閆雍雍，卞 倩，焦心語，李松林

（淮陰工學(xué)院生命科學(xué)與食品工程學(xué)院，江蘇淮安 223003）

芡實(shí)為睡蓮科植物芡的干燥成熟果仁，主要分布于亞熱帶和溫帶地區(qū)，是藥食同源植物，在中國東部被廣泛栽培[1-2]。芡實(shí)中蛋白質(zhì)含量可達(dá)9.72%，含有豐富的醇溶蛋白、清蛋白、谷蛋白和球蛋白等蛋白質(zhì)[3]，其氨基酸種類齊全，配比合理，可作為人體優(yōu)質(zhì)蛋白的理想來源[4]。此外，芡實(shí)中還含有豐富的酚類、黃酮類及環(huán)肽類、腦苷脂類化合物，脂肪、礦物質(zhì)及維生素，具有延緩衰老、抗氧化、抗心肌缺血、降血糖、抗癌等藥理作用[5-6]。

近年來，關(guān)于利用發(fā)酵技術(shù)對芡實(shí)進(jìn)行開發(fā)和綜合利用的研究越來越受到關(guān)注。張然等[7]采用保加利亞乳桿菌和乳酸鏈球菌制作芡實(shí)發(fā)酵奶，制備成的芡實(shí)發(fā)酵乳飲料中乳酸菌含量豐富，乳酸菌數(shù)≥106cfu/mL。劉靜等[8]以芡實(shí)和黃豆為原料，經(jīng)保加利亞乳桿菌和嗜熱鏈球菌發(fā)酵制備的復(fù)合飲料對DPPH·的清除率為95.87%，對ABTS+·的清除率為46.64%。張汆等[9]采用高活性釀酒曲和增香釀酒曲制備的芡實(shí)酒，富含各種必需氨基酸，具備較強(qiáng)的體外抗氧化活性。

干酪乳桿菌（Lactobacillus casei）是一種兼性異型發(fā)酵乳酸菌，除了在乳制品的應(yīng)用中較為廣泛之外，其用于植物源基質(zhì)的發(fā)酵近年來也越來越受到學(xué)者的關(guān)注[10]。王鑫媛等[11]采用干酪乳桿菌純種發(fā)酵燕麥乳產(chǎn)品，獲得的發(fā)酵燕麥乳含有燕麥多酚、燕麥β-葡聚糖以及抗性淀粉等多種營養(yǎng)成分。史燕等[12]以燕麥全粉為基質(zhì)進(jìn)行干酪乳桿菌固態(tài)發(fā)酵，可以增加小分子質(zhì)量多肽。胡姝敏等[13]發(fā)現(xiàn)干酪乳桿菌KLDS1.0319發(fā)酵顯著（P＜0.05）提高了干酪的DPPH自由基清除能力及羥基自由基清除能力。然而，利用干酪乳桿菌發(fā)酵芡實(shí)，研究其發(fā)酵過程中的營養(yǎng)組分及抗氧化能力變化，國內(nèi)外尚未見報道。

本實(shí)驗中采用干酪乳桿菌發(fā)酵芡實(shí)，研究芡實(shí)pH、可滴定酸、多肽產(chǎn)率、多肽分子量分布、游離氨基酸組成、總酚、總黃酮及抗氧化活性在發(fā)酵過程中的動態(tài)變化，以期為芡實(shí)發(fā)酵產(chǎn)品的開發(fā)和利用提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

芡實(shí) 淮安市西順河鎮(zhèn)芡實(shí)種植基地；干酪乳桿菌Lactobacillus caseiCICC 20995 中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心；四肽標(biāo)準(zhǔn)品Gly-Gly-Tyr-Arg 西格瑪奧德里奇（上海）貿(mào)易有限公司；標(biāo)準(zhǔn)品（細(xì)胞色素C、桿菌肽、G-G-Y-R、G-G-G）、雙縮脲、菲洛嗪、乙二胺四乙酸（Ethylene Diamine Tetraacetic Acid，EDTA） 上海阿拉丁生化科技股份有限公司；無水乙醇、三氯乙酸、福林酚試劑、2,2-聯(lián)苯基-1-苦肼基、丁基羥基茴香醚（Butyl Hydroxylanisole，BHA）、氯化亞鐵和水楊酸等 均為分析純級，上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

