性。原子力顯微鏡通過掃描樣本可以再現(xiàn)生物膜的三維結(jié)構(gòu)圖;樣品不需要進行前處理,沒有二次傷害;能夠測定生物膜細胞水平或分子水平上的硬度、彈性、黏性等機械結(jié)構(gòu)[70]。Oh等利用原子力顯微鏡對生物膜的壓痕進行測定,結(jié)果表明成熟的生物膜會積累胞外聚合物,促使生物膜細胞的彈性和黏性得以增強[71]。Steinberger 等在納米級尺度上利用原子力顯微鏡對銅綠假單胞菌生物膜進行觀察發(fā)現(xiàn),在低濃度環(huán)境條件下,細菌主要以增加菌體長度的策略來應(yīng)對外界環(huán)境的刺激[72]。

        4 結(jié)論與展望

        微生物是地球生命系統(tǒng)中的重要組分,由微生物聚集形成的生物膜對人類的健康、工業(yè)效率和農(nóng)業(yè)環(huán)境有著重要的影響。土壤環(huán)境的空間和化學(xué)異質(zhì)性使得在土壤顆粒尺度上觀測生物膜形成的難度增大,也幾乎不可能在原位觀察土壤生物膜,因此土壤生物膜的發(fā)育信息和生理學(xué)性質(zhì)常通過模擬體系來獲得。為最大程度地模擬土壤生物膜在自然條件下的發(fā)育過程,研究者們構(gòu)建了各式各樣的生物膜反應(yīng)器,比如文中提到過的卡爾加里培養(yǎng)、流動法等[42,49-50]。利用這些模擬體系結(jié)合光學(xué)顯微鏡技術(shù)可以得到生物膜結(jié)構(gòu)、功能、物種多樣性以及生理學(xué)性質(zhì)等信息,這對于了解土壤生物膜至關(guān)重要。

        本實驗室前期探究了生物膜對天然及工程納米顆粒的響應(yīng),采用了染色法、傅里葉變換紅外光譜(FTIR)、激光共聚焦顯微鏡(CLSM)、高分辨率的電子顯微鏡(SEM、AFM)、等溫滴定微量熱儀(ITC)、石英晶體微天平(QCM-D)等現(xiàn)代分析手段,對土壤環(huán)境中納米顆粒及微生物效應(yīng)進行了評估,結(jié)果表明,低濃度納米顆粒刺激細菌釋放更多信號分子來促進生物膜形成[73],成熟生物膜對納米顆粒有更強的耐受性[13];細胞毒性的產(chǎn)生是由于納米顆粒與細菌細胞直接接觸和內(nèi)生化進入細胞所引起且納米顆粒能夠加速成熟生物膜中細胞的解體[73-74]。

        以往針對單一物種形成的生物膜展開了較多研究,但是在自然界中多物種生物膜的存在形式才是常態(tài),目前我們所獲取的有關(guān)多物種生物膜的信息還十分缺乏。結(jié)合筆者所在課題組前期研究成果以及目前土壤多物種生物膜研究面臨的問題,未來需要從以下幾個方面展開研究:(1) 進行多物種生物膜與土壤礦物的相互作用研究,探索礦物對多物種生物膜中微生物間的競爭、協(xié)作、信息傳遞等的影響;(2) 多物種生物膜的形成對土壤團聚體形成、穩(wěn)定性,土壤肥力的保持和養(yǎng)分循環(huán)的作用;(3) 多物種生物膜對有毒物質(zhì)(如重金屬等)、有機污染物(如抗生素等)的吸附和降解機制,揭示生物膜的生態(tài)環(huán)境效益;(4) 采用更加先進的研究技術(shù)手段,如拉曼光譜技術(shù)、同步輻射光譜技術(shù)、組學(xué)技術(shù)等對多物種生物膜的形貌、熱力學(xué)特征、EPS組成及其功能、基因調(diào)控機制等方面進行研究,這些技術(shù)對研究多物種生物膜結(jié)構(gòu)和功能有著重要作用;同時,也將加深我們對多物種生物膜的發(fā)育和演變的了解。

        參考文獻:

        [1]Vu B,Chen M,Crawford R,et al. Bacterial extracellular polysaccharides involved in biofilm formation[J]. Molecules,2009,14(7):2535-2554.

        [2]Burmlle M,Ren D W,Bjarnsholt T,et al. Interactions in multispecies biofilms:do they actually matter?[J]. Trends in Microbiology,2014,22(2):84-91.

