張麗芳,張淼怡,劉宇奇,鄭百芹,周璇,谷守國
1. 唐山市食品藥品綜合檢驗檢測中心(唐山 063000);2. 河北省農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全檢測工程技術(shù)創(chuàng)新中心(唐山 063000);3. 唐山市功能性農(nóng)產(chǎn)品產(chǎn)業(yè)技術(shù)研究院(唐山 063000)
乳及乳制品中含有豐富的蛋白質(zhì)、脂肪、乳糖、維生素和礦物質(zhì)等營養(yǎng)元素,在日常飲食中占據(jù)越來越重要的地位,其質(zhì)量安全問題也越來越受到關(guān)注。亞硝酸鹽廣泛存在于土壤、地表水、植物和生物系統(tǒng)中。亞硝酸鹽與食品中固有的胺類化合物是產(chǎn)生亞硝胺的前體物質(zhì),亞硝胺在動物試驗中被證實為致癌物。大量攝入亞硝酸鹽可誘導(dǎo)高鐵血紅蛋白血癥,導(dǎo)致組織缺氧[1-2]。新生嬰兒對亞硝酸鹽非常敏感,且乳制品攝入量大。奶牛的養(yǎng)殖環(huán)境、飼養(yǎng)用水及飼料中亞硝酸鹽含量過高,有可能導(dǎo)致牛乳中的亞硝酸鹽含量超標(biāo)[3]。因此對乳品中亞硝酸鹽進(jìn)行安全監(jiān)控十分必要[4]。
鑒于亞硝酸鹽對人體的危害性,各國制定食品中亞硝酸鹽的添加量和殘留量相關(guān)限量。世界衛(wèi)生組織食品添加物聯(lián)合專家委員會規(guī)定:亞硝酸鹽每日攝取安全容許量為0~0.06 mg/kg[5]。GB 2762—2017《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中污染物限量》[6]規(guī)定:乳及乳制品中生乳的亞硝酸鹽(以亞硝酸鈉計)不得大于0.4 mg/kg;乳粉及特殊膳食用食品(嬰幼兒配方食品、嬰幼兒谷類輔助食品、孕婦及乳母營養(yǎng)補(bǔ)充食品等)亞硝酸鹽(以亞硝酸鈉計)不得大于2 mg/kg。
乳制品中亞硝酸鹽的常見檢測方法有分光光度法、液相色譜法、氣相色譜法、流動注射法、離子色譜法和液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[7-10]。這些方法存在各自的優(yōu)缺點,如:分光光度法操作復(fù)雜,引入鎘污染物,易對環(huán)境造成污染;氣相色譜法靈敏度不高,不能滿足乳制品的限量要求;離子色譜法作為無機(jī)陰離子分析技術(shù),具有快速、靈敏、選擇性好等優(yōu)點,但GB 5009.33—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中亞硝酸鹽與硝酸鹽的測定》[11]中離子色譜法前處理過程需要過柱,操作復(fù)雜,成本高。試驗采用離子色譜法測定乳及乳制品中亞硝酸鹽含量,通過優(yōu)化前處理條件和篩選色譜分析參數(shù),旨在建立一種準(zhǔn)確、快速、低成本的檢測方法,為乳及乳制品中亞硝酸鹽的測定研究提供技術(shù)支持。
亞硝酸根標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(1 000 μg/mL,北京北方偉業(yè)計量技術(shù)研究院);乙腈(色譜純,DiKMA)。
883 Basic IC plus離子色譜儀(瑞士萬通);PL2002分析天平(瑞士梅特勒-托利多公司);LYNX4000高速低溫冷凍離心機(jī)(Thermo Scientific);Gd-16高速均質(zhì)機(jī)(新銳科技)。
1.3.1 樣品前處理
1.3.1.1 液態(tài)奶和乳飲料
稱取20 g樣品,精確至0.01 g,至50 mL準(zhǔn)確量值的離心管中,加入乙腈定容至50 mL,充分渦旋振蕩,靜置10 min。樣品按10 000 r/min離心10 min。取液體過0.45 μm水相濾膜后上機(jī)。