Agilent 1100高效液相色譜儀 安捷倫科技公司；紫外可見分光光度計752N 上海菁華科技儀器有限公司；Scientz-10N冷凍干燥機(jī) 寧波新芝生物科技股份有限公司；Heraeus Multifuge X1R冷凍離心機(jī) 賽默飛世爾科技公司。

1.2 實(shí)驗方法

1.2.1 芡實(shí)發(fā)酵工藝 芡實(shí)→篩選、清洗→打漿→過濾→滅菌→冷卻→接種→發(fā)酵

1.2.2 操作要點(diǎn)

1.2.2.1 菌種活化 采用MRS培養(yǎng)基活化L. caseiCICC 20995，傳代3次充分活化后，于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2.2 芡實(shí)漿制備 挑選籽粒飽滿的去殼芡實(shí)100 g，反復(fù)清洗2～3遍，瀝水后，以5:1（mL/g）的液固比加入去離子水500 mL，浸泡過夜后進(jìn)行打漿，漿液經(jīng)過180目網(wǎng)篩過濾。濾液經(jīng)滅菌后（121 ℃，15 min），冷卻至室溫，于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2.3 接種和發(fā)酵 在上述芡實(shí)漿中加入干酪乳桿菌，接種量為9.0 lg cfu/mL；隨后在38 ℃進(jìn)行發(fā)酵，分別在0、12、24、36、48 h進(jìn)行取樣，樣品于10000 r/min離心10 min后，取上清液樣冷凍干燥，-20 ℃貯存待測。

1.2.3 pH和總酸的測定 參考GB 5009.237-2016《食品pH值的測定》測定樣品的pH；參考GB 12456-2021《食品中總酸的測定》測定樣品的可滴定酸含量。

1.2.4 多肽產(chǎn)率的測定 依據(jù)尹樂斌等[14]的方法并稍作改動。將1 g冷凍干燥樣品溶解于10 mL去離子水中，隨后與100 mg/mL的三氯乙酸溶液按1:1的體積比混合均勻并靜置20 min，在5000 r/min條件下離心20 min，取上清液與雙縮脲試劑按照1:3的比例混合均勻，室溫下靜置40 min，在540 nm測定吸光度值，對照Gly-Gly-Tyr-Arg四肽標(biāo)準(zhǔn)溶液曲線，計算多肽濃度，多肽產(chǎn)率計算公式如下：

式中：A1表示發(fā)酵后多肽含量（g/100 g）；A0表示發(fā)酵前多肽含量（g/100 g）。

1.2.5 多肽分子量分布的測定 依據(jù)Li等[15]的方法并稍作改動進(jìn)行多肽分子量分布的測定。選用TSK-GEL G2000 SWXL凝膠柱（7.5 mm×30 cm），色譜條件：流動相（乙腈:水:三氟乙酸=45:55:0.1，v/v），柱溫為28 ℃，流速為0.5 mL/min，在220 nm處進(jìn)行檢測。

1.2.6 游離氨基酸含量的測定 參考GB 5009.124-2016《食品中氨基酸的測定》測定樣品的游離氨基酸含量。

1.2.7 總酚的測定 取冷凍干燥樣品2 g，加入40 mL的無水乙醇，振蕩提取2 h，5000 r/min離心5 min后，收集上清液。離心殘渣在相同條件下重復(fù)提取一次。合并兩次提取液，采用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進(jìn)行干燥，用無水乙醇定容于10 mL容量瓶中，備用待測。采用福林酚法進(jìn)行總酚的測定[16]。將200 μL待測提取液樣品加入1.5 mL福林酚試劑中，加入1.5 mL 1.7 mol/L Na2CO3并混勻，在室溫下避光反應(yīng)2 h，于725 nm處測定吸光度。以沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品制作標(biāo)準(zhǔn)曲線，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程y=3.7637x+0.0332（R2=0.9998），計算樣品總酚含量。