        [3]Nannipieri P,Ascher J,Ceccherini M T,et al. Microbial diversity and soil functions[J]. European Journal of Soil Science,2017,68(1):12-26.

        [4]Barea J M,Pozo M J,Azcón R,et al. Microbial co-operation in the rhizosphere[J]. Journal of Experimental Botany,2005,56(417):1761-1778.

        [5]Ma W T,Peng D H,Walker S L,et al. Bacillus subtilis biofilm development in the presence of soil clay minerals and iron oxides[J]. NPJ Biofilms and Microbiomes,2017,3:4.

        [6]Velmourougane K,Prasanna R. Influence of l-amino acids on aggregation and biofilm formation in Azotobacter chroococcum and Trichoderma viride[J]. Journal of Applied Microbiology,2017,123(4):977-991.

        [7]張 銘,蔡 鵬,吳一超,等. 細菌胞外聚合物:基于土壤生態(tài)功能的視角[J]. 土壤學(xué)報,2022,59(2):308-323.

        [8]Flemming H C,Wingender J. The biofilm matrix[J]. Nature Reviews Microbiology,2010,8(9):623-633.

        [9]Sutherland I. Biofilm exopolysaccharides:a strong and sticky framework[J]. Microbiology,2001,147(1):3-9.

        [10]Koele N,Turpault M P,Hildebrand E E,et al. Interactions between mycorrhizal fungi and mycorrhizosphere bacteria during mineral weathering:budget analysis and bacterial quantification[J]. Soil Biology and Biochemistry,2009,41(9):1935-1942.

        [11]Burns R G,Dick R P. Enzymes in the environment:activity,ecology,and applications[M]. New York:Marcel Dekker,2002.

        [12]Sutherland I W. The biofilm matrix—An immobilized but dynamic microbial environment[J]. Trends in Microbiology,2001,9(5):222-227.

        [13]Ouyang K,Yu X Y,Zhu Y L,et al. Effects of humic acid on the interactions between zinc oxide nanoparticles and bacterial biofilms[J]. Environmental Pollution,2017,231:1104-1111.

        [14]Xing Y H,Luo X S,Liu S,et al. Synergistic effect of biofilm growth and cadmium adsorption via compositional changes of extracellular matrix in montmorillonite system[J]. Bioresource Technology,2020,315:123742.

        [15]Donlan R M,Costerton J W. Biofilms:survival mechanisms of clinically relevant microorganisms[J]. Clinical Microbiology Reviews,2002,15(2):167-193.

        [16]Camargo S E A,Xia X Y,F(xiàn)ares C,et al. Nanostructured surfaces to promote osteoblast proliferation and minimize bacterial adhesion on titanium[J]. Materials,2021,14(16):4357.

        [17]Li Y Z,Li X,Hao Y,et al. Biological and physiochemical methods of biofilm adhesion resistance control of medical-context surface[J]. International Journal of Biological Sciences,2021,17(7):1769-1781.

        [18]葛占標,殷涂童,周倩倩,等. 產(chǎn)生物膜芽胞桿菌阻控葉菜吸收鎘、鉛及其修復(fù)菜地土壤的作用[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2020,43(1):80-88.

        [19]Stenlkke Madsen J,Burmlle M,Hansen L H,et al. The interconnection between biofilm formation and horizontal gene transfer[J]. FEMS Immunology & Medical Microbiology,2012,65(2):183-195.

        [20]Srensen S J,Bailey M,Hansen L H,et al. Studying plasmid horizontal transfer in situ:a critical review[J]. Nature Reviews Microbiology,2005,3(9):700-710.

        [21]Thurnheer T,Gmür R,Guggenheim B. Multiplex FISH analysis of a six-species bacterial biofilm[J]. Journal of Microbiological Methods,2004,56(1):37-47.

        [22]Borlee B R,Goldman A D,Murakami K,et al. Pseudomonas aeruginosauses a cyclic-di-GMP-regulated adhesin to reinforce the biofilm extracellular matrix[J]. Molecular Microbiology,2010,75(4):827-842.

        [23]Stoodley P,Sauer K,Davies D G,et al. Biofilms as complex differentiated communities[J]. Annual Review of Microbiology,2002,56:187-209.

        [24]Danese P N,Pratt L A,Kolter R. Exopolysaccharide production is required for development of Escherichia coli K-12 biofilm architecture[J]. Journal of Bacteriology,2000,182(12):3593-3596.

