景聯(lián)鵬,顧麗莉,師君麗,李增良,楊發(fā)容,李國棟
(1 昆明理工大學(xué)化學(xué)工程學(xué)院,云南 昆明 650500;2 云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,云南 玉溪 653100)
戊唑醇和三唑酮屬于三唑類殺菌劑,因其低毒、殺菌廣譜和活性高等特點(diǎn)被廣泛應(yīng)用于小麥、蔬菜和煙草等農(nóng)作物的病蟲防治[1]。由于戊唑醇和三唑酮用量大,化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,不易降解,半衰期長,因此在使用過程中可能對動植物及環(huán)境造成危害,從而嚴(yán)重威脅人類健康和生態(tài)安全[2-3],故而對農(nóng)產(chǎn)品和環(huán)境中戊唑醇和三唑酮的殘留分析具有十分重要的意義。
目前,檢測三唑類殺菌劑的方法主要包括液相色譜法(LC)[4]、氣相色譜法(GC)[5]、高效液相色譜法(HPLC)[6]、氣質(zhì)聯(lián)用法(GC-MS)[7]、分光光度法[8]、液質(zhì)聯(lián)用法(LC-MS)[9]、超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(UHPLC-MS/MS)[10]等。農(nóng)產(chǎn)品成分越復(fù)雜,對低含量三唑類殺菌劑的檢測要求越高,故需探索出一種干擾小、富集能力強(qiáng)的前處理技術(shù),以排除樣品中基質(zhì)的影響,確保檢測的準(zhǔn)確性。
分子印跡聚合物(molecularly imprinted polymer,MIPs)是一種具有與目標(biāo)分子完全匹配印跡空腔的功能材料[11]。因MIPs 對模板分子具有“記憶”功能,能對其進(jìn)行特異性識別,并且制備簡單,物理化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,目前已被廣泛應(yīng)用于固相萃取[12-14]、色譜固定相[15]、藥物釋放[16]、傳感器[17-18]和催化劑[19]等領(lǐng)域。
分子印跡固相萃?。╩olecularly imprinted solid phase extraction,MISPE)作為一種高選擇性前處理技術(shù),在針對其研究與應(yīng)用上,當(dāng)前大多局限于單模板印跡體系的研究,不能實(shí)現(xiàn)多種物質(zhì)的同時高效分離與富集。趙春娟等[20]將以三唑醇、烯唑醇和腈菌唑?yàn)槟0逯苽涞腗IPs 按質(zhì)量比為1∶1∶1混合作為固相萃取柱的填充物用于樣品的前處理,雖取得了較好的效果,但該方式也僅僅是物理復(fù)合,并未實(shí)現(xiàn)真正的化學(xué)復(fù)合,而且聚合物顆粒不均勻也會導(dǎo)致吸附不均勻。
本文在本文作者課題組前期研究工作的基礎(chǔ)上,以戊唑醇和三唑酮為雙模板分子,MAA 為功能單體,通過沉淀聚合法制備雙模板分子印跡聚合物,并將其應(yīng)用于煙葉中三唑類農(nóng)藥的殘留分析,建立煙葉中戊唑醇、三唑酮及其結(jié)構(gòu)類似物農(nóng)藥殘留的MISPE-UHPLC-MS/MS檢測方法。
戊唑醇(tebuconazole, TBZ, 98%)、三唑酮(triadimefon,TDF,98%)、三唑醇(triadimenol,TDM,98%)、莠去津(atrazine, ARZ, 98%) 和西草凈(simetryn, SMT, 98%),德國Dr.Ehrenstorfer 公司;腈菌唑(myclobutanol, MYC, 98.5%),上海阿拉丁公司;乙二醇二甲基丙烯酸酯(ethylene glycol dimethacrylate,EGDMA,分析純),北京百靈威科技有限公司;偶氮二異丁腈[2,2'-azobis(2-methylpropionitrile),AIBN,分析純],天津光復(fù)精細(xì)化工研究所;其他試劑如甲基丙烯酸(methacrylic acid,MAA)、乙腈和冰乙酸等皆為分析純,天津致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司。
