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        D-β-羥基丁酸通過激活Notch1/Hes1通路和抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激改善大鼠急性心肌梗死

        2023-01-15 00:47:10劉婷婷董紅艷馬艷蘭王婷婷王學(xué)武
        西部醫(yī)學(xué) 2022年12期
        關(guān)鍵詞:內(nèi)質(zhì)網(wǎng)心梗心肌細(xì)胞

        劉婷婷 董紅艷 馬艷蘭 王婷婷 王學(xué)武

        (1.新疆維吾爾自治區(qū)人民醫(yī)院干部保健科,新疆 烏魯木齊 830000;2.新疆昌吉州中醫(yī)醫(yī)院針灸科,新疆 昌吉 831100;3.新疆伊犁州婦幼保健院兒童康復(fù)科,新疆 伊寧 835000;4.新疆維吾爾自治區(qū)人民醫(yī)院藥學(xué)部,新疆 烏魯木齊 830000;5.新疆維吾爾自治區(qū)人民醫(yī)院中醫(yī)科,新疆 烏魯木齊 830000)

        缺血性心臟病已成為世界范圍內(nèi)發(fā)病率和死亡率的主要原因,給社會(huì)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)。急性心肌梗死(Acute myocardial infarction,AMI)是缺血性心臟病最嚴(yán)重的亞型,常導(dǎo)致猝死[1]。據(jù)統(tǒng)計(jì),美國(guó)每年有150萬人被診斷患有AMI。全世界每年約有2000萬人死于AMI[2]。因此,開發(fā)新的AMI治療藥物對(duì)于改善AMI疾病現(xiàn)狀具有重要意義。AMI的發(fā)病機(jī)制十分復(fù)雜,已有研究表明,Notch1信號(hào)通路調(diào)節(jié)多種細(xì)胞過程,如發(fā)育、增殖、分化、凋亡和再生[3]。Hes1是Notch1信號(hào)通路的下游靶基因,Hes1通過調(diào)節(jié)Notch1/Hes1磷酸酶及下游信號(hào)通路來保護(hù)心肌細(xì)胞[4]。此外,已有證據(jù)顯示,急性心肌缺血性損傷后,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激水平升高,導(dǎo)致線粒體損傷和細(xì)胞凋亡[5]。D-β-羥基丁酸(D-β-hydroxybutyrate,DβHB)是酮體家族成員之一,是由肝臟中脂肪酸降解產(chǎn)生,隨后轉(zhuǎn)移到肝外組織(包括大腦,心臟和骨骼肌)的重要代謝基質(zhì)之一[6]。有研究表明,DβHB在糖尿病、神經(jīng)退行性疾病、心力衰竭、敗血癥相關(guān)的肌肉萎縮、偏頭痛和癲癇等疾病中均有潛在的治療作用[7]。目前,關(guān)于DβHB在AMI中的作用及其可能的機(jī)制尚不明確。因此,本研究旨在探究DβHB是否通過調(diào)節(jié)Notch1/Hes1通路和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激水平發(fā)揮對(duì)AMI的保護(hù)作用,以期為開發(fā)新的AMI治療藥物提供新的科學(xué)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 40只SPF級(jí)雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,體質(zhì)量(210±10)g,6~7周齡,購(gòu)自新疆醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。所有大鼠飼養(yǎng)于標(biāo)準(zhǔn)動(dòng)物房,環(huán)境溫度(20±2)℃,濕度45%~55%,提供充足飲水及飼料。待大鼠適應(yīng)環(huán)境一周后,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。本研究經(jīng)醫(yī)院動(dòng)物倫理委員會(huì)審批通過。

        1.2 實(shí)驗(yàn)材料 D-β-羥基丁酸(D-β-hydroxybutyrate,DβHB)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司,倍他樂克購(gòu)自阿斯利康制藥有限公司,乳酸脫氫酶(LDH)檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海通善生物科技有限公司,肌酸激酶同工酶(CK-MB)測(cè)定試劑盒購(gòu)自北京九強(qiáng)生物技術(shù)股份有限公司,TUNEL試劑盒購(gòu)自瑞士Roche公司,Bax、Bcl-2和GAPDH抗體購(gòu)自北京義翹神州,Notch1、NICD、Hes1、ATF4和CHOP抗體購(gòu)自英國(guó)Abcam,p-PERK、PERK、p-eIF2α和eIF2α抗體購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz Biotechnology公司,ECL發(fā)光液購(gòu)自北京普利萊基因技術(shù)有限公司。