1.2.8 總黃酮的測定 參考王清爽等[16]的方法并稍作改動進(jìn)行總酚的測定。在25 mL容量瓶中分別加入采用1.2.7中方法制備的待測提取液2.5 mL和無水乙醇7.5 mL，隨后加入1 mL 6% NaNO2，混勻后放置10 min，再加入5% Al（NO3）3溶液1 mL ，混勻后放置10 min，最后加入5% NaOH溶液10 mL，加水定容后放置10 min，于510 nm波長處測定吸光度。利用蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液制作標(biāo)準(zhǔn)曲線，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程y=11.167x-0.0016 （R2=0.9994），計算樣品總黃酮含量。

1.2.9 抗氧化活性的測定

1.2.9.1 DPPH自由基清除能力 參照Du等[17]方法并稍作改動進(jìn)行測定。取4 mL采用1.2.7中方法制備的待測提取液，加入到6 mL 400 μmol/L DPPH溶液液中，混勻后避光反應(yīng)25 min，以 95%乙醇溶液做對照，于517 nm處測定吸光度。以1.5 mg/mL BHA作為陽性對照組。DPPH自由基清除率計算公式如下：

式中：A1表示樣品的吸光度值；A0表示空白對照的吸光度值。

1.2.9.2 羥基自由基清除率 參照Wang等[18]方法并稍作改動進(jìn)行測定。在10 mL比色管中加入1 mL采用1.2.7中方法制備的待測提取液與3 mL 1 mmol/L硫酸亞鐵溶和3 mL 3 mmol/L H2O2溶液，混合均勻后用1 mmol/L水楊酸溶液定容至刻度線，在37 ℃反應(yīng)15 min后，于510 nm波長下測定吸光度。以1.5 mg/mL BHA作為陽性對照組。羥基自由基清除率計算公式如下：

式中：A1表示樣品的吸光度值；A0表示空白對照的吸光度值。

1.2.9.3 亞鐵螯合能力 參照Li等[15]方法并稍作修改。將1 mL采用1.2.7中方法制備的待測提取液與0.1 mL 1 mmol/L FeCl2溶液混合后在10000 r/min離心10 min，取上清液并定容至1.9 mL，加入0.1 mL 10 mmol/L的菲洛嗪，混勻并在室溫下反應(yīng)10 min。在562 nm波長下測定吸光度。以1 mmol/L EDTA作為陽性對照組。亞鐵螯合能力計算公式如下：

式中：A1表示樣品的吸光度值；A0表示空白對照的吸光度值。

1.3 數(shù)據(jù)處理

實(shí)驗結(jié)果為3次重復(fù)實(shí)驗測定結(jié)果的平均值±標(biāo)準(zhǔn)差，采用OriginPro 2021軟件進(jìn)行顯著性差異分析和相關(guān)性分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 發(fā)酵過程中芡實(shí)發(fā)酵上清液pH和可滴定酸的變化

芡實(shí)接種干酪乳桿菌進(jìn)行發(fā)酵后，樣品的pH和可滴定酸含量的變化如圖1所示。在發(fā)酵起始時，樣品的pH和可滴定酸含量分別為6.30和0.38 mL/g。在發(fā)酵過程中，pH逐漸降低，可滴定酸含量逐漸升高，在發(fā)酵48 h后分別達(dá)到3.97±0.02和（2.53±0.04）mL/g。乳酸是大多數(shù)益生菌代謝的主要最終產(chǎn)物，此外干酪乳桿菌也可能產(chǎn)生醋酸等有機(jī)酸[19-20]。干酪乳桿菌在發(fā)酵過程中消耗了芡實(shí)中的糖類成分產(chǎn)生了有機(jī)酸而導(dǎo)致pH的降低。發(fā)酵芡實(shí)中有機(jī)酸含量的增加可以促使其形成特有的乳酸味，給產(chǎn)品帶來特殊的香氣和味道。

圖1 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液pH和可滴定酸含量的變化Fig.1 Changes in pH and titratable acid content of Euryale ferox supernatant during fermentation