場發(fā)射掃描電子顯微鏡(SEM),Tecnai G2 TF30 STwin 型,荷蘭FEI 公司;傅里葉紅外光譜儀(FTIR),Equinox55 型,德國BRUKER公司;臺式高速離心機(jī),TG16-WS 型,湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,RE-2000A型,上海亞榮生化儀器廠;氣浴恒溫振蕩器,ZD-85型,金壇市城東新瑞儀器廠;超高效液相色譜儀,Agilent 1290 InfinityUHPLC 型,美國Agilent Technologies;質(zhì)譜儀,AB Sciex Qtrap(TM)3200 MS/MS 型,美國ABSciex,CA。
1.3.1 功能單體的篩選
篩選步驟:①采用Gaussian view 5.0分別構(gòu)建了模板分子和4種功能單體(AA、AM、MAA、TFMAA)的分子模型,運(yùn)用Gaussian 09 軟件中B3LYP 基組的6-31G+(d,p)水平對模板分子和4 種功能單體的結(jié)構(gòu)進(jìn)行優(yōu)化與計(jì)算,得出各分子優(yōu)化構(gòu)象;②研究模板分子與各功能單體可能形成的復(fù)合物情況,并從氫鍵鍵長、氫鍵數(shù)目及氫鍵作用的活性位點(diǎn)分析比較模板分子與各功能單體的作用原理及作用力;③按式(1)計(jì)算模板-單體復(fù)合物的結(jié)合能。
式中,ΔEinteraction為模板分子與功能單體的結(jié)合能,kJ/mol;Ecorrected為消除了因單體基組重疊造成的能量降低后的A-B 復(fù)合物能量,kJ/mol;EBSSE為矯正能,kJ/mol;EA,bAB為A、B基組下A的能量,kJ/mol;EB,bAB為A、B基組下B的能量,kJ/mol。
1.3.2 沉淀聚合法制備雙模板MIPs
于100mL 玻璃瓶中依次加入0.1mmol TBZ、0.1mmol TDF、0.8mmol MAA和50mL乙腈,超聲溶解后通N2除氧,隨后置于氣浴恒溫振蕩器中預(yù)聚合12h;在預(yù)聚合結(jié)束后的溶液中依次加入4mmol EGDMA 和30mg AIBN,混合均勻后通N2除氧15min,然后置于60℃的氣浴恒溫振蕩器中熱聚合24h;熱聚合結(jié)束后,將樣品冷卻至室溫,再以10000r/min分離聚合物,倒掉上清液,將所得聚合物干燥至恒重后放入索氏提取器中,用甲醇-乙酸(體積比9∶1)循環(huán)洗脫聚合物,直至洗脫液中無TBZ 和TDF 為止,再用甲醇將聚合物洗滌至中性;最后將聚合物干燥至恒重,即得到TBZ-TDFMIPs。作為對照,非分子印跡聚合物(NIPs)的制備除了不加TBZ 和TDF 以外,其他步驟均與TBZTDF-MIPs的制備一致[21-22]。
1.4.1 動態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)
稱取若干份MIPs 和NIPs 各10mg 于10mL 離心管中,分別加入20mg/L的TBZ或TDF乙腈標(biāo)準(zhǔn)溶液5mL,混勻后置于室溫下分別吸附10min、30min、50min、70min、90min、110min、130min、150min和170min后過濾膜,收集濾液并用UHPLC-MS/MS檢測濾液中TBZ 或TDF 的濃度,按式(2)計(jì)算不同時間下聚合物對TBZ或TDF的吸附量(Q)。
式中,Q為MIPs 或NIPs 對TBZ 或TDF 分子的吸附容量,mg/g;C0和C分別為TBZ 或TDF-乙腈溶液的初始濃度和吸附結(jié)束后的濃度,mg/L;V為溶液的體積,L;M為MIPs或NIPs的質(zhì)量,mg。