        1.3 AMI模型的建立[8]及給藥處理 將40只SD大鼠隨機(jī)分為對(duì)照組、心梗組、DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組,每組10只。戊巴比妥鈉腹腔麻醉大鼠(35 mg/kg),仰臥位固定,氣管插管,連接呼吸機(jī)及心電監(jiān)護(hù)儀。心梗組、DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠無創(chuàng)絲線結(jié)扎冠狀動(dòng)脈左前降支近端,隨后前降支供血區(qū)域心肌顏色發(fā)白,心電圖導(dǎo)聯(lián)ST段弓背抬高,此時(shí)AMI大鼠模型成功建立。對(duì)照組大鼠進(jìn)行穿線,但不結(jié)扎。DβHB組大鼠腹腔注射DβHB 100 mg·kg-1·d-1[9],陽(yáng)性對(duì)照組大鼠腹腔注射倍他樂克12 mg·kg-1·d-1[10],對(duì)照組和心梗組大鼠注射等量生理鹽水,持續(xù)給藥3周。造模過程中,心梗組大鼠死亡1只,陽(yáng)性對(duì)照組大鼠死亡1只。給藥期間,心梗組大鼠死亡1只,DβHB組大鼠死亡1只。最后,每組大鼠各取8只進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        1.4 超聲心動(dòng)圖檢測(cè)大鼠心功能 最后一次給藥24 h后,麻醉大鼠,通過二維M型和B型超聲心動(dòng)圖評(píng)估左心室功能。檢測(cè)指標(biāo)包括左室射血分?jǐn)?shù)(Left ventricular ejection fraction,LVEF)、左室短軸縮短率(Left ventricular fractional shortening,LVFS)、左室收縮末內(nèi)徑(Left ventricular end systolic diameter,LVSD)、左心室收縮末期容積(Left ventricular end systolic volume,LVESV)。

        1.5 HE染色檢測(cè)大鼠心臟病理學(xué)變化 最后一次給藥24 h后,麻醉大鼠,腹主動(dòng)脈取血,4℃,2500 rpm離心15 min,取上清液,-80℃條件下保存。隨后取心臟,4%多聚甲醛固定左心室組織72 h,梯度酒精脫水,二甲苯透明。石蠟包埋、切片。石蠟切片常規(guī)二甲苯、乙醇脫蠟至水,蘇木素染色10 min,0.7%鹽酸乙醇分化5 s,流水洗滌后,伊紅液浸染3 min。梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片。切片于光學(xué)顯微鏡下觀察分析。

        1.6 TTC染色檢測(cè)大鼠心肌梗死面積 取各組大鼠心臟組織,于-20℃條件下冷凍30 min后切片。2%TTC溶液37℃避光孵育30 min,PBS洗滌心臟,4%多聚甲醛固定心臟24 h。Image J軟件分析梗塞面積。

        1.7 ELISA試劑盒檢測(cè)LDH和CK-MB的水平 取-80℃保存的血清,解凍。按照ELISA試劑盒說明書步驟所示,檢測(cè)血清中LDH和CK-MB的水平。

        1.8 TUNEL染色檢測(cè)心肌細(xì)胞凋亡 按照1.5所示,制備心臟組織石蠟切片。切片常規(guī)脫蠟至水,PBS漂洗后,加入蛋白酶K工作液,37℃反應(yīng)30 min,PBS漂洗3次,3%H2O2封閉10 min。滴加TUNEL反應(yīng)混合液,濕盒中37℃孵育1 h。PBS漂洗,加入轉(zhuǎn)化劑,濕盒中37℃孵育20 min。PBS漂洗,加入IDAB底物,反應(yīng)10 min。PBS漂洗后,蘇木素復(fù)染,梯度酒精脫水、二甲苯透明,中性樹膠封片。切片于光學(xué)顯微鏡下進(jìn)行觀察分析。

        1.9 Western blot檢測(cè)凋亡、Notch1/Hes1通路和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)蛋白水平 將各組大鼠心臟組織剪碎,RIPA裂解液裂解組織,離心取上清,BCA法測(cè)定蛋白濃度。取30 μg蛋白進(jìn)行SDS-PAGE分離并轉(zhuǎn)至PVDF膜上。10%脫脂奶粉封閉,隨后加入Bax(1∶2000)、Bcl-2(1∶1000)、Notch1(1∶1500)、NICD(1∶2000)、Hes1(1∶2000)、p-PERK(1∶2000)、PERK(1∶2000)、p-eIF2α(1∶2000)、eIF2α(1∶2000)、ATF4(1∶2000)、CHOP(1∶2000)和GAPDH(1∶1500)抗體,4℃條件下孵育過夜。加入二抗(1∶5000)室溫孵育1 h后,滴加ECL發(fā)光液到膜上,化學(xué)發(fā)光成像儀檢測(cè)。