2.2 發(fā)酵過程中芡實(shí)發(fā)酵上清液多肽產(chǎn)率的變化

如圖2所示，在發(fā)酵過程中芡實(shí)多肽產(chǎn)率持續(xù)增加。在0～36 h上升速率較快，隨后上升速率減緩，在發(fā)酵結(jié)束時達(dá)到19.09%±0.42%。多肽產(chǎn)率的提高可能是由于L. caseiCICC 20995分泌的胞外酶對蛋白質(zhì)進(jìn)行了水解，從而增加了發(fā)酵液中的多肽含量。尹樂斌等[21]在利用乳酸菌發(fā)酵豆清液時，在發(fā)酵后期同樣發(fā)現(xiàn)多肽產(chǎn)率增加的趨勢逐步降低。這可能是由于在發(fā)酵后期干酪乳桿菌自身以多肽為營養(yǎng)物質(zhì)進(jìn)行生長利用。此外一些多肽會被乳酸菌分泌的胞外酶進(jìn)一步水解生成氨基酸，最終導(dǎo)致多肽產(chǎn)率增加減緩。

圖2 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液多肽產(chǎn)率的變化Fig.2 Changes in peptide yields of Euryale ferox supernatant during fermentation

2.3 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液多肽分子量分布的變化

如圖3所示，經(jīng)過48 h的發(fā)酵，分子質(zhì)量位于＞10000、10000～5000、5000～3000和3000～1000 Da的多肽比例均顯著降低（P＜0.05）；而分子質(zhì)量位于500～180和＜180 Da的多肽比例則顯著增加（P＜0.05），其中＜180 Da的多肽比例從49.99%±0.65%增加到57.32%±0.76%。低分子量多肽比例的增加源于中、高分子量多肽組分的降解，這說明L. caseiCICC 20995在發(fā)酵過程中可以分泌水解酶將蛋白質(zhì)大分子降解為小分子量多肽。分子量是反映蛋白質(zhì)水解情況的一個重要參數(shù)，它與蛋白質(zhì)水解物的生物活性進(jìn)一步相關(guān)。Liu等[22]用枯草芽孢桿菌發(fā)酵脫脂小麥胚芽，發(fā)現(xiàn)多肽分子質(zhì)量位于＞5000、5000～3000和3000～2000 Da的比例隨著發(fā)酵逐漸減少，而位于500～180和＜180 Da的低分子量多肽比例逐漸增加。他們認(rèn)為發(fā)酵后蛋白質(zhì)水解物分子量的分布差異，反映了肽鏈長度和末端氨基暴露的不同，這可能會影響水解物的抗氧化活性。

圖3 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液多肽分子量分布的變化Fig.3 Changes in molecular weight distribution of peptides of Euryale ferox supernatant during fermentation

2.4 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液游離氨基酸含量的變化

發(fā)酵過程中游離氨基酸的含量如表1所示。必需氨基酸含量在發(fā)酵后均顯著增加（P＜0.05），其中Leu和Phe在發(fā)酵后分別增加了24.88和30.58倍，總必需氨基酸含量在發(fā)酵結(jié)束后增加了10.32倍。大多數(shù)非必需氨基酸在發(fā)酵后有明顯變化，在發(fā)酵48 h后Glu從（20.16±1.36） mg/100 g增加到（171.67±7.43） mg/100 g，表現(xiàn)出最高的增加量；其次是Arg從（28.63±0.98） mg/100 g增加到（154.11±3.47） mg/100 g，而Gly含量在發(fā)酵過程中沒有顯著變化（P＞0.05）。發(fā)酵芡實(shí)中的游離氨基酸總含量經(jīng)過發(fā)酵增加了5.62倍，這表明芡實(shí)蛋白的水解程度隨著發(fā)酵時間的增加而逐漸增強(qiáng)。這一趨勢與Shi等[23]的研究一致，他們發(fā)現(xiàn)在使用Lactobacillus caseiN1115 對牛奶進(jìn)行發(fā)酵時，其游離氨基酸在發(fā)酵過程中逐漸增加。Bu等[24]認(rèn)為在乳酸菌發(fā)酵過程中會釋放一些蛋白酶，蛋白的水解程度隨著發(fā)酵時間的增加而逐漸增強(qiáng)。因此發(fā)酵芡實(shí)游離氨基酸的變化可能是由于在發(fā)酵過程中蛋白質(zhì)被L. caseiCICC 20995分泌的內(nèi)切蛋白酶降解為肽，然后被外切蛋白酶進(jìn)一步降解為游離氨基酸。