        [25]McDougald D,Rice S A,Barraud N,et al. Should we stay or should we go:mechanisms and ecological consequences for biofilm dispersal[J]. Nature Reviews Microbiology,2012,10(1):39-50.

        [26]Flemming H C,Wingender J,Szewzyk U,et al. Biofilms:an emergent form of bacterial life[J]. Nature Reviews Microbiology,2016,14(9):563-575.

        [27]Billings N,Birjiniuk A,Samad T S,et al. Material properties of biofilms—A review of methods for understanding permeability and mechanics[J]. Reports on Progress in Physics,2015,78(3):036601.

        [28]Schaechter M. Encyclopedia of microbiology[M]. Pittsburgh:Academic Press,2009.

        [29]Battin T J,Besemer K,Bengtsson M M,et al. The ecology and biogeochemistry of stream biofilms[J]. Nature Reviews Microbiology,2016,14(4):251-263.

        [30]Pinchuk G E,Ammons C,Culley D E,et al. Utilization of DNA as a sole source of phosphorus,carbon,and energy by Shewanella spp.:ecological and physiological implications for dissimilatory metal reduction[J]. Applied and Environmental Microbiology,2008,74(4):1198-1208.

        [31]Geng N,Xia Y F,Lu D B,et al. The bacterial community structure in epiphytic biofilm on submerged macrophyte Potamogetom crispus L. and its contribution to heavy metal accumulation in an urban industrial area in Hangzhou[J]. Journal of Hazardous Materials,2022,430:128455.

        [32]Grumbein S,Opitz M,Lieleg O. Selected metal ions protect Bacillus subtilis biofilms from erosion[J]. Metallomics,2014,6(8):1441-1450.

        [33]Weaver L,Webber J B,Hickson A C,et al. Biofilm resilience to desiccation in groundwater aquifers:a laboratory and field study[J]. Science of the Total Environment,2015,514:281-289.

        [34]Adessi A,de Carvalho R C,De Philippis R,et al. Microbial extracellular polymeric substances improve water retention in dryland biological soil crusts[J]. Soil Biology and Biochemistry,2018,116:67-69.

        [35]Tielen P,Kuhn H,Rosenau F,et al. Interaction between extracellular lipase LipA and the polysaccharide alginate of Pseudomonas aeruginosa[J]. BMC Microbiology,2013,13:159.

        [36]Schmidt T M,Schaechter M. Topics in ecological and environmental microbiology[M]. Amsterdam:Elsevier,2012.

        [37]Worm J,Jensen L E,Hansen T S,et al. Interactions between proteolytic and non-proteolytic Pseudomonas fluorescens affect protein degradation in a model community[J]. FEMS Microbiology Ecology,2000,32(2):103-109.

        [38]Raklami A,Oufdou K,Tahiri A I,et al. Safe cultivation of Medicago sativa in metal-polluted soils from semi-arid regions assisted by heat-and metallo-resistant PGPR[J]. Microorganisms,2019,7(7):212.

        [39]Sneha G,Birapu U K C,Puppala R,et al. Antimicrobial efficacy of lipopeptide antibiotic,lantibiotic and cationic bisbiguanide against Enterococcus faecalis biofilm:an in-vitro study[J]. Journal of Clinical and Diagnostic Research,2019,13(6):32-35.

        [40]Lennon J T,Lehmkuhl B K. A trait-based approach to bacterial biofilms in soil[J]. Environmental Microbiology,2016,18(8):2732-2742.

        [41]Sharma A,Vashistt J,Shrivastava R. Response surface modeling integrated microtiter plate assay for Mycobacterium fortuitum biofilm quantification[J]. Biofouling,2021,37(8):830-843.

        [42]Diepoltová A,Konecˇná K,Jandourek O,et al. Study of the impact of cultivation conditions and peg surface modification on the in vitro biofilm formation of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis in a system analogous to the Calgary biofilm device[J]. Journal of Medical Microbiology,2021,70(5):10.1099/jmm.0.001371.

        [43]Chavant P,Gaillard-Martinie B,Talon R,et al. A new device for rapid evaluation of biofilm formation potential by bacteria[J]. Journal of Microbiological Methods,2007,68(3):605-612.

        [44]Tsai Y P,Pai T Y,Qiu J M. The impacts of the AOC concentration on biofilm formation under higher shear force condition[J]. Journal of Biotechnology,2004,111(2):155-167.