        2 結(jié)果

        2.1 各組大鼠心功能及病理學(xué)變化的比較 與對(duì)照組相比,心梗組大鼠LVEF和LVFS明顯降低,LVSD和LVESV明顯升高(P<0.05),肌原纖維排列紊亂,存在明顯炎性細(xì)胞浸潤(rùn)和間質(zhì)水腫;與心梗組相比,DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠LVEF和LVFS明顯升高,LVSD和LVESV明顯降低(P<0.05),心肌病理學(xué)變化有明顯改善,見圖1、2和表1。

        表1 各組大鼠心功能指標(biāo)的比較Table 1 Comparison of cardiac function indexes of rats in each group

        圖1 超聲心動(dòng)圖檢測(cè)各組大鼠心功能Figure 1 Echocardiogram was used to detect the heart function of rats in each group

        圖2 HE染色檢測(cè)各組大鼠心肌病理學(xué)變化(400×)Figure 2 HE staining was used to detect myocardial pathological changes of rats in each group

        2.2 各組大鼠梗死面積的比較 與對(duì)照組相比,心梗組大鼠心肌梗死面積明顯升高(P<0.05);與心梗組相比,DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠心肌梗死面積明顯降低(P<0.05),見圖3、表2。

        圖3 TTC染色檢測(cè)各組大鼠心肌梗死面積Figure 3 TTC staining was used to detect the area of myocardial infarction in each group of rats

        表2 各組大鼠梗死面積的比較Table 2 Comparison of infarct area of rats in each group

        2.3 各組大鼠血清LDH和CK-MB活性的比較 與對(duì)照組相比,心梗組大鼠血清LDH和CK-MB活性明顯升高(P<0.05);與心梗組相比,DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠血清LDH和CK-MB活性明顯降低(P<0.05),見表3。

        表3 各組大鼠血清LDH和CK-MB活性的比較Table 3 Comparison of serum LDH and CK-MB activities of rats in each group

        2.4 各組大鼠心肌細(xì)胞凋亡率及凋亡相關(guān)蛋白水平比較 與對(duì)照組相比,心梗組大鼠心肌細(xì)胞凋亡率和Bax蛋白水平明顯升高(P<0.05),Bcl-2蛋白水平明顯降低(P<0.05);與心梗組相比,DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠心肌細(xì)胞凋亡率和Bax蛋白水平明顯降低(P<0.05),Bcl-2蛋白水平明顯升高(P<0.05),見圖4、5和表4。

        表4 各組大鼠心肌細(xì)胞凋亡率、Bax和Bcl-2蛋白水平比較Table 4 Comparison of rat cardiomyocyte apoptosis rate, Bax and Bcl-2 protein expression in each group

        圖4 TUNEL染色檢測(cè)各組大鼠心肌細(xì)胞凋亡(400×)Figure 4 TUNEL staining was used to detect the apoptosis of rat cardiomyocytes in each group

        圖5 Western blot檢測(cè)各組大鼠Bax和Bcl-2蛋白的表達(dá)Figure 5 Western blot was used to detect the expression of Bax and Bcl-2 protein in each group of rats

        2.5 各組大鼠Notch1/Hes1通路相關(guān)蛋白表達(dá)水平的比較 與對(duì)照組相比,心梗組大鼠Notch1、NICD和Hes1蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);與心梗組相比,DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠Notch1、NICD和Hes1表達(dá)明顯升高(P<0.05),見圖6、表5。

        圖6 Western blot檢測(cè)各組大鼠Notch1/Hes1通路相關(guān)蛋白的表達(dá)Figure 6 Western blot was used to detect the expression of Notch1/Hes1 pathway related proteins in each group of rats

        表5 各組大鼠Notch1、NICD和Hes1蛋白表達(dá)的比較Table 5 Comparison of protein expression of Notch1, NICD and Hes1 in each group of rats

        2.6 各組大鼠內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)蛋白表達(dá)水平的比較 與對(duì)照組相比,心梗組大鼠p-PERK/PERK、p-eIF2α/eIF2α、ATF4和CHOP蛋白水平明顯升高(P<0.05);與心梗組相比,DβHB組和陽(yáng)性對(duì)照組大鼠p-PERK/PERK、p-eIF2α/eIF2α、ATF4和CHOP蛋白水平明顯降低(P<0.05),見圖7、表6。

        圖7 Western blot檢測(cè)各組大鼠內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)蛋白的表達(dá)Figure 7 Western blot was used to detect the expression of endoplasmic reticulum stress-related proteins in each group of rats

        表6 各組大鼠內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)蛋白表達(dá)的比較Table 6 Comparison of the expression of endoplasmic reticulum stress-related proteins in each group of rats