1.3.1.2 奶粉
稱取5 g樣品,精確至0.01 g,至50 mL準(zhǔn)確量值的離心管中,用20 mL水復(fù)溶,加入乙腈定容至50 mL,充分渦旋振蕩,靜置10 min。隨后,樣品按10 000 r/min離心10 min。取液體過0.45 μm水相濾膜后上機(jī)。
1.3.1.3 干酪
稱取2.5 g樣品,精確至0.01 g,至50 mL準(zhǔn)確量值的離心管中,加入20 mL水,加入數(shù)粒陶瓷珠,高速勻漿2 min,超聲30 min,取出放置至室溫,加乙腈定容至50 mL,充分渦旋振蕩,靜置10 min。隨后,樣品按10 000 r/min離心10 min。取液體過0.45 μm水相濾膜后上機(jī)。
1.3.2 色譜條件
色譜柱Metrosep A Suup7-250/4.0;柱溫35 ℃;進(jìn)樣量50 μL;淋洗液流速0.7 mL/min;淋洗液3.6 mmol/L Na2CO3。
1.3.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制
1.3.3.1 標(biāo)準(zhǔn)儲備液
精確量取0.1 mL 1 000 μg/mL的亞硝酸鹽標(biāo)準(zhǔn)溶液至10 mL容量瓶中,用水定容至刻度,制備成10 μg/mL標(biāo)準(zhǔn)儲備液。
1.3.3.2 標(biāo)準(zhǔn)中間液
精確量取1.0 mL 10 μg/mL標(biāo)準(zhǔn)儲備液至10 mL容量瓶中,用水定容至刻度,制備成1 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)中間液。
1.3.3.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線
精密吸取0.1,0.2,0.4,0.8,1.0和2.0 mL標(biāo)準(zhǔn)中間液分別至10 mL容量瓶中,用水定容至刻度,制備成0.01,0.02,0.04,0.08,0.10和0.20 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.3.4 基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線
精密吸取0.1,0.2,0.4,0.8,1.0和2.0 mL標(biāo)準(zhǔn)中間液分別至10 mL容量瓶中,用基質(zhì)空白提取液定容至刻度,制備成0.01,0.02,0.04,0.08,0.10和0.20 μg/mL的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.4 計算公式
試樣中亞硝酸鹽(以NO2-計)含量按式(1)計算。
式中:X為試樣中亞硝酸鹽含量,mg/kg;C為試樣中實測亞硝酸鹽質(zhì)量濃度,mg/L;V為試樣溶液體積,mL;f為稀釋倍數(shù);m為試驗質(zhì)量,g。
2.1.1 樣品沉淀劑的選擇
乳及乳制品中測定亞硝酸鹽去除蛋白和脂肪的沉淀劑種類較多,如乙酸鋅+亞鐵氰化鉀、鎢酸鈉+硫酸、冰乙酸、冰乙酸+乙腈、三氯乙酸+乙腈、乙醇等。乙酸鋅+亞鐵氰化鉀對于乳制品有很好的蛋白沉淀效果,是液相色譜法和分光光度法常用的沉淀劑,但在離子色譜中這些沉淀試劑會引入大量金屬離子,污染色譜柱,降低離子色譜柱效[12-13]。乙酸沉淀法基線相對較平直,同時亞硝酸根不受乙酸根的影響,但在低體積分?jǐn)?shù)時,亞硝酸鹽可能受pH影響加速轉(zhuǎn)化,使回收率偏低。