1.4.2 靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)
稱取若干份MIPs 和NIPs 各10mg 于10mL 離心管中,分別加入5mL 不同濃度的TBZ 或TDF 乙腈標(biāo)準(zhǔn)溶液(1~80mg/L),室溫下吸附24h后過濾膜,收集濾液并用UHPLC-MS/MS 檢測濾液中TBZ 或TDF的濃度,通過式(2)計(jì)算聚合物對TBZ或TDF的吸附容量。
1.4.3 選擇性吸附實(shí)驗(yàn)
稱取若干份MIPs 和NIPs 各10mg 于10mL 離心管中,分別加入20mg/L 的不同農(nóng)藥(TBZ、MYC、TDM、TDF、SMT 和ARZ)的乙腈標(biāo)準(zhǔn)溶液5mL,混勻后置于室溫下吸附24h后過濾膜,收集濾液并用UHPLC-MS/MS 檢測濾液中TBZ、MYC、TDM、TDF、SMT和ARZ的濃度,通過式(2)計(jì)算聚合物對上述6種農(nóng)藥的吸附容量,探究聚合物的選擇性吸附性能。
1.5.1 加標(biāo)煙葉樣品的制備
準(zhǔn)確稱取3g 干燥后的煙葉樣品分別置于20mL離心管中,添加3mL 3種濃度(0.2mg/L、0.5mg/L、1mg/L)的農(nóng)殘混標(biāo)溶液,再加入10mL 乙腈溶液,振蕩混勻后超聲提取1h,經(jīng)離心、過濾和旋蒸后用3mL乙腈復(fù)溶,即得加標(biāo)煙葉提取液。
1.5.2 分子印跡固相萃取吸附實(shí)驗(yàn)
分別取100mg TBZ-MIPs 和TBZ-TDF-MIPs 制備分子印跡固相萃?。∕ISPE)小柱,依次加入5mL水和5mL甲醇對萃取柱進(jìn)行活化后,取2mL的加標(biāo)煙葉提取液進(jìn)行上樣,待小柱充分吸附農(nóng)藥后用5mL 水對萃取柱進(jìn)行淋洗,再用10mL 甲醇-乙酸溶液(體積比9∶1)對農(nóng)殘進(jìn)行洗脫,收集洗脫液并旋蒸除去洗脫劑,再用1mL 乙腈復(fù)溶后過濾膜,供UHPLC-MS/MS分析。
色譜條件:ACQUITY UHPLC BEH-C18色譜柱(10㎝×2.1mm,1.8μm),流速0.4mL/min,檢測波長228nm,流動相A(0.1%甲酸-水溶液),流動相B(0.1%甲酸-乙腈溶液)。
質(zhì)譜條件:離子噴射電壓5500V,霧化溫度550℃,掃描方式為正離子掃描,檢測方法為多反應(yīng)檢測模式。
2.1.1 模板分子與功能單體結(jié)合位點(diǎn)分析
優(yōu)化后的模板分子與功能單體的幾何構(gòu)型及其靜電勢分布如圖1所示,根據(jù)顏色標(biāo)尺可知,顏色越藍(lán)的部位表示該位點(diǎn)電正性越強(qiáng),易失去電子;顏色越紅的部位表示該位點(diǎn)電負(fù)性越強(qiáng),易得到電子。理論上電正和電負(fù)性越強(qiáng)的位點(diǎn)即為形成氫鍵的潛在位點(diǎn)[23],模板與單體的潛在位點(diǎn)情況如表1所示。
表1 TBZ與4種功能單體的潛在結(jié)合位點(diǎn)與可能結(jié)合氫鍵數(shù)
圖1 模板TBZ與單體AA、AM、MAA和TFMAA的靜電勢分布
2.1.2 模板-單體復(fù)合物構(gòu)型及其配比優(yōu)化
根據(jù)靜電勢分布圖將TBZ與各功能單體之間以氫鍵形式相連,并在B3LYP 基組的6-31G+(d,p)下對模板-單體復(fù)合物的空間構(gòu)型進(jìn)行優(yōu)化,篩除不符合條件的連接方式并再次優(yōu)化,最終復(fù)合物構(gòu)型及氫鍵鍵長如圖2所示。
圖2 TBZ與4種功能單體形成復(fù)合物的幾何結(jié)構(gòu)
