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        山茶炭疽菌對(duì)茶樹的致病性及其對(duì)殺菌劑的敏感性研究

        2023-03-10 00:56:56程開鑫楊凱欣鄧雅元黎欣劉恩貝王玉春呂務(wù)云
        茶葉科學(xué) 2023年1期
        關(guān)鍵詞:山茶吡唑分生孢子

        程開鑫,楊凱欣,鄧雅元,黎欣,劉恩貝,王玉春,2*,呂務(wù)云*

        1.浙江農(nóng)林大學(xué)茶學(xué)與茶文化學(xué)院,浙江 杭州 311300;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院茶葉研究所/國家茶樹改良中心/農(nóng)業(yè)部茶樹生物學(xué)與資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江 杭州 310008

        茶樹(Camellia sinensis)是一種重要的經(jīng)濟(jì)作物,廣泛種植于全世界多個(gè)國家和地區(qū)[1-2]。病原菌侵染造成的葉部病害通常會(huì)影響茶樹的生長以及茶葉的產(chǎn)量和品質(zhì)[3-5]。由炭疽菌屬(Colletotrichum)真菌引起的茶樹葉枯類病害是茶園常見病害之一。病原菌通常從幼嫩葉片背面的氣孔等自然孔口侵入茶樹,潛伏期達(dá)1~2周[6]。在侵染早期,被侵染葉片上出現(xiàn)深綠色、水漬狀病斑,之后逐漸發(fā)展為較大的棕色病斑,并且病斑聚集[6-7]。侵染后期,病斑邊緣褪色,病斑上產(chǎn)生密集的黑色點(diǎn)狀分生孢子盤,產(chǎn)生的分生孢子可促進(jìn)病害的傳播[6,8]。此外,炭疽菌也可通過采摘、修剪或風(fēng)雨形成的傷口侵入茶樹葉片[7]。

        炭疽菌屬真菌種類繁多,分布于世界各地,是為害多種植物的病原真菌,通過多基因系統(tǒng)發(fā)育學(xué)結(jié)合形態(tài)特征作為炭疽菌種類的鑒定方法已得到全世界的認(rèn)可[9]。前人已對(duì)茶樹炭疽菌的物種多樣性進(jìn)行了系統(tǒng)研究。Orrock等[10]將分離自美國茶園發(fā)病茶樹上的炭疽菌鑒定為山茶炭疽菌(Colletotrichum camelliae)。貢長怡等[11]收集了我國12個(gè)省份茶區(qū)的茶樹炭疽病病葉,分離得到57株菌株,經(jīng)過多位點(diǎn)序列和聚類分析發(fā)現(xiàn),山茶炭疽菌和果生炭疽菌(C.fructicola)分離頻率較高。Liu等[6]通過收集我國7個(gè)省份茶樹樣品,分離鑒定了11種炭疽菌,認(rèn)為山茶炭疽菌(C.camelliae)是我國茶樹炭疽菌的優(yōu)勢(shì)種,提出利用ApMat(Apn2-Mat1-2)和GS(Glutamine synthetase)基因構(gòu)建的多基因系統(tǒng)發(fā)育樹,可以準(zhǔn)確區(qū)分膠孢炭疽菌復(fù)合種(C.gloeosporioides complex)的大部分種類。Wang等[12]對(duì)收集自全國13個(gè)省份茶樹病葉進(jìn)行分離,鑒定明確了山茶炭疽菌是我國茶樹炭疽病優(yōu)勢(shì)病原菌之一,并對(duì)其形態(tài)學(xué)特征進(jìn)行了詳細(xì)描述,但對(duì)于該炭疽菌的致病性及防治方法未深入分析。當(dāng)前,噴施化學(xué)藥劑仍然是防治茶樹病害的主要手段。王國君等[13]分析了4種殺菌劑對(duì)茶樹炭疽病的田間防治效果,發(fā)現(xiàn)25%吡唑醚菌酯乳油效果最好。He等[14]進(jìn)一步測(cè)試了95%吡唑醚菌酯對(duì)4種炭疽菌的藥效,發(fā)現(xiàn)其對(duì)山茶炭疽菌抑菌有效中濃度(EC50)為0.27 μg·mL-1。貢長怡[15]測(cè)定了山茶炭疽菌對(duì)苯醚甲環(huán)唑、吡唑醚菌酯、甲基硫菌靈和百菌清4種藥劑的敏感性,發(fā)現(xiàn)山茶炭疽菌對(duì)苯醚甲環(huán)唑敏感性較高,EC50分布在0.058 4~0.498 4 μg·mL-1。由于我國茶樹品種多、分布廣,可能造成不同寄主來源的山茶炭疽菌在遺傳進(jìn)化關(guān)系、致病力等方面存在差異,并且殺菌劑對(duì)不同來源的菌株是否有差異尚不清楚。