乙醇、乙腈是較為理想的蛋白沉淀劑,試驗發(fā)現(xiàn)乙醇的沉淀效果比乙腈的沉淀效果差,選擇乙腈作為蛋白沉淀劑。有機(jī)相與水相的比例會影響蛋白沉淀效果和回收率,比較乙腈與水相的體積比分別為7∶3,6∶4,5∶5,4∶6和3∶7時的沉淀效果和對亞硝酸根回收率的影響,結(jié)果見表1。在20 g液態(tài)奶或乳制品制備成20 mL液態(tài)試樣時,加入約30 mL乙腈(V乙腈∶V水=6∶4),蛋白沉淀效果最理想,未出現(xiàn)分層現(xiàn)象,回收率高,確定為蛋白沉淀的最佳條件。試驗以乙腈為沉淀劑,沉淀效果與回收率(回收率98.4%)均優(yōu)于顏琪等[14]以1∶1的乙腈-3%乙酸為蛋白沉淀劑(回收率97.3%)。
表1 蛋白沉淀劑的選擇
干酪試樣在水中的溶解度低,樣品經(jīng)高速均質(zhì)后超聲提取,亞硝酸鹽回收率優(yōu)于試樣加入水后直接超聲提取。對超聲提取時間進(jìn)行優(yōu)化,亞硝酸鹽回收率隨著超聲時間的延長而提高,到30 min后,回收率趨于穩(wěn)定,因此確定超聲時間為30 min。
2.1.2 分離參數(shù)的優(yōu)化
試樣經(jīng)蛋白沉淀后,離心進(jìn)行分離,以亞硝酸鹽的回收率為評價指標(biāo),篩選出離心轉(zhuǎn)速與時間,設(shè)計因素與水平見表2,所得結(jié)果見表3。隨著離心轉(zhuǎn)速的提高和時間的延長,蛋白分離效果變好,亞硝酸鹽的回收率提高后趨于平穩(wěn)。結(jié)合操作時間綜合考慮,選擇10 000 r/min、離心時間10 min作為分離參數(shù)。
表2 離心轉(zhuǎn)速和時間對亞硝酸鹽回收率的影響試驗設(shè)計
表3 離心轉(zhuǎn)速和時間對亞硝酸鹽回收率的影響試驗結(jié)果
2.1.3 凈化參數(shù)優(yōu)化
由于乳制品中的氯離子含量較高,奶粉中氯離子含量一般在800~1 000 mg/L[15]。按照GB 5009.33—2016,氯離子濃度大于100 mg/L時,待測液需要依次通過針頭濾器、C18柱、Ag柱和Na柱,去除或降低待測液中氯離子濃度,以降低對亞硝酸鹽的影響,但試驗結(jié)果顯示,亞硝酸根離子的回收率并未受到氯離子的影響,所得結(jié)果與馮偉科等[16]研究結(jié)果一致。試驗方法在離心去除蛋白后,上清液直接過濾膜上機(jī),不再用Ag柱、Na柱處理,大幅降低檢測成本。
試驗考察Metrosep A Suup4-250/4.0和Metrosep A Suup7-250/4.0色譜柱對亞硝酸鹽的分離效果。Suup4色譜柱采用的淋洗液為1.8 mmol/L Na2CO3和1.7 mmol/L NaHCO3,流速1.0 mL/min,亞硝酸根的出峰時間為5.20 min,但奶的基質(zhì)有干擾峰,通過調(diào)節(jié)淋洗液和流速并未有所改善。Suup7色譜柱采用3.6 mmol/L Na2CO3為淋洗液,流速0.7 mL/min,亞硝酸根與雜質(zhì)峰能得到很好分離,出峰時間14.4 min。提高淋洗液的離子濃度或流速,離子的保留時間會縮短,但不利于干擾離子與亞硝酸根的分離,流速的增加也顯著增大系統(tǒng)的壓力。綜合考慮,確定采用Metrosep A Suup7-250/4.0色譜柱,3.6 mmol/L Na2CO3為淋洗液,流速0.7 mL/min,作為試驗的色譜條件。標(biāo)準(zhǔn)溶液色譜圖和奶粉基質(zhì)色譜圖見圖1。
圖1 標(biāo)準(zhǔn)溶液(A)和奶粉基(B)質(zhì)色譜圖
基質(zhì)效應(yīng)(Matrix effects,ME)是指樣品中除分析物以外的組分,在分析過程中對目標(biāo)物有顯著干擾?;|(zhì)效應(yīng)影響大時會降低方法的靈敏度,影響方法的準(zhǔn)確性,給測定帶來誤差[17],因此,方法開發(fā)和確證過程中需要對基質(zhì)效應(yīng)做出評價。按照樣品的前處理方法分別制備液態(tài)奶、奶粉、干酪的基質(zhì)空白提取液。分別用基質(zhì)空白提取液和水配制系列濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照試驗方法進(jìn)行測定。