基于上述復(fù)合物構(gòu)型及模板-單體配比優(yōu)化,對復(fù)合物構(gòu)型進(jìn)行能量計(jì)算,并進(jìn)行平衡校正,結(jié)果如表2所示。由表2可知,TBZ與MAA結(jié)合能最大,其次分別是AA、AM 和TFMAA,結(jié)合能ΔE越大,表明功能單體與模板分子之間的相互作用力就越強(qiáng),所得聚合物印跡空腔的活性位點(diǎn)能量就越高,親和性和選擇性也就越強(qiáng)。因此MAA是制備TBZMIPs 的最佳功能單體,且TBZ 與MAA 結(jié)合比例為1∶3。針對三唑酮(TDF),其功能單體的篩選過程與TBZ一致,根據(jù)本文作者課題組之前的研究結(jié)果,MAA 與TDF 之間的結(jié)合能最大,且TDF 與MAA 結(jié)合比例也為1∶3[21]。為使模板分子與功能單體之間的預(yù)組裝更加充分,實(shí)際制備時常適當(dāng)增加功能單體的比例,因此,制備復(fù)合模板分子印跡聚合物的摩爾比選為TBZ∶TDF∶MAA=1∶1∶8。
表2 TBZ與4種功能單體相互作用的作用能(ΔE)和氫鍵數(shù)
2.2.1 微觀形貌表征
采用掃描電子顯微鏡(SEM)對MIPs 和NIPs的微觀形貌進(jìn)行表征。如圖3 所示,MIPs 和NIPs均為納米級的球形聚合物,并且微球粒徑均一,球形度高,彼此之間無粘連現(xiàn)象。另外MIPs 微球表面粗糙,存在很多孔穴,這些微孔結(jié)構(gòu)有利于MIPs對TBZ和TDF的吸附,而NIPs微球表面則比較光滑。
圖3 聚合物的場發(fā)射掃描電鏡圖
2.2.2 紅外光譜表征
為考察雙模板分子印跡聚合物是否制備成功,對兩種模板分子、MIPs 洗脫前后和NIPs 的紅外光譜進(jìn)行分析,如圖4所示。由圖可以看出,在MIPs洗脫前后以及NIPs 洗脫后的紅外譜圖中,在1732cm-1附近的吸收峰為交聯(lián)劑EGDMA中C==O振動峰,1635cm-1附近的吸收峰為EGDMA中C==C振動峰,MIPs 洗脫前后以及NIPs 洗脫后均在1157cm-1處出現(xiàn)尖銳的峰,該峰為EGDMA中O—C—O振動峰,1257cm-1處出現(xiàn)尖銳的峰,該峰為功能單體MAA中C—O振動峰,這些特征吸收峰表明聚合物制備成功。另外TBZ、TDF 和MIPs 洗脫前均在672cm-1處出現(xiàn)吸收峰,這是TBZ和TDF中的C—Cl吸收峰,而該峰未在MIPs和NIPs洗脫后的譜圖中出現(xiàn),并且MIPs洗脫后和NIPs的譜圖中主要峰形基本一致,表明模板分子TBZ和TDF已經(jīng)被完全洗脫。
圖4 聚合物洗脫前后和TBZ、TDF的紅外光譜圖
2.3.1 動態(tài)吸附性能
測試了MIPs和NIPs對TBZ及TDF的吸附量(Q)隨時間的變化關(guān)系,如圖5所示。由圖5可知,MIPs對TBZ和TDF的吸附量均隨時間的延長而增加,在150min 時接近吸附平衡,表明MIPs 對TBZ 和TDF具有較快的吸附動力學(xué)。盡管NIPs 對TBZ 和TDF的吸附量隨時間的增加而緩慢增加,但是吸附量始終低于MIPs,這是因?yàn)镸IPs 表面及內(nèi)部具有與模板分子大小及結(jié)構(gòu)互補(bǔ)的三維印跡空腔,故MIPs對模板分子的吸附是化學(xué)吸附和物理吸附并存的,而NIPs對模板分子的吸附僅為物理吸附。
圖5 MIPs與NIPs的動態(tài)吸附曲線
2.3.2 靜態(tài)吸附性能及Scatchard模型分析
通過靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)考察聚合物對模板分子的吸附性能,繪制MIPs 和NIPs 對TBZ 及TDF 的靜態(tài)吸附曲線,如圖6所示。由圖中曲線走勢可知,MIPs對TBZ 或TDF 的吸附量始終高于NIPs,這是因?yàn)镸IPs 微球中含有與TBZ 或TDF 分子互補(bǔ)的三維印跡空腔,對TBZ或TDF具有記憶功能,能對其進(jìn)行特異性吸附,而NIPs 無與之互補(bǔ)的印跡空腔,僅通過物理作用吸附TBZ及TDF分子。