        [45]Lewandowski Z,Beyenal H,Stookey D. Reproducibility of biofilm processes and the meaning of steady state in biofilm reactors[J]. Water Science and Technology:a Journal of the International Association on Water Pollution Research,2004,49(11/12):359-364.

        [46]Cai P,Sun X J,Wu Y C,et al. Soil biofilms:microbial interactions,challenges,and advanced techniques for ex-situ characterization[J]. Soil Ecology Letters,2019,1(3):85-93.

        [47]Oliveira N M,Martinez-Garcia E,Xavier J,et al. Biofilm formation as a response to ecological competition[J]. PLoS Biology,2015,13(7):e1002191.

        [48]Aleklett K,Kiers E T,Ohlsson P,et al. Build your own soil:exploring microfluidics to create microbial habitat structures[J]. The ISME Journal,2018,12(2):312-319.

        [49]Edmonds J M,Collett P J,Valdes E R,et al. Surface sampling of spores in dry-deposition aerosols[J]. Applied and Environmental Microbiology,2009,75(1):39-44.

        [50]Müller P,Guggenheim B,Attin T,et al. Potential of shock waves to remove calculus and biofilm[J]. Clinical Oral Investigations,2011,15(6):959-965.

        [51]Grand I,Bellon-Fontaine M N,Herry J M,et al. Possible overestimation of surface disinfection efficiency by assessment methods based on liquid sampling procedures as demonstrated by in situ quantification of spore viability[J]. Applied and Environmental Microbiology,2011,77(17):6208-6214.

        [52]Olivares E,Badel-Berchoux S,Provot C,et al. The BioFilm ring test:a rapid method for routine analysis of Pseudomonas aeruginosa biofilm formation kinetics[J]. Journal of Clinical Microbiology,2016,54(3):657-661.

        [53]Liu Y G,Walther-Antonio M. Microfluidics:a new tool for microbial single cell analyses in human microbiome studies[J]. Biomicrofluidics,2017,11(6):061501.

        [54]Damschen E I,Brudvig L A,Haddad N M,et al. The movement ecology and dynamics of plant communities in fragmented landscapes[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2008,105(49):19078-19083.

        [55]Squires T M,Quake S R. Microfluidics:Fluid physics at the nanoliter scale[J]. Reviews of Modern Physics,2005,77(3):977-1026.

        [56]Pitts B,Hamilton M A,Zelver N,et al. A microtiter-plate screening method for biofilm disinfection and removal[J]. Journal of Microbiological Methods,2003,54(2):269-276.

        [57]Peeters E,Nelis H J,Coenye T. Comparison of multiple methods for quantification of microbial biofilms grown in microtiter plates[J]. Journal of Microbiological Methods,2008,72(2):157-165.

        [58]Fontenete S,Leite M,Guimares N,et al. Towards fluorescence in vivo hybridization (FIVH) detection of H.pylori in gastric mucosa using advanced LNA probes[J]. PLoS One,2015,10(4):e0125494.

        [59]Valm A M,Mark Welch J L,Rieken C W,et al. Systems-level analysis of microbial community organization through combinatorial labeling and spectral imaging[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2011,108(10):4152-4157.

        [60]Wang M R. Optical Coherence Tomography and Its Non-medical Applications[M]. Amsterdam:Elsevier,2020.

        [61]Zago E I,Samdani A J,Pereira G T R,et al. An assessment of the quality of optical coherence tomography image acquisition[J]. The International Journal of Cardiovascular Imaging,2020,36(6):1013-1020.

        [62]Bridier A,Dubois-Brissonnet F,Boubetra A,et al. The biofilm architecture of sixty opportunistic pathogens deciphered using a high throughput CLSM method[J]. Journal of Microbiological Methods,2010,82(1):64-70.

        [63]Villacorte L O,Ekowati Y,Neu T R,et al. Characterisation of algal organic matter produced by bloom-forming marine and freshwater algae[J]. Water Research,2015,73:216-230.

        [64]Beaussart A,El-Kirat-Chatel S,Sullan R M A,et al. Quantifying the forces guiding microbial cell adhesion using single-cell force spectroscopy[J]. Nature Protocols,2014,9(5):1049-1055.

        [65]Cabral V,Znaidi S,Walker L A,et al. Targeted changes of the cell wall proteome influence Candida albicans ability to form single-and multi-strain biofilms[J]. PLoS Pathogens,2014,10(12):e1004542.