表1 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液游離氨基酸含量的變化Table 1 Changes in free amino acid content of Euryale ferox supernatant during fermentation

2.5 發(fā)酵過程中芡實(shí)發(fā)酵上清液總酚和總黃酮含量的變化

如圖4所示，發(fā)酵前芡實(shí)的總酚含量為（9.71±0.31） μg/g，48 h發(fā)酵后的總酚含量顯著升高（P＜0.05），達(dá)到（18.00±0.20） μg/g，增加了85.38%。這可能是由于乳酸菌在發(fā)酵過程中分泌的蛋白水解酶類改變了多酚與蛋白相互作用的模式，干酪乳桿菌酶系統(tǒng)催化結(jié)合狀態(tài)的多酚-蛋白質(zhì)化合物進(jìn)入自由狀態(tài)，促進(jìn)了其中游離形式多酚的釋放。王清爽等[16]研究發(fā)現(xiàn)干酪乳桿菌發(fā)酵脫脂薏米的過程中，內(nèi)源酶系的作用能夠使薏米中的酚類物質(zhì)從結(jié)合狀態(tài)釋放出來，總酚含量在發(fā)酵后顯著提高（P＜0.05）。與發(fā)酵0 h的芡實(shí)樣品相比，在48 h的發(fā)酵過程中，總黃酮的含量持續(xù)顯著增加（P＜0.05），從（4.30±0.27） μg/g提高到（10.99±0.14） μg/g。與總酚含量的增幅相比，發(fā)酵后總黃酮含量的增幅更加顯著（P＜0.05）。Landete等[25]認(rèn)為可能是在發(fā)酵過程中，復(fù)雜的多酚通過酶解作用，被分解為結(jié)構(gòu)更簡單的黃酮醇類化合物等。

圖4 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液總酚和總黃酮含量的變化Fig.4 Changes in total phenol and total flavonoid contents of Euryale ferox supernatant during fermentation

2.6 發(fā)酵過程中芡實(shí)發(fā)酵上清液抗氧化活性的變化

作為一種穩(wěn)定的自由基，DPPH已被廣泛用作研究抗氧化劑清除活性的指標(biāo)。DPPH自由基清除實(shí)驗結(jié)果如圖5A所示。芡實(shí)在發(fā)酵期間的DPPH自由基清除能力呈上升趨勢，從發(fā)酵0 h的10.73%±0.45%達(dá)到了48 h的50.37%±0.84%，而陽性對照BHA的清除率為96.34%±0.34%。與本研究相似，劉靜等[8]以芡實(shí)和黃豆為原料制備復(fù)合飲料，經(jīng)乳酸菌發(fā)酵，飲料對DPPH自由基的清除率達(dá)到95.87%。發(fā)酵芡實(shí)的羥基自由基清除實(shí)驗表明，在發(fā)酵期間，羥基自由基清除率顯著提高（P＜0.05），在第48 h達(dá)到43.56%±1.14%，陽性對照BHA的清除率為58.60%±0.31%。Rajapakse等[26]認(rèn)為Gly、Lys和Pro在自由基清除能力方面發(fā)揮了重要作用。Feng等[27]研究發(fā)現(xiàn)酸性氨基酸（Asp和Glu）能夠通過提供質(zhì)子來淬滅未配對的電子和自由基。此外，Udenigwe等[28]認(rèn)為由于其咪唑環(huán)的分解，His表現(xiàn)出強(qiáng)大的自由基清除活性。本研究中發(fā)酵芡實(shí)清除自由基能力的提高，可能與Pro、Asp、Glu和His含量在發(fā)酵過程中顯著（P＜0.05）增加有關(guān)。侯凱榮等[29]同樣發(fā)現(xiàn)干酪乳桿菌發(fā)酵可以顯著（P＜0.05）提高豆乳的羥基自由基清除能力。方晟等[30]研究發(fā)現(xiàn)在金佛手酵素發(fā)酵過程中羥基自由基清除率與乳酸和乙酸含量呈極顯著正相關(guān)（P＜0.01），DPPH自由基清除率與琥珀酸呈極顯著正相關(guān)（P＜0.01）。因此本研究中發(fā)酵芡實(shí)上清液抗氧化活性的提高與干酪乳桿菌發(fā)酵過程中所產(chǎn)生的乳酸有關(guān)。