        因此,本研究廣泛收集了我國茶葉主產(chǎn)區(qū)山茶炭疽菌菌株,并對(duì)其地理分布、致病性及其對(duì)吡唑醚菌酯的敏感性進(jìn)行系統(tǒng)分析,旨在為茶樹葉部病害的防治提供科學(xué)依據(jù)和參考。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        茶樹病葉分別于2014—2022年采集自安徽、貴州、河南、湖南、江蘇、江西、陜西、四川、西藏、云南、浙江、廣東、重慶13個(gè)省份多個(gè)茶區(qū)的不同茶樹品種,用于致病性分析的國家級(jí)茶樹良種龍井43(LJ43)采自中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院茶葉研究所茶園。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 病原菌的分離與純化

        采用單孢分離法分離病原菌[16]。用消毒后的接菌環(huán)將病葉上的分生孢子堆刮下,懸浮于無菌水中。將分生孢子懸浮液稀釋至適當(dāng)濃度后涂布于馬鈴薯葡萄糖瓊脂(PDA)平板上,25 ℃黑暗條件下培養(yǎng)過夜。待菌絲長出后,將單個(gè)孢子萌發(fā)產(chǎn)生的菌絲轉(zhuǎn)移到新的PDA平板上,繼續(xù)純化培養(yǎng)。分離純化后的菌株轉(zhuǎn)移至PDA斜面后4 ℃保存。

        1.2.2 病原菌形態(tài)學(xué)觀察

        菌株在PDA平板上培養(yǎng)5 d后,用滅菌后的打孔器(直徑5 mm)在菌落邊緣打孔,然后轉(zhuǎn)移至新的PDA平板中央,25 ℃黑暗培養(yǎng)5 d,采用十字交叉法測(cè)量并記錄菌落直徑,觀察菌落在PDA平板上的顏色及氣生菌絲生長情況,并拍攝菌落形態(tài)。將5~10個(gè)直徑5 mm的菌餅接種至100 mL馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基(PDB)中,在28 ℃、180 r·min-1搖床中培養(yǎng)誘導(dǎo)產(chǎn)生分生孢子。使用SOPTOP-CX40RFL顯微鏡觀察分生孢子形態(tài),并拍照記錄。每個(gè)試驗(yàn)設(shè)置3個(gè)重復(fù),并獨(dú)立重復(fù)3次。

        1.2.3 DNA提取及PCR擴(kuò)增

        菌落培養(yǎng)5 d后,采用Ezup柱式真菌基因組DNA純化試劑盒[生工生物工程(上海)股份有限公司]提取病原菌菌絲基因組DNA,并存儲(chǔ)于-20 ℃。PCR擴(kuò)增ApMat和ITS基因片段[17]。PCR引物AMF1為5'-TCATTCTACG TATGTGCCCG-3',AMR1為5'-CCAGAAATA CACCGAACTTGC-3';ITS-1F 為5'-CTTGGT CATTTAGAGGAAGTAA-3',ITS-4 為5'-TCCT CCGCTTATTGATATGC-3'。PCR反應(yīng)體系:25 μL 2×Taq Master Mix,1 μL 10 μmol·L-1上游引物,1 μL 10 μmol·L-1下游引物,22 μL ddH2O和1 μL基因組DNA。反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,52 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸7 min,4 ℃保存。取5 μL PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行電泳檢測(cè),將目的條帶樣品送至杭州有康生物科技有限公司進(jìn)行純化測(cè)序。

        1.2.4 系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建

        所有菌株的基因序列在 NCBI網(wǎng)站進(jìn)行BLAST比對(duì)。采用MAFFT v.7進(jìn)行多序列比對(duì)[18],使用MEGA v.6軟件進(jìn)行手動(dòng)校正[19]。利用FastTree軟件以Maximum Likelihood方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[20]。