        [66]Oates A,Bowling F L,Boulton A J M,et al. The visualization of biofilms in chronic diabetic foot wounds using routine diagnostic microscopy methods[J]. Journal of Diabetes Research,2014,2014:153586.

        [67]紀丹丹. 模擬體系中稻田土壤生物膜形成過程與結(jié)構(gòu)和代謝特性研究[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2018.

        [68]Dreszer C,Wexler A D,Drusová S,et al. In-situ biofilm characterization in membrane systems using Optical Coherence Tomography:formation,structure,detachment and impact of flux change[J]. Water Research,2014,67:243-254.

        [69]Xue Z,Lee W H,Coburn K M,et al. Selective reactivity of

        monochloramine with extracellular matrix components affects the disinfection of biofilm and detached clusters[J]. Environmental Science & Technology,2014,48(7):3832-3839.

        [70]楊閃閃,黃巧云,蔡 鵬. 原子力顯微鏡(AFM)在細菌生物被膜研究中的應(yīng)用[J]. 生物工程學(xué)報,2017,33(9):1399-1410.

        [71]Oh Y J,Jo W,Yang Y,et al. Influence of culture conditions on Escherichia coli O157:H7 biofilm formation by atomic force microscopy[J]. Ultramicroscopy,2007,107(10/11):869-874.

        [72]Steinberger R E,Allen A R,Hansma H G,et al. Elongation correlates with nutrient deprivation in Pseudomonas aeruginosa unsaturated biofilms[J]. Microbial Ecology,2002,43(4):416-423.

        [73]Ouyang K,Mortimer M,Holden P A,et al. Towards a better understanding of Pseudomonas putida biofilm formation in the presence of ZnO nanoparticles (NPs):role of NP concentration[J]. Environment International,2020,137:105485.

        [74]Ouyang K,Walker S L,Yu X Y,et al. Metabolism,survival,and gene expression of Pseudomonas putida to hematite nanoparticles mediated by surface-bound humic acid[J]. Environmental Science:Nano,2018,5(3):682-695.

        猜你喜歡
        檢測技術(shù)
        工廠空氣污染與污染檢測技術(shù)
        計算機軟件安全漏洞檢測技術(shù)
        前海合作區(qū)建設(shè)工程檢測技術(shù)應(yīng)用研究
        傳感器與檢測技術(shù)在機電一體化系統(tǒng)中的應(yīng)用
        有關(guān)我國特種設(shè)備檢測技術(shù)現(xiàn)狀的分析與展望
        祖國(2016年20期)2016-12-12 19:18:39
        農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量控制中農(nóng)藥殘留檢測技術(shù)的應(yīng)用
        食品安全檢測技術(shù)研究現(xiàn)狀
        公路工程試驗檢測存在的問題及措施
        價值工程(2016年30期)2016-11-24 16:39:03
        煤礦機電產(chǎn)品檢測技術(shù)
        鍋爐檢測應(yīng)用壓力管道無損檢測技術(shù)的分析
        中文字幕国产精品专区| 人人妻人人狠人人爽| 潮喷大喷水系列无码久久精品| 国产男女猛烈无遮挡免费网站| 8ⅹ8x擦拨擦拨成人免费视频 | 大地资源在线观看官网第三页| 免费av片在线观看网站| 手机AV片在线| 日日麻批免费高清视频| 无码熟妇人妻av影音先锋| 久久久久久国产精品免费免费男同| 狠干狠爱无码区| 亚洲国产精品午夜电影| av毛片一区二区少妇颜射| 一本到亚洲av日韩av在线天堂 | 国产精品久久一区性色a| 81久久免费精品国产色夜| 日本孕妇潮喷高潮视频| 丰满人妻av无码一区二区三区| 国产精品每日更新在线观看| 青青草免费观看视频免费| 深夜爽爽动态图无遮无挡| 国产成人无码免费视频在线| av网站免费线看| 日韩午夜在线视频观看| 99精品国产一区二区三区| av国产传媒精品免费| 人妻aⅴ无码一区二区三区| 久久免费观看国产精品| 美女福利视频在线观看网址| 黄片视频免费在线播放观看| 国产色xx群视频射精| 看黄网站在线| 日韩人妻无码精品系列专区无遮| 91精品国产综合久久国产| 亚洲日韩精品无码av海量| 中国国语毛片免费观看视频| 亚洲综合五月天欧美| 国产喷白浆精品一区二区豆腐| 亚洲大尺度无码无码专区| 亚洲avav天堂av在线网爱情|