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        外源物質(zhì)對(duì)高溫脅迫下平貝母生理生化的影響

        2022-12-05 05:48:18劉思佳何錄文孟祥才
        關(guān)鍵詞:植物

        劉思佳,李 波,宋 雪,沈 瑩,何錄文,孟祥才

        (黑龍江中醫(yī)藥大學(xué) 藥學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150040)

        平貝母Fritillaria ussuriensisMaxim.為百合科多年生草本植物,其干燥鱗莖為我國東北三省道地藥材,具有清熱潤肺、化痰止咳的功效,用于肺熱燥咳、干咳少痰、陰虛勞嗽、咳痰帶血等癥的治療。平貝母屬早春植物,每年在土壤解凍后立即開始迅速生長,當(dāng)5月下旬氣溫到達(dá)20℃以上時(shí)開始枯萎,地上部分生長期不足60 d,地上部分生長發(fā)育期很短。平貝母的生長習(xí)性比較獨(dú)特,喜冷怕熱,高溫脅迫會(huì)對(duì)平貝母的生長發(fā)育造成不可逆轉(zhuǎn)的損傷[1],大大降低了平貝母的產(chǎn)量。植物產(chǎn)量來源于光合作用,減少逆境危害對(duì)平貝母高產(chǎn)具有重要影響。外源物質(zhì)如SA[2]、BR[3]、6-BA[4]及Ca2+(CaCl2)[5]能夠誘導(dǎo)植物體發(fā)生一系列生理生化反應(yīng),能夠緩解高溫脅迫對(duì)植物造成的損傷,增強(qiáng)植物對(duì)逆境的適應(yīng)能力。因此探究外源物質(zhì)對(duì)高溫脅迫下平貝母的凈光合速率和生理生化的影響,對(duì)提高栽培產(chǎn)量具有重要意義。

        1 材料、儀器與試劑

        1.1 材料

        實(shí)驗(yàn)于2019年在黑龍江省哈爾濱市通河縣清河鎮(zhèn)五七干校平貝母種植基地進(jìn)行。試驗(yàn)對(duì)象為6年生平貝母Fritillaria ussuriensisMaxim.選取植株長勢(shì)良好、大小一致者作為實(shí)驗(yàn)材料。

        1.2 儀器

        UV-1240型紫外分光光度儀(日本島津公司);CI-340型便攜式光合測定儀(美國 CID Bio-Science公司);TOLEDO AG135型電子分析天平(瑞士METTLER公司);KDC-160HR型高速低溫離心機(jī)(科大創(chuàng)新股份有限公司);Julabo TW20型數(shù)顯恒溫水浴鍋(德國Julabo有限公司)。

        1.3 試劑

        6-芐氨基嘌呤、水楊酸(天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司);蕓苔素內(nèi)酯(河南中浪農(nóng)業(yè)科技有限公司);CaCl2、NaH2PO4·2H2O、丙酮、Na2HPO4·12H2O(北京化工廠);甲硫氨酸(MET)(上海士鋒生物科技有限公司);氮藍(lán)四唑(NBT)(上海靜融生物科技有限公司);核黃素(北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司);EDTA-Na2(上海正極生物科技有限公司);愈創(chuàng)木酚、硫代巴比妥酸(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);30%H2O2(天津市東麗區(qū)天大化學(xué)試劑廠);三氯乙酸(上海凌峰化學(xué)試劑有限公司);農(nóng)用有機(jī)硅助劑(青島綠隴作物營養(yǎng)有限公司)。

        2 方法

        2.1 田間試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        根據(jù)文獻(xiàn)或生長調(diào)節(jié)劑使用說明書確定平貝母葉面最佳的噴施濃度。于2019年5月18日18:00葉面施用水楊酸(SA)、CaCl2、蕓苔素內(nèi)酯(BR)、6-芐氨基嘌呤(6-BA),使葉片上下均沾滿液體。實(shí)驗(yàn)分為SA(0.2 mmol/L)處理組、CaCl2(10 mmol/L)處理組、BR(0.01%蕓苔素內(nèi)酯乳油1 750倍液)處理組、6-BA(20 μmol/L)處理組和對(duì)照組(蒸餾水)。每組處理1 m×1 m,三次重復(fù)。5月20日—21日各組覆蓋塑料拱棚,棚內(nèi)溫度最高溫度30℃左右。各組分別于5月18日、5月20日、5月22日、5月24日17:00左右采集6年生平貝母植株中部葉片10片,共隨機(jī)采集15株,將各組分別切碎混勻,用封口袋密封,于-40℃冰箱備存,測定各組生理生化指標(biāo)。