        1.2.5 致病性測(cè)定

        以5年生茶樹LJ43為材料,選取當(dāng)年生枝條芽下第三、四葉進(jìn)行接種處理。將健康完整的葉片進(jìn)行表面消毒后,在葉片正面葉脈左右兩側(cè)的葉片表皮上輕劃 4道平行傷口作為接種點(diǎn)。使用5 mm滅菌打孔器,對(duì)PDA培養(yǎng)基上28 ℃黑暗培養(yǎng)5 d的菌落進(jìn)行打孔,菌餅置于葉片的兩處接種點(diǎn)上,對(duì)照用相同大小的無菌瓊脂塊處理,每個(gè)菌株設(shè)3個(gè)重復(fù)。接種后置于人工氣候培養(yǎng)箱中,28 ℃黑暗保濕培養(yǎng)3 d,觀察發(fā)病情況并統(tǒng)計(jì)病斑大小。最后,重新對(duì)病斑進(jìn)行分離培養(yǎng),并與原始接種菌株的形態(tài)特征進(jìn)行比較。

        1.2.6 殺菌劑敏感性測(cè)定

        試驗(yàn)采用吡唑醚菌酯懸浮劑[有效成分含量為25%,安道麥安邦(江蘇)有限公司]作為處理藥劑。根據(jù)He等[14]報(bào)道,有效成分含量為95%的吡唑醚菌酯懸浮劑對(duì)山茶炭疽菌的EC50為0.27 μg·mL-1,為保證有效成分一致,將本試驗(yàn)使用的供試藥劑25%吡唑醚菌酯用量換算為同等EC50后,質(zhì)量濃度為0.284 μg·mL-1。各菌株在PDA平板上培養(yǎng)5 d后,用滅菌后的打孔器(直徑9 mm)在菌落邊緣打孔,新鮮菌餅轉(zhuǎn)移至含有0.284 μg·mL-1吡唑醚菌酯和100 mg·L-1水楊酸羥肟酸(SHAM)的PDA平板中央,以不含有任何藥劑的PDA平板作為對(duì)照,25 ℃黑暗培養(yǎng)5 d后,測(cè)量菌落直徑,計(jì)算菌絲相對(duì)生長抑制率。相對(duì)抑菌率計(jì)算方法為:相對(duì)抑菌率=(C-T)/(C-d)×100%,其中C為對(duì)照處理菌落直徑,mm;T為藥劑處理菌落直徑,mm;d為菌餅大小(9 mm)。使用0.284 μg·mL-1吡唑醚菌酯處理菌株的分生孢子,以不含吡唑醚菌酯的分生孢子懸浮液為對(duì)照,觀察并統(tǒng)計(jì)分生孢子的萌發(fā)率。

        1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

        使用Excel 2018進(jìn)行數(shù)據(jù)預(yù)處理,利用SPSS軟件單因素方差分析進(jìn)行顯著性差異檢驗(yàn),使用Photoshop CS4進(jìn)行圖像處理并作圖。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 系統(tǒng)發(fā)育學(xué)分析

        通過對(duì)采自中國13個(gè)省份茶區(qū)的不同茶樹品種病葉進(jìn)行病原菌分離,共獲得65株山茶炭疽菌菌株(表1),對(duì)ApMat和ITS基因序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并構(gòu)建多基因系統(tǒng)發(fā)育樹。結(jié)果表明,篩選的65株菌株全部與已鑒定并發(fā)表的山茶炭疽菌(C.camelliae)聚類為一族,表明收集的菌株均為山茶炭疽菌(圖1)。

        圖1 基于ApMat和ITS聯(lián)合構(gòu)建的山茶炭疽菌多基因系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.1 Phylogenetic tree of C.camelliae based on the ApMat and ITS sequences

        表1 菌株采集信息Table 1 Collection information of all isolates

        2.2 形態(tài)學(xué)特征分析

        65株菌株在PDA平板上的菌落共有形態(tài)表現(xiàn)為呈白色,氣生菌絲致密,絨毛狀,中央凸起,邊緣清晰;背面中央顏色深,四周顏色較淺,灰白色至微黃色(圖2);菌核、剛毛未見;分生孢子透明,圓柱狀,兩端鈍圓(圖3)。

        圖2 65個(gè)山茶炭疽菌菌株的菌落特征Fig.2 Colony characteristics of all isolates C.camelliae

        圖3 山茶炭疽菌菌株的分生孢子形態(tài)Fig.3 Morphological characteristics of C.camelliae conidia

        根據(jù)菌落背面的顏色,可將所有菌株分為兩組,組1表現(xiàn)為背面顏色灰白色或中央帶有黑色,包含YCW272、YCW284、YCW304、YCW698、YCW735、YCW1250、YCW1315、YCW1331、YCW1334、YCW1382、YCW1378、YCW1387和YCW1424等13個(gè)菌株;組2表現(xiàn)為背面顏色微黃色,包含其余的52個(gè)菌株。此外,菌株YCW272、YCW698、YCW1204、YCW1250、YCW1315、YCW1340 和YCW2134的菌落形態(tài)與其他菌株稍有差異,即圍繞中央產(chǎn)生一圈大小不一、更致密的白色菌絲(圖2)。各菌株在PDA平板上培養(yǎng)5 d后,各菌落之間菌落直徑存在差異,平均直徑為6.10 cm,其中 YCW1378生長最慢,菌落平均直徑為3.49 cm;YCW1331生長最快,菌落平均直徑為7.85 cm(表 2)。