一般認(rèn)為,基質(zhì)匹配校正曲線斜率與標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率的比值在0.85~1.15之間不存在基質(zhì)效應(yīng)[18-19]。試驗液態(tài)奶、奶粉、干酪的基質(zhì)效應(yīng)分別為0.95,0.74和0.68,結(jié)果表明液態(tài)奶的基質(zhì)效應(yīng)較弱,而奶粉和干酪具有較強(qiáng)的抑制作用。分析原因是奶粉和干酪中除了蛋白質(zhì)、脂肪和碳水化合物外,有多種不同種類的物質(zhì),如維生素類、無機(jī)鹽類、植物油類、添加劑等。因此,液態(tài)奶檢測采用標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行校正,奶粉和干酪采用基質(zhì)匹配的標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行校正。
2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線、檢出限和定量限
選擇0.01,0.02,0.04,0.08,0.10和0.20 μg/mL標(biāo)準(zhǔn)工作液,按1.3.2的儀器條件進(jìn)行測定。以峰面積Y(μs·min)為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度X(μg/mL)為橫坐標(biāo),做標(biāo)準(zhǔn)曲線,以3倍信噪比確定檢出限,以10倍信噪比為定量限。所得線性方程、線性相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限見表4。
表4 標(biāo)準(zhǔn)曲線線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限
2.4.2 方法的回收率與精密度
為驗證方法的可靠性,采用基質(zhì)加標(biāo)法對回收率和精密度進(jìn)行考察,在液態(tài)奶、奶粉和干酪中添加標(biāo)準(zhǔn)溶液,制備成0.5,1.0和2.0 mg/kg這3個質(zhì)量分?jǐn)?shù)水平,每個添加水平6個平行。在低、中、高3個濃度條件下,回收率在85.4%~101.3%之間,精密度為1.5%~7.1%。試驗方法具有良好的回收率和精密度,能夠滿足檢測需求,結(jié)果見表5。
表5 方法的加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)
試驗方法適用于液態(tài)乳、乳粉及干酪乳制品中亞硝酸含量的測定。通過對前處理方法優(yōu)化、流動相的選擇、色譜柱的比較、結(jié)果穩(wěn)定等方面的討論,確定乳及乳制品中亞硝酸鹽分離提取及色譜分析的最佳參數(shù):蛋白沉淀劑采用乙腈,與試樣的體積比6∶4,按離心轉(zhuǎn)速10 000 r/min、離心時間10 min分離蛋白,上清液經(jīng)0.45 μm濾膜過濾,以3.6 mmol/L Na2CO3為淋洗液,流速為0.7 mL/min,進(jìn)行色譜分析。方法的回收率為85.4%~101.3%,精密度為1.5%~7.1%,滿足檢測需求。奶粉和干酪樣品以基質(zhì)匹配的標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行校正,降低基質(zhì)效應(yīng)對檢測結(jié)果的影響。該方法前處理方法簡單、成本低、檢出限低,優(yōu)于國標(biāo)方法,能夠滿足乳及乳制品中亞硝酸鹽的檢測要求,可為食品安全監(jiān)督提供有效的技術(shù)支撐。