        2.2 生理生化指標(biāo)測定

        2.2.2 H2O2含量測定 采用南京建成過氧化氫測定試劑盒(A064)(比色法)測定。

        2.2.3 SOD活性測定 測定采用氮藍(lán)四唑NBT法,參照李合生[6]的方法。

        2.2.4 POD活性測定 測定采用愈創(chuàng)木酚法,參照李合生[6]的方法。

        2.2.5 CAT活性測定 測定紫外吸收法,參照李合生[6]的方法。

        2.2.6 MDA含量測定 采用南京建成植物MAD測定試劑盒(A003-3-1)(微板法)測定。

        2.2.7 葉綠素含量測定 采用南京建成葉綠素測試盒(A147-1-1)(比色法)測定。

        2.3 光合作用測定

        于2019年5月20日使用便攜式光合測定儀CI-340分別于7:00、9:00、11:00、13:00、15:00、17:00時(shí)間點(diǎn)測定各組6年生平貝母20 cm高度處葉片的凈光合速率,每一組測定4株平貝母。

        3 結(jié)果

        3.1 外源物質(zhì)對(duì)高溫下平貝母·、H2O2含量的影響

        圖1 不同處理組·O2-和H2O2含量變化 (n = 3)Fig. 1 Changes of · and H2O2 contents in different treatment groups(n = 3)

        3.2 外源物質(zhì)對(duì)高溫下平貝母抗氧化酶系統(tǒng)的影響

        三種抗氧化酶的活性較對(duì)照組均有升高的趨勢(shì)。除5月20日6-BA處理組外,各處理組各時(shí)間點(diǎn)SOD活性均高于對(duì)照組,其中,CaCl2、BR處理組分別在5月22日、24日及5月20日、24日有明顯提升,其余各組與對(duì)照組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。其中CaCl2處理組提升最高,在5月22日、24日分別高于對(duì)照組18.5%(P<0.05)、35.7%(P<0.01)。

        除5月20日CaCl2處理組及5月22日、5月24日BR處理組CAT活性較對(duì)照組略有下降外,其余處理組略高于對(duì)照組,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        各處理組POD活性均高于對(duì)照組。SA處理組效果最為明顯,脅迫開始5 d內(nèi)的平均值分別高于對(duì)照組17.5%(P<0.05)、31.3%(P<0.01)和67.1% (P<0.01);CaCl2處理組提升效果僅次于SA處理組,其在5月20日與對(duì)照組相比雖有提高但并不明顯,在5月22日、24日分別高于對(duì)照組25.1% (P<0.01)、60.9%(P<0.01);BR、6-BA處理組僅在5月24日較對(duì)照組有明顯提高,分別高于對(duì)照組22.3%(P<0.05)、37.6%(P<0.01),見圖2。

        圖2 不同處理組抗氧化酶(SOD、POD)活性 (n = 3)Fig. 2 Activities of anti-oxidant enzymes (SOD,POD)in different treatment groups (n = 3)

        3.3 外源物質(zhì)對(duì)高溫下平貝母葉綠素、MDA含量的影響

        除SA處理組和5月24日BR處理組葉綠素a、b含量略高于對(duì)照組外,各處理組均略低于對(duì)照組,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        與對(duì)照組相比各處理組均降低了平貝母葉片的MDA含量。除5月20日、24日CaCl2處 理組及5月22日6-BA處理組外,其余處理組各時(shí)間較對(duì)照組均有明顯降低。SA、CaCl2、BR、6-BA處理組各天葉片的MDA含量的平均值比對(duì)照組降低了22.8%(P<0.01)、14.4%(P<0.05)、27.9%(P< 0.01)和18.3%(P<0.01),見圖3。