        3 討論

        AMI已成為全球發(fā)病率和死亡率的主要原因之一,盡管藥物和導(dǎo)管再灌注(如纖溶和經(jīng)皮冠狀動(dòng)脈介入治療)是目前AMI的主要治療策略,但其會(huì)導(dǎo)致系統(tǒng)性出血和微血管血流再灌注失敗等不良結(jié)果[11]。因此,開發(fā)新的治療策略刻不容緩。本研究旨在探究DβHB對(duì)AMI的作用及其可能的作用機(jī)制,以期為開展新的治療策略提供新的科學(xué)依據(jù)。

        酮氧化可提高心臟ATP的產(chǎn)生,心衰時(shí)酮體氧化增加。然而,心力衰竭患者很少有足夠高的DβHB血濃度來滿足心臟需求[12]。最近一項(xiàng)針對(duì)心力衰竭患者的研究報(bào)告表明,輸注DβHB后,心輸出量改善40%,LVEF提高8%[13]。另有研究表明,DβHB治療可減少梗死面積,降低血清中心肌肌鈣蛋白Ⅰ、LDH和CK-MB水平,減少心肌細(xì)胞凋亡,在心肌缺血再灌注小鼠中發(fā)揮保護(hù)作用[14]。本研究結(jié)果表明,DβHB治療可改善AMI大鼠心功能及心肌病理學(xué)變化,降低大鼠心肌梗死面積、LDH和CK-MB活性,抑制心肌細(xì)胞凋亡,提示DβHB在AMI中發(fā)揮保護(hù)作用。

        Notch1/Hes1通路在心臟發(fā)生過程中發(fā)揮著控制組織形成的不可或缺的功能,激活Notch1/Hes1通路可能在預(yù)防心肌缺血再灌注損傷中發(fā)揮重要作用[15]。越來越多的證據(jù)表明,Notch通路的重新激活可能是對(duì)病理應(yīng)激后提高生存率或刺激組織再生的適應(yīng)性反應(yīng)。心肌梗死后內(nèi)源性Notch激活可促進(jìn)抗凋亡,提高存活率,改善心臟功能[16]。此外,已有研究證明,褪黑素通過激活Notch1/Hes1通路改善大鼠心肌缺血再灌注(Myocardial ischemia/reperfusion,MI/R)損傷,減少心肌細(xì)胞凋亡和氧化損傷[17]。此外,激活Notch1/Hes1通路可通過抑制高糖誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激損傷,改善心肌細(xì)胞肥大[18]。這些研究表明Notch1/Hes1通路在維持心臟功能內(nèi)穩(wěn)態(tài)中的關(guān)鍵作用。本研究結(jié)果顯示,AMI后Notch1/Hes1通路無明顯變化,而DβHB治療可激活Notch1/Hes1通路,在AMI中發(fā)揮保護(hù)作用,抑制心肌細(xì)胞凋亡。

        近年來,越來越多的研究關(guān)注內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激在急性心肌梗死中的作用。有證據(jù)顯示,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)信號(hào)通路與缺血性心臟病、原發(fā)性心肌病、心肌肥大和心力衰竭的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[19]。已有研究表明,抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激可對(duì)AMI后心臟產(chǎn)生保護(hù)作用[20]。葛紅吉等[21]的體外實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明,抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激可抑制缺氧/復(fù)氧誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡,緩解細(xì)胞損傷。哺乳動(dòng)物中未折疊蛋白反應(yīng)的激活是由三種不同的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激傳感器介導(dǎo)的,即蛋白激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(Protein kinase R-like ER kinase,PERK)、轉(zhuǎn)錄因子ATF6和內(nèi)核糖核酸酶IRE-1[22]。MI/R損傷激活內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,促進(jìn)PERK及其靶蛋白真核起始因子2α(Eukaryotic initiation factor 2α,eIF2α)磷酸化,廣泛抑制細(xì)胞內(nèi)功能蛋白的合成,進(jìn)而增強(qiáng)ATF4的翻譯,誘導(dǎo)CHOP的表達(dá),并促進(jìn)細(xì)胞凋亡[23]。有研究表明,抑制PERK/eIF2α介導(dǎo)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激可以減輕大鼠心臟的MI/R損傷[24]。本研究結(jié)果顯示,AMI可激活PERK/eIF2α通路,升高ATF4和CHOP表達(dá),而DβHB治療可抑制PERK/eIF2α通路活化,抑制ATF4和CHOP表達(dá),抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,在AMI中發(fā)揮保護(hù)作用,抑制心肌細(xì)胞凋亡。

        4 結(jié)論

        DβHB可能通過激活Notch1/Hes1通路和抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激改善大鼠AMI,抑制心肌細(xì)胞凋亡,為明確DβHB對(duì)AMI的作用及作用機(jī)制提供了新的科學(xué)依據(jù)。

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