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        河南省濮陽市犢牛腹瀉大腸桿菌分離鑒定及生物學(xué)特性分析

        2022-12-09 10:07:08趙朋寬
        中國動物檢疫 2022年12期
        關(guān)鍵詞:耐藥小鼠

        趙朋寬

        (南樂縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,河南南樂 457400)

        犢牛腹瀉是危害養(yǎng)牛業(yè)的主要疾病之一,臨床中尤以細(xì)菌性腹瀉最為常見,如大腸桿菌、沙門氏菌、巴氏桿菌、奇異變形桿菌等引起的腹瀉,其中沙門氏菌和大腸桿菌危害最嚴(yán)重[1-3]。犢牛大腸桿菌病由不同血清型的致病性大腸桿菌引起,臨床以腹瀉、脫水、消瘦為主,呈地方性或散發(fā)性流行,10 日齡以內(nèi)犢牛最易感,發(fā)病率和死亡率均較高,嚴(yán)重影響牛養(yǎng)殖業(yè)健康發(fā)展[4-6]。相關(guān)研究[7-8]表明,大腸桿菌抗原結(jié)構(gòu)復(fù)雜,具有多種致病性血清型且無交叉保護(hù)性,無有效疫苗預(yù)防其感染,導(dǎo)致大腸桿菌病廣泛發(fā)生與流行。細(xì)菌生物被膜(bacterial biofilm,BBF)是組成結(jié)構(gòu)性細(xì)菌群落的主要物質(zhì),其形成能力與細(xì)菌毒力及耐藥性具有一定相關(guān)性[9]。當(dāng)前,犢牛大腸桿菌病主要用抗生素進(jìn)行治療,而抗生素的濫用,致使大腸桿菌耐藥性增強(qiáng),且出現(xiàn)了多重耐藥菌株,因而加大了該病的治療難度,同時大腸桿菌的耐藥性和藥物殘留問題也威脅著人類健康[10-11]。

        本試驗采集243 份腹瀉犢牛的肛拭子、糞便、肝臟等病料樣品進(jìn)行大腸桿菌分離鑒定,然后對致病性大腸桿菌進(jìn)行致病性、血清型、生物被膜形成能力及耐藥性等相關(guān)生物學(xué)特性檢測,以期為該地區(qū)犢牛大腸桿菌性腹瀉防治提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 菌株來源

        從2018—2020 年采集的243 份腹瀉犢牛肛拭子、糞便、肝臟等病料樣品中進(jìn)行大腸桿菌分離鑒定,其中肛拭子樣品96 份、糞便樣品86 份、肝臟樣品61 份。

        1.2 主要材料

        麥康凱培養(yǎng)基、96 孔細(xì)菌培養(yǎng)板、大腸桿菌顯色培養(yǎng)基、營養(yǎng)肉湯,購自北京雙旋微生物培養(yǎng)基制備科技公司;藥物紙片,購自杭州天和微生物制劑有限公司;細(xì)菌生化試紙條,購自上海研晶生物科技有限公司;大腸桿菌O 抗原鑒定因子,購自中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所;460 只體質(zhì)量(25±2)g的昆明系小白鼠,購自北京維通利華實驗動物有限公司。

        1.3 細(xì)菌分離與培養(yǎng)

        對腹瀉犢牛樣品處理后,無菌接種于麥康凱培養(yǎng)基進(jìn)行鑒別培養(yǎng);37 ℃恒溫培養(yǎng)18~24 h 后,挑取單個菌落接種于大腸桿菌顯色培養(yǎng)基;37 ℃培養(yǎng)12~18 h,再挑取單個菌落接種于營養(yǎng)肉湯純化培養(yǎng),然后進(jìn)行鏡檢和生化試驗。

        1.4 致病性試驗

        參考文獻(xiàn)[12]的方法,將分離菌株接種于營養(yǎng)肉湯中,200 r/min 37 ℃震蕩培養(yǎng)2~4 h 至對數(shù)期,用平板計數(shù)法進(jìn)行菌落計數(shù);調(diào)整菌液濃度為107cfu/mL,每株分離菌株灌服4 只昆明系小鼠,劑量為0.25 mL,對照組給予等量的無菌生理鹽水。試驗期為7 d,試驗期間觀察小鼠發(fā)病情況,對死亡小鼠進(jìn)行細(xì)菌分離鑒定。

        1.5 細(xì)菌血清型檢測

        參考文獻(xiàn)[7]方法,將分離菌株接種于普通營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)斜面上,37 ℃培養(yǎng)12 h 后取出,在無菌條件下用無菌生理鹽水洗脫滅菌管,121 ℃滅菌3 h,破壞分離菌株K 抗原、O 抗原鑒定因子后進(jìn)行玻板凝集試驗,用5%石碳酸作對照,對分離菌株進(jìn)行血清型檢測。