        圖3 不同處理組丙二醛含量變化 (n = 3)Fig. 3 Changes of chlorophyll and malondialdehyde contents in different treatment groups (n = 3)

        3.4 外源物質(zhì)對(duì)高溫下平貝母光合速率的影響

        平貝母各處理組各時(shí)間點(diǎn)的光合速率較對(duì)照組均有增加,除9:00、11:00、15:00時(shí)SA處理組凈光合速率明顯大于對(duì)照組,分別比對(duì)照組增加了23.6%(P<0.05)、33.7%(P<0.05)、20.4%(P<0.05),其余各組雖有增加但并不明顯。SA、CaCl2、BR、6-BA處理組各時(shí)間點(diǎn)的平均凈光合速率分別比對(duì)照組增加了24.9%(P<0.05)、11.7%(P>0.05)、19.0%(P>0.05)、10.2%(P>0.05),見圖4。通過噴施外源性植物生長調(diào)節(jié)劑SA、BR、6-BA及Ca2+提高了平貝母的高溫強(qiáng)光天氣下的凈光合速率,以0.2 mmol/L SA效果最佳。

        圖4 各處理組凈光合速率日變化 (n = 4)Fig. 4 Diurnal variation of net photosynthetic rate in each treatment group (n = 4)

        4 討論

        植物在逆境條件下產(chǎn)生大量的活性氧[7],而活性氧是造成植物細(xì)胞傷害或致死的主要原因[8]?!ぁ2O2、·OH等活性氧破壞DNA和蛋白質(zhì)等決定生命活動(dòng)的大分子結(jié)構(gòu)以及生物膜。植物體為了提高對(duì)環(huán)境的適應(yīng)能力,進(jìn)化出了活性氧的清除系統(tǒng),高溫脅迫會(huì)引其起植物細(xì)胞的應(yīng)激反應(yīng),激活抗氧化系統(tǒng),及時(shí)清除活性氧,從而能夠較好適應(yīng)高溫環(huán)境。SOD是植物活性氧清除系統(tǒng)的第一道防線,·的活性遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于H2O2,SOD通過歧化反應(yīng)將超氧自由基·轉(zhuǎn)化為H2O2和O2,大大減輕活性氧對(duì)細(xì)胞的傷害。CAT和POD是植物體內(nèi)清除H2O2的專一酶,可直接將H2O2徹底分解成無毒害的H2O和O2,消除活性氧自由基對(duì)植物造成的細(xì)胞傷害[9]?;钚匝蹩墒鼓ぶ胁伙柡椭舅徇^氧化為MDA[10],MDA就是細(xì)胞膜系統(tǒng)受害程度的重要指標(biāo)之一[11]。大量研究表明,逆境脅迫下植物體保護(hù)酶活性越高,其對(duì)活性氧的清除能力就越強(qiáng),植物的抗逆性也越強(qiáng)。

        4.1 施用外源SA對(duì)高溫下平貝母的影響

        SA是提高植物抗逆性的信號(hào)分子[12]。關(guān)于SA誘導(dǎo)植物抗高溫的機(jī)理主要是增加膜保護(hù)物質(zhì)(膜保護(hù)酶和抗氧化物質(zhì))、減少活性氧[13],誘導(dǎo)抗逆基因表達(dá)或通過脫落酸(ABA)來調(diào)節(jié)抗逆基因表達(dá)[14]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示施用植物生長調(diào)節(jié)劑SA可大幅增加平貝母葉片抗氧化酶SOD、CAT、POD活性,分別提高了3.8%、13.3%和38.6%,·與H2O2含量分別降低了16.14%和34.68%,葉片MDA的含量降低了22.8%,增強(qiáng)了平貝母對(duì)高溫的耐受性,從而使其凈光合速率提高24.9%。

        4.2 施用外源BR對(duì)高溫下平貝母的影響

        BR是廣譜高效的植物生長調(diào)節(jié)劑,能夠提高1,5-二磷酸核酮糖羧化酶的活性,提高植物對(duì)多種逆境的抗性。施用BR可明顯提高熱敏型水稻品種的葉片葉綠素及蛋白質(zhì)含量、SOD和POD活性,降低葉片MDA含量、電解質(zhì)外滲率[15],脯氨酸和可溶性蛋白含量,降低了丙二醛含量,增加了凈光合速率[16]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示施用植物生長調(diào)節(jié)劑BR使平貝母葉片SOD、CAT、POD活性分別提 高13.8%、0.97%和9.8%,·與H2O2分別降低11.29%和17.32%,MDA含量降低27.9%,保護(hù)葉片細(xì)胞不被高溫破壞,從而使其凈光合速率提高11.7%。