圖6 MIPs與NIPs的靜態(tài)吸附曲線
采用Scatchard 模型分析MIPs 對模板分子的吸附位點(diǎn)種類、解離常數(shù)以及最大吸附量[24]。Scatchard模型如式(3)所示。
式中,Qmax為結(jié)合位點(diǎn)的最大表觀結(jié)合量,mg/g;Q為MIPs對模板分子的吸附量,mg/g;C為吸附液中模板分子的平衡濃度,mg/L;K為結(jié)合位點(diǎn)的平衡解離常數(shù),mg/L。
由圖7 可知,Q/C對Q是非線性關(guān)系,MIPs 對TBZ 及TDF 的Scatchard 曲線分成了兩部分,表明MIPs對TBZ或TDF分子的吸附是不均勻的,存在兩類吸附位點(diǎn)。原因可能是在熱聚合過程中,TBZ或TDF分子與功能單體MAA產(chǎn)生了不同的作用方式,同時自由基聚合過程的不穩(wěn)定性也導(dǎo)致MIPs 表面及內(nèi)部的印跡空腔大小和數(shù)量有所差異,而且除了模板分子的印跡作用,還存在其他共存物的非印跡作用。為研究兩類吸附位點(diǎn)的結(jié)合效能,對兩個線性部分進(jìn)行擬合,分別計(jì)算出戊唑醇與三唑酮的平衡解離常數(shù)K和飽和吸附量Qmax,結(jié)果如表3所示。
圖7 MIPs的Scatchard模型分析
表3 MIPs靜態(tài)吸附曲線的Scatchard分析及親和位點(diǎn)分布
2.3.3 選擇性吸附性能
為考察MIPs 的特異性吸附能力,選擇含TBZ、MYC、TDM 和TDF 4 種三唑類殺菌劑,以及SMT和ARZ 兩種三嗪類除草劑的標(biāo)準(zhǔn)液作為吸附液,通過平衡吸附實(shí)驗(yàn)測定MIPs對6種農(nóng)藥的吸附量,結(jié)果如圖8所示。
圖8 MIPs對6種農(nóng)藥的選擇性吸附性能
由圖8可知,MIPs對6種農(nóng)藥均有一定的吸附能力,且吸附能力由大到小依次為:TBZ、TDF、MYC、TDM、ARZ和SMT。其中MIPs對TBZ和TDF的吸附效果最好,吸附量分別達(dá)到了3.48mg/g 和3.32mg/g,對MYC和TDM的吸附容量也較高,吸附量分別為2.36mg/g和2.32mg/g,而對ARZ和SMT的吸附效果最差,吸附容量僅為1.44mg/g和1.08mg/g。這是因?yàn)镸IPs 內(nèi)部存在與TBZ 和TDF 相匹配的印跡空腔,表現(xiàn)出對TBZ 和TDF 特異性吸附,而MYC 和TDM 分子結(jié)構(gòu)與模板分子結(jié)構(gòu)類似,但SMT 和ART 的分子結(jié)構(gòu)與模板分子結(jié)構(gòu)差異大,故MIPs表現(xiàn)出良好的組選擇性以及特異選擇性。
2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
分別以6 種農(nóng)藥(TBZ、TDF、TDM、MYC、ARZ和SMT)的濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),擬合標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如表4所示。由表可知,在0.0005~0.1mg/L 濃度范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)R2為0.9991~1.0000。
表4 6種農(nóng)藥的標(biāo)準(zhǔn)曲線及相關(guān)系數(shù)
2.4.2 戊唑醇-三唑酮-MISPE對樣品的凈化能力
為評價(jià)戊唑醇-三唑酮-MISPE柱對煙葉樣品中農(nóng)藥的凈化能力,以C18-SPE柱和HLB-SPE柱作為對比,將加標(biāo)煙葉用3種固相萃取柱進(jìn)行前處理,然后用UHPLC-MS/MS檢測,對應(yīng)色譜圖如圖9所示。