        表2 各菌株的菌落直徑Table 2 Colony diameter of all isolates

        2.3 地理分布分析

        本研究中,65個(gè)菌株有31個(gè)采集自浙江省,其中 24個(gè)菌株采集自杭州市,6個(gè)菌株采集自麗水市,1個(gè)菌株采集自紹興市。其余35個(gè)菌株采集自其他12個(gè)省份,表明山茶炭疽菌地理分布廣泛。

        2.4 致病性分析

        將65個(gè)菌株分別接種于茶樹LJ43離體葉片上進(jìn)行室內(nèi)致病性測(cè)試。結(jié)果表明,有傷處理?xiàng)l件下,所有菌株均能成功侵染葉片;接種24 h后,傷口處出現(xiàn)水漬狀病斑;侵染2 d后,葉片出現(xiàn)深褐色病斑,并隨著接種時(shí)間延長,病斑從接種點(diǎn)逐漸擴(kuò)展,在接種3 d后,病斑擴(kuò)展為圓形或不規(guī)則形,病斑周圍可見黃色至褐色水漬狀暈圈,發(fā)病癥狀與田間發(fā)病情況基本一致(圖4)。

        菌株之間致病力存在顯著差異,其中YCW1180、YCW1331、YCW1382、YCW1387、YCW1419、YCW1443、YCW1451、YCW1453、YCW1454、YCW1461、YCW1613 和YCW2134等12個(gè)菌株侵染葉片形成的病斑較大,表明其致病力顯著強(qiáng)于其他菌株。菌株YCW1378侵染形成的病斑最小,平均直徑為3.29 mm,表明其致病力相對(duì)于其他菌株最弱(圖5)。

        圖5 各菌株的病斑直徑Fig.5 Lesion diameter of all isolates

        2.5 殺菌劑敏感性分析

        參照He等[14]的研究結(jié)果,采用EC50為0.284 μg·mL-1的吡唑醚菌酯處理65個(gè)山茶炭疽菌菌株。結(jié)果表明,處理3 d后,吡唑醚菌酯對(duì)不同菌株的菌絲生長抑制率不同,平均菌絲生長抑制率為72.65%,其中YCW1436菌株的敏感性顯著低于其余菌株,菌絲生長抑制率為36.00%(圖6)。用吡唑醚菌酯處理分生孢子6 h后,顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,處理后的分生孢子萌發(fā)率極顯著下降(P<0.01),有些菌株的分生孢子甚至不萌發(fā)(圖7)。此外,吡唑醚菌酯對(duì)大部分菌株的菌絲生長抑制率高于70%,表明吡唑醚菌酯對(duì)山茶炭疽菌具有較高的抑菌活性。

        圖6 25%吡唑醚菌酯(0.284 μg·mL-1)處理山茶炭疽菌3 d后的菌絲生長抑制率Fig.6 Inhibition rate of mycelial growth under the 25% pyraclostrobin (0.284 μg·mL-1) treatment for 3 d

        圖7 25%吡唑醚菌酯(0.284 μg·mL-1)處理山茶炭疽菌分生孢子6 h后的萌發(fā)率Fig.7 Rate of conidial germination under the 25% pyraclostrobin (0.284 μg·mL-1) treatment for 6 h