        4.3 施用外源Ca2+對(duì)高溫下平貝母的影響

        Ca2+是細(xì)胞內(nèi)的第二信使,雖然不是植物激素,但可以通過調(diào)控SA誘導(dǎo)植物的耐熱性。外源SA可通過提高SOD和CAT活性,降低MDA含量來提高葡萄幼苗的耐熱性,促進(jìn)SA對(duì)葡萄幼苗耐熱性的誘導(dǎo)[17]。用CaCl2和SA + CaCl2藥劑噴施柑橘,各處理組均較高溫條件下對(duì)照組光合速率增加,SA與CaCl2具有相互促進(jìn)效應(yīng)[18]。本研究顯示施用植物生長調(diào)節(jié)劑Ca2+與施加SA效果相似,均可增加平貝母葉片抗氧化酶SOD、CAT、POD活性,分別提高19.3%、1.4%和30%,·與H2O2分別降低了5.0%和22.0%,降低葉片MDA的含量降低14.4%,提高平貝母的耐熱性,凈光合速率提高10.2%,但其凈光合速率的增長效果低于SA。

        4.4 施用外源6-BA對(duì)高溫下平貝母的影響

        6-BA是人工合成的細(xì)胞分裂素,能夠提高玉米的1,5-二磷酸核酮糖羧化酶和丙酮酸磷酸雙激酶活性及葉綠素含量[19];明顯提高了高溫脅迫下甜椒幼苗對(duì)光強(qiáng)的利用率,從而増加了生物量,促進(jìn)葉綠素的合成,降低·的產(chǎn)率及MDA的積累[20];使高溫脅迫下的微型月季葉片中的SOD、POD和APX活性及蛋白質(zhì)和游離脯氨酸含量明顯提高,相對(duì)電導(dǎo)率及MDA含量明顯降低[4]。此外6-BA還有緩解葉片衰老的作用[21]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示施用植物生長調(diào)節(jié)劑6-BA分別提高平貝母葉片SOD、CAT、POD活性1.5%、5.6%、17.6%,·與H2O2的含量分別降低了14.7%、28.5%,減少了活性氧自由基對(duì)平貝母葉片細(xì)胞的傷害,使凈光合速率增加19.0%。

        平貝母為早春植物,土壤解凍后立即萌發(fā),夏季來臨前枯萎,地上部分生長僅50余天,極不耐高溫。對(duì)于北方來說,春季氣溫波動(dòng)較大,每年在此期間都會(huì)出現(xiàn)30℃的高溫,加速葉片衰老,對(duì)平貝母產(chǎn)量造成影響。然而,高溫出現(xiàn)早晚不同對(duì)平貝母生長的影響也不同。早期高溫一旦對(duì)葉片生理造成損害,將影響整個(gè)生長發(fā)育期,而晚期影響較小,高溫對(duì)產(chǎn)量的影響具有很大的不確定性。基于此,采用凈光合速率間接評(píng)價(jià)對(duì)產(chǎn)量的影響更具有參考意義。

        5 結(jié)論

        施用外源SA、BR、6-BA及Ca2+,能夠提高高溫強(qiáng)光下平貝母抗氧化酶SOD、CAT、POD的活性;減少活性氧·、H2O2的含量;降低活性氧對(duì)植物細(xì)胞的傷害程度(MDA含量降低);增強(qiáng)平貝母葉片對(duì)高溫的耐受性,使平貝母凈光合速率較對(duì)照組有明顯增加。以葉面噴施0.2 mmol/L SA效果最佳。外源SA無毒廉價(jià),在平貝母生長期中后期高溫來臨前葉面施用,可增加平貝母的高溫抗性,維持葉片的功能性,可作為提高平貝母產(chǎn)量的一項(xiàng)重要措施。

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