圖5 發(fā)酵過程中芡實(shí)上清液DPPH自由基清除率（A）、羥基自由基清除率（B）和亞鐵離子螯合率（C）的變化Fig.5 Changes in DPPH radical scavenging rate (A), hydroxyl radical scavenging rate (B) and ferrous ion chelation rate (C) of Euryale ferox supernatant during fermentation

經(jīng)過干酪乳桿菌發(fā)酵48 h后，發(fā)酵芡實(shí)的亞鐵離子螯合率提高了3.95倍。螯合劑的抗氧化性能通常取決于官能團(tuán)的協(xié)同作用，如-OH、-SH、-COOH、-PO3H2、C=O、-NR2、-S-和-O-[31]。芡實(shí)的酚類含量與其抗氧化活性有關(guān)，發(fā)酵芡實(shí)的螯合能力很可能是由酚類化合物-OH和-COOH等官能團(tuán)的協(xié)同作用形成的。此外，低分子量多肽比例的增加也在一定程度上促進(jìn)了抗氧化活性的提高。Rajapakse等[26]認(rèn)為低分子量多肽具備更高的抗氧化活性是由于它們通過抑制自由基介導(dǎo)的亞油酸過氧化而具有斷鏈能力，低分子量的多肽作為生物活性肽更有效力。

2.7 芡實(shí)上清液抗氧化活性與部分成分的相關(guān)性分析

芡實(shí)在發(fā)酵過程中的亞鐵離子螯合能力、DPPH自由基和羥基自由基清除能力的變化趨勢與其可滴定酸、總游離氨基酸、多肽產(chǎn)率、總黃酮和總酚變化趨勢相一致。因此，本研究對抗氧化活性與這些指標(biāo)之間的相關(guān)性進(jìn)行了分析。由圖6可知，芡實(shí)的抗氧化能力與可滴定酸、總游離氨基酸、多肽產(chǎn)率、總酚和總黃酮含量具有極顯著（P＜0.01）正相關(guān)關(guān)系，Spearman系數(shù)均大于0.94。說明芡實(shí)發(fā)酵過程中可滴定酸、總游離氨基酸、多肽產(chǎn)率、總酚和總黃酮含量的增加能夠提升其抗氧化活性。

圖6 芡實(shí)上清液抗氧化活性與部分成分的斯皮爾曼相關(guān)性分析Fig.6 Spearman's correlation analysis between antioxidant activity of Euryale ferox supernatant and some components

3 結(jié)論

以芡實(shí)為原料，研究了干酪乳桿菌發(fā)酵對上清液抗氧化活性的影響。在發(fā)酵48 h后，芡實(shí)上清液中可滴定酸含量和多肽產(chǎn)率分別達(dá)到（2.53±0.04） mL/g和19.09%±0.42%。分子質(zhì)量位于＜180 Da的多肽比例在發(fā)酵后從49.99%±0.65%增加到57.32%±0.76%。發(fā)酵后的上清液中總酚和總黃酮含量顯著升高（P＜0.05），分別增加了85.38%和155.58%。芡實(shí)上清液的DPPH自由基清除率和羥基自由基清除率在發(fā)酵期間呈上升趨勢，發(fā)酵48 h后分別達(dá)到了50.37%±0.84%和43.56%±1.14%，亞鐵離子螯合率提高了3.95倍。芡實(shí)上清液的抗氧化能力與可滴定酸、總游離氨基酸、多肽產(chǎn)率、總酚和總黃酮含量具有極顯著（P＜0.01）正相關(guān)關(guān)系。干酪乳桿菌發(fā)酵對芡實(shí)上清液抗氧化活性的研究可以為發(fā)酵芡實(shí)產(chǎn)品的開發(fā)提供理論依據(jù)，對進(jìn)一步開發(fā)芡實(shí)資源、提高經(jīng)濟(jì)價值具有重要的實(shí)踐意義。