        1.6 細(xì)菌生物被膜形成能力檢測

        參考文獻(xiàn)[13]方法,在96 孔細(xì)菌培養(yǎng)板,加入190 μL 普通營養(yǎng)肉湯,然后接種10 μL 菌液,對照孔加200 μL 營養(yǎng)肉湯,37 ℃培養(yǎng)18 h;用PBS 洗滌3 次,用甲醛固定20 min;加入結(jié)晶紫染色5 min,PBS 洗滌烘干;每孔加入200 μL 95%乙醇洗脫30 min,用酶標(biāo)儀測OD600,對分離菌株進(jìn)行被膜形成能力測定。判定標(biāo)準(zhǔn)以陰性對照孔OD 的2 倍作為判斷能否形成被膜的臨界點ODc。當(dāng)OD=ODc 時,表示被膜形成能力為0;當(dāng)OD <ODc 時,表示被膜形成能力較弱;當(dāng)ODc <OD ≤2ODc 時,表示被膜形成能力中等;當(dāng)OD ≥2ODc 時,表示被膜形成能力較強(qiáng)。

        1.7 藥敏試驗

        參照美國臨床實驗室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(CLSI)2013 年推薦的標(biāo)準(zhǔn)藥敏試驗法[14]進(jìn)行操作和試驗結(jié)果判斷。將分離菌株培養(yǎng)至對數(shù)期,調(diào)整菌液濃度為107cfu/mL,無菌條件下取100 μL 菌液均勻涂布在90 mm普通營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基中,貼上藥敏紙片,每種藥做3 個重復(fù);37 ℃培養(yǎng)18 h 后,測定抑菌圈直徑,取平均值。藥物敏感性標(biāo)準(zhǔn)見表1。

        表1 常用藥物的藥敏試驗判定標(biāo)準(zhǔn)

        2 結(jié)果

        2.1 細(xì)菌分離培養(yǎng)

        經(jīng)麥康凱培養(yǎng)基、大腸桿菌顯色培養(yǎng)基培養(yǎng)及鏡檢,從采集的243 份樣品中分離到113 株符合大腸桿菌培養(yǎng)特性和形態(tài)學(xué)的細(xì)菌。

        2.2 細(xì)菌生化試驗

        參照細(xì)菌生化試紙條說明書,對分離的疑似大腸桿菌菌株進(jìn)行生化試驗,結(jié)果分離的113 株細(xì)菌全部被鑒定為大腸桿菌,大腸桿菌平均分離率為46.5%(113/243),其中肛拭子樣品的分離率為43.8%,糞便樣品為45.3%,肝臟樣品為52.5%(表2)。

        表2 不同病料樣品中的大腸桿菌分離情況

        2.3 致病性試驗

        攻毒組小鼠在攻毒后2~4 d 出現(xiàn)發(fā)病情況,個別小鼠出現(xiàn)急性死亡。剖檢死亡小鼠發(fā)現(xiàn),腸道出血,腸黏膜脫落,肝、脾出現(xiàn)不同程度出血,且均分離到大腸桿菌,而對照組小鼠健康存活。經(jīng)統(tǒng)計,引起小鼠發(fā)病的有9 株大腸桿菌,引起死亡的有78 株(表3),表明引起小鼠發(fā)病和死亡的87株大腸桿菌為致病性大腸桿菌。

        表3 大腸桿菌致病性試驗結(jié)果

        2.4 血清型檢測

        用玻板凝集試驗對分離的87 株致病性大腸桿菌進(jìn)行血清鑒定。結(jié)果(表4)顯示:分離的致病性大腸桿菌分屬于14 種血清型,分布在不同樣品中,其中O101(18.4%)、O38(17.2%)和O142(14.9%)型占比較高,為該地區(qū)致犢牛腹瀉的優(yōu)勢血清型。

        表4 分離的致病性大腸桿菌血清型分布

        2.5 生物被膜形成能力檢測

        分離的87 株犢牛源致瀉性大腸桿菌中,膜形成能力較強(qiáng)的24株(26.6%),中等的34株(43.6%),較弱的17株(19.5%),不形成被膜的12株(15.4%),不同生物被膜形成能力的菌株分布在不同血清型中(表5)。

        表5 分離的致病性大腸桿菌血清型和生物被膜形成能力相關(guān)性分析結(jié)果

        2.6 藥敏試驗

        藥敏試驗結(jié)果(表6)顯示:分離的87 株致病性大腸桿菌對阿莫西林、氨芐西林、鏈霉素等6種藥物的耐藥率較高,為77.0%~98.9%,其次是對新霉素、慶大霉素、大觀霉素等4 種藥物,耐藥率為49.4%~52.9%;對頭孢噻呋、頭孢噻肟、氟苯尼考等7 種藥物的耐藥率較低,為9.2%~26.4%。