        3 討論

        葉部病害是威脅茶樹生長和茶葉產(chǎn)品質(zhì)量的主要影響因素之一[21]。山茶炭疽菌是造成茶樹葉枯類病害的優(yōu)勢(shì)病原菌[12]。自1899年,Massee從斯里蘭卡的茶樹上發(fā)現(xiàn)并記錄山茶炭疽菌以來[6,22],除山茶屬植物以外,該菌種未在其他植物上有報(bào)道。Liu等[6]在前人研究基礎(chǔ)上,對(duì)山茶炭疽菌的分類學(xué)地位和形態(tài)學(xué)特征進(jìn)行了重新定義和描述。本研究通過多基因系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)合形態(tài)學(xué)特征,從我國13個(gè)省份茶區(qū)不同茶樹品種病葉中收集鑒定了65株山茶炭疽菌菌株,其菌落特征總體為菌落平整、邊緣整齊、氣生菌絲白色、棉狀、稀疏,與前人報(bào)道的菌落形態(tài)特征基本一致[6,12],進(jìn)一步根據(jù)菌落在PDA平板上形成的色素沉積差異,將山茶炭疽菌分為兩組,其中組1背面顏色灰白色,包含13個(gè)菌株;組2背面顏色微黃色,包含52個(gè)菌株。這種種內(nèi)不同菌株的菌落形態(tài)出現(xiàn)分化的現(xiàn)象,在其他植物病原真菌中已有報(bào)道[23-24]。朱名海[25]研究發(fā)現(xiàn),分離自海南南繁區(qū)的60個(gè)稻瘟病菌(Magnaporthe oryzae)菌株在PDA培養(yǎng)基上的培養(yǎng)性狀不完全一致。許娟[26]對(duì)采自安徽省23個(gè)地方的小麥赤霉病菌(Fusarium graminearum)的菌絲培養(yǎng)性狀、生長速率等生物學(xué)特征差異進(jìn)行了分析研究,發(fā)現(xiàn)23個(gè)地方的小麥赤霉病菌在PDA培養(yǎng)基上的顏色大致分為淺紅、紅色、深紅及紅中帶黃。本研究中山茶炭疽菌兩組內(nèi)的菌株采集自不同地區(qū),其地理分布、茶樹品種和采集地氣候條件等環(huán)境因素不同,可能造成山茶炭疽菌具有豐富的遺傳多樣性,因此各菌株的生物學(xué)特性存在一定差異。

        國家級(jí)茶樹良種LJ43選育自浙江龍井群體種,品質(zhì)優(yōu)良,適制多種名優(yōu)茶,是我國茶區(qū)主栽品種之一,但該品種對(duì)炭疽病表現(xiàn)為高感。近年來,隨著各地茶園的提升改造,伴隨著新品種的引進(jìn),又增加了病原菌隨苗木遷移的傳播風(fēng)險(xiǎn)。本研究的致病性分析結(jié)果表明,來自不同茶區(qū)的山茶炭疽菌對(duì)LJ43的致病性存在顯著差異,在12個(gè)致病力較強(qiáng)的菌株中,有6個(gè)菌株分離自浙江,其他菌株來自重慶、貴州和四川。侵染和抵御侵染兩個(gè)過程對(duì)病原菌和寄主具有很強(qiáng)的相互選擇作用[27]。因此,我們推測(cè)共生茶樹品種的多樣性和較大的地理隔離,可能增強(qiáng)了分離自浙江省茶樹菌株的致病力。

        吡唑醚菌酯已廣泛用于防治由炭疽菌引起的植物炭疽病,如辣椒、草莓、高粱和黃瓜等炭疽病防治[28-31]。本研究分析測(cè)定了山茶炭疽菌對(duì)吡唑醚菌酯的敏感性,在有效中濃度為0.284 μg·mL-1時(shí),吡唑醚菌酯對(duì)大部分菌株的菌絲生長抑制率高于70%,表明吡唑醚菌酯對(duì)山茶炭疽菌具有較好的室內(nèi)抑菌效果。此外,吡唑醚菌酯可有效抑制分生孢子的萌發(fā)。王國君等[13]研究表明,吡唑醚菌酯對(duì)茶樹炭疽病田間防控效果優(yōu)于其他藥劑。梁碧元等[32]研究發(fā)現(xiàn),25%吡唑醚菌酯對(duì)茶樹茶餅病也有著較好的防治效果。此外,吳慶麗等[33]發(fā)現(xiàn),25%吡唑醚菌酯懸浮劑稀釋1 000倍施用后,對(duì)茶云紋葉枯病的防效達(dá)98%以上。因此,吡唑醚菌酯適用于茶樹葉部病害的防治。

        綜上所述,本研究針對(duì)分離自中國13個(gè)省份茶區(qū)不同茶樹品種的65個(gè)山茶炭疽菌菌株形態(tài)特征和致病性進(jìn)行了分析,并詳細(xì)地分析了山茶炭疽菌不同菌株對(duì)吡唑醚菌酯的敏感性。研究結(jié)果進(jìn)一步明確了山茶炭疽菌生物學(xué)特性,為后續(xù)田間防治奠定了理論基礎(chǔ)。

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