圖9 戊唑醇-三唑酮-MISPE對樣品的凈化能力
由圖9 可知,TBZ-TDF-MISPE 柱、C18-SPE 柱和HLB-SPE柱對煙葉樣品均有一定的凈化能力,6種農(nóng)藥的峰都能很好地分離開來,但3種固相萃取柱的凈化能力差異較大。其中TBZ-TDF-MISPE 柱凈化效果最好,C18-SPE柱和HLB-SPE柱凈化效果次之,因?yàn)門BZ-TDF-MISPE 柱能特異性吸附目標(biāo)分子,而C18-SPE柱和HLB-SPE柱因其無選擇性,通過物理作用同時吸附目標(biāo)分子和其他雜質(zhì)。
2.4.3 回收率與精密度
為考察TBZ-TDF-MISPE-UHPLC-MS/MS方法的準(zhǔn)確性和重復(fù)性,分別在0.2μg/g、0.5μg/g和1μg/g加標(biāo)水平下進(jìn)行回收率實(shí)驗(yàn),結(jié)果如表5所示。
由表5可知,樣品中TBZ、TDF、TDM和MYC的回收率在72%~110.3%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.38%~7.92%(n=3),而ARZ和SMT的回收率僅為4.35%~15.8%,說明該法選擇性強(qiáng),回收率高,精密度好,能滿足煙葉中TBZ、TDF、MYC 和TDM的檢測要求。
表5 固相萃取的加標(biāo)回收率和精密度(n=3)
2.4.4 單模板和雙模板MISPE柱分離效果對比
TBZ-MISPE柱、TDF-MISPE柱[21]和TBZ-TDFMISPE 柱對戊唑醇和三唑酮的回收率如表6 所示。由表6 可知,TBZ-MISPE 柱在加標(biāo)水平(0.2μg/g、0.5μg/g 和1μg/g)下對TBZ 和TDF 兩者的平均回收率差異明顯,對TBZ達(dá)到了110.16%,而對TDF僅為45.3%;TDF-MISPE 柱在加標(biāo)水平(0.01μg/g、0.05μg/g、0.1μg/g和0.5μg/g)下對TBZ和TDF的平均回收率分別為90.02%和98.27%,二者差異較??;TBZ-TDF-MISPE 柱對TBZ 和TDF 的平均回收率分別為103.32%、99.42%,二者接近。通過對比3種MISPE柱對戊唑醇和三唑酮的分離效果,可以得出雙模板MISPE柱的分離效果優(yōu)于單模板MISPE柱,雙模板MISPE 柱更有利于實(shí)現(xiàn)同時且高效地對樣品中農(nóng)殘(TBZ和TDF)的分離與富集。
表6 單模板和雙模板MISPE柱分離效果對比
以戊唑醇和三唑酮作為雙模板,通過沉淀聚合法制備了具有良好吸附性能的雙模板MIPs。動態(tài)吸附結(jié)果顯示MIPs 的吸附容量在2.5h 時即可接近飽和;靜態(tài)吸附及Scatchard 分析結(jié)果表明,MIPs對模板分子具有較強(qiáng)的吸附能力,并且MIPs 的吸附位點(diǎn)不均一,存在高低兩類親和位點(diǎn);選擇性吸附結(jié)果表明MIPs 不僅對戊唑醇和三唑酮具有很好的吸附能力,也對其結(jié)構(gòu)類似物腈菌唑和三唑醇具有一定的吸附能力,而對莠去津和西草凈吸附能力很弱,表現(xiàn)出良好的特異選擇性和組選擇性。以雙模板MIPs 作為固相萃取柱填料制備MISPE 柱,建立了戊唑醇-三唑酮-MISPE-UHPLC-MS/MS 檢測煙葉中4種殺菌劑的方法,并與單模板MISPE柱進(jìn)行對比。結(jié)果表明,戊唑醇-三唑酮-MISPE 柱對三唑類殺菌劑的富集能力優(yōu)于單模板MISPE 柱,在加標(biāo)水平(0.2μg/g、0.5μg/g、1μg/g)下的平均回收率為72%~110.3%,RSD 為2.38%~7.92%,滿足煙葉中三唑類殺菌劑殘留分析的要求。另外,基于該MIPs良好的吸附性能,所建立的MISPE-UHPLCMS/MS方法也可以應(yīng)用于食品、環(huán)境中相應(yīng)三唑類殺菌劑殘留的檢測。