        表6 藥敏試驗結(jié)果

        3 討論

        國內(nèi)外研究[15-16]表明,大腸桿菌是引起犢牛腹瀉的主要的病原菌之一,引起的發(fā)病率和死亡率較高,對犢牛危害較大,嚴(yán)重影響?zhàn)B牛業(yè)發(fā)展。大腸桿菌為條件性致病菌,廣泛存在于環(huán)境中,尤其是衛(wèi)生較差的牛舍,當(dāng)發(fā)生冷熱等外在因素應(yīng)激時,機(jī)體抵抗力下降,繼而引起大腸桿菌病,因此,注意環(huán)境衛(wèi)生及環(huán)境消毒也是有效防控大腸桿菌病的重要措施。致病性大腸桿菌在我國廣泛分布,因此應(yīng)做好控制,降低該疾病發(fā)病率[17-18]。本研究從濮陽市243 份腹瀉犢牛病料中分離到87 株致病性大腸桿菌,分離率為35.8%,說明致病性大腸桿菌可能在該地呈地方性流行。大腸桿菌血清型多樣化,同一宿主不同地區(qū),其優(yōu)勢血清型分布也存在一定差異。吳孟等[19]報道,巴州地區(qū)犢牛腹瀉大腸桿菌血清型以O(shè)78、O111 為主;史量全等[20]報道,內(nèi)蒙古地區(qū)犢牛腹瀉大腸桿菌血清型主要為O132 型;高?;鄣萚11]報道,寧夏地區(qū)犢牛腹瀉大腸桿菌的優(yōu)勢血清型是O20 和O26。而本研究發(fā)現(xiàn),濮陽市犢牛致病性大腸桿菌優(yōu)勢血清型為O38(17.2%)、O101(18.4%)和O142(14.9%)。因此,各地應(yīng)根據(jù)當(dāng)?shù)氐膬?yōu)勢血清型研制相應(yīng)血清型的疫苗,如濮陽市可以研制O38、O101 和O142血清型多價疫苗。本研究為研制該地區(qū)犢牛腹瀉性大腸桿菌疫苗提供了參考。

        研究[8-9]表明,細(xì)菌生物被膜可以抵抗外界不利環(huán)境因素,其形成是細(xì)菌的一種自我保護(hù)機(jī)制。本研究發(fā)現(xiàn),分離的87 株致病性大腸桿菌中,膜形成能力強(qiáng)的 24 株,中等的34 株,占66.7%。張召興等[13]報道,河北省蛋雞源大腸桿菌具有生物被膜形成能力;麻海瀾等[18]報道,內(nèi)蒙古地區(qū)犢牛源大腸桿菌具有生物被膜形成能力。綜合上述報道與本研究結(jié)果,說明各地的致病性大腸桿菌外界生存能力均較強(qiáng)。因此,在養(yǎng)殖過程中,對于環(huán)境消毒,可考慮不同種類消毒藥交替使用,以減少環(huán)境中大腸桿菌對消毒藥的耐藥性。

        在臨床防治大腸桿菌病過程中,不合理使用抗菌藥物現(xiàn)象較多,導(dǎo)致大腸桿菌出現(xiàn)較強(qiáng)的耐藥性,且耐藥性在不同菌株之間傳播,導(dǎo)致大腸桿菌耐藥性加重[4-5]。麻海瀾等[18]報道,內(nèi)蒙古地區(qū)分離的51 株犢牛源大腸桿菌對甲氧芐啶、磺胺嘧啶、氨芐西林等20 種藥物產(chǎn)生耐藥性;高海慧等[11]報道,寧夏地區(qū)犢牛腹瀉大腸桿菌的耐藥率高,多重耐藥普遍,耐藥現(xiàn)象嚴(yán)重;石凱元等[21]報道,湘西北地區(qū)某肉牛養(yǎng)殖場犢牛腹瀉性大腸桿菌對22種藥物產(chǎn)生了耐藥性。本研究發(fā)現(xiàn),分離的87 株致病性大腸桿菌對阿莫西林、氨芐西林、鏈霉素等10 種藥物的耐藥率較高,均在49.4%以上。上述研究結(jié)果說明,犢牛腹瀉性大腸桿菌耐藥性普遍,應(yīng)該引起重視。不同地區(qū)的大腸桿菌耐藥譜并不相同,這可能與不同地區(qū)使用的抗生素種類不同有關(guān)。因此,在臨床治療犢牛腹瀉大腸桿菌病過程中應(yīng)注意抗生素的合理使用,結(jié)合藥敏試驗科學(xué)用藥。

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