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        蘋(píng)果短鏈脫氫酶基因MdSDR響應(yīng)腐爛病菌侵染的功能研究

        2022-10-29 02:56:30王帥樂(lè)肖珂雨王維東黃麗麗
        核農(nóng)學(xué)報(bào) 2022年11期
        關(guān)鍵詞:脂滴培苗脂肪酸

        王帥樂(lè) 肖珂雨 王維東 黃麗麗

        (西北農(nóng)林科技大學(xué)旱區(qū)作物逆境生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/植物保護(hù)學(xué)院, 陜西 楊凌 712100)

        短鏈脫氫/還原酶(short-chain dehydrogenases/reductase, SDR)是一類(lèi)NAD(P)(H)依賴(lài)的氧化還原酶,負(fù)責(zé)催化生物體內(nèi)的氧化還原反應(yīng)[1-3]。SDR在高等植物中分布廣泛[4],主要參與生物堿、萜類(lèi)、酚類(lèi)物質(zhì)和激素等多種次級(jí)代謝途徑,增強(qiáng)了植物對(duì)細(xì)菌、真菌、病毒、動(dòng)物和昆蟲(chóng)等生物脅迫以及非生物脅迫的適應(yīng)能力,并且在植物傳粉、種子傳播和種間競(jìng)爭(zhēng)中發(fā)揮重要作用[1,5-8]。同時(shí),SDR也參與多種初級(jí)代謝,維持植物正常的生長(zhǎng)發(fā)育。例如,在葉綠素的合成途徑中,SDR家族的原葉綠體氧化還原酶(protochloropyllide oxidoreductase, POR)能將原葉綠素轉(zhuǎn)化為葉綠素[9-10];在脂肪酸合成途徑中,SDR家族的β-酮脂酰-ACP還原酶(β-ketoacyl-ACP reductase, KAR)和烯脂酰-ACP還原酶(enoyl-ACP reductase, ENR)能催化還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADPH)和還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(reduced nicotinamide adenine dinucleotide,NADH)依賴(lài)的兩個(gè)還原步驟,是植物脂肪酸生物合成的兩種關(guān)鍵酶[11-12]。

        脂肪酸是細(xì)胞膜、栓質(zhì)和角質(zhì)蠟的關(guān)鍵成分,為植物抵御環(huán)境脅迫提供了物理屏障[13-14]。植物能通過(guò)改變不飽和脂肪酸的含量來(lái)調(diào)節(jié)膜的流動(dòng)性,從而維持適合關(guān)鍵整合蛋白(integral protein)發(fā)揮功能的環(huán)境[15-16]。例如,在高溫脅迫環(huán)境下,野生型煙草葉綠體中的光合蛋白出現(xiàn)熱變性和光合效率下降。而三元脂肪酸(trienoic fatty acids,TAs)表達(dá)被抑制的轉(zhuǎn)基因植株中,未檢測(cè)到光合蛋白熱變性,其光合效率降幅較小[17]。另外,脂肪酸也參與病原脅迫響應(yīng)。研究發(fā)現(xiàn),游離亞麻酸既是一種脅迫信號(hào)分子,也是植物氧化脂質(zhì)(如茉莉酸)生物合成的前體[18-19]。許多研究也證明,葉綠體油酸(oleic acid, OA)和壬二酸(azelaic acid, AZA)水平對(duì)擬南芥的生物脅迫響應(yīng)至關(guān)重要,可以引發(fā)細(xì)胞程序性死亡(programmed cell death,PCD)和激發(fā)系統(tǒng)獲得性抗性(systemic acquired resistance,SAR)[20-21]。另外,植物葉片中脂肪酸的積累能刺激植物脂滴(lipid droplets,LDs)的產(chǎn)生。而脂滴在植物脅迫應(yīng)答、激素信號(hào)途徑和植物生長(zhǎng)發(fā)育中起重要作用[22-23]。例如,脂滴表面的油體鈣蛋白caleosin和油體固醇蛋白steroleosin等蛋白具有酶活性,其中caleosin具有過(guò)氧化酶活性,可以將α-亞麻酸衍生物轉(zhuǎn)化為各種氧化脂類(lèi)植保素;steroleosin是一種甾醇脫氫酶,可以將甾醇底物轉(zhuǎn)化為油菜素類(lèi)固醇(brassinosteroids,BRs),從而調(diào)控生長(zhǎng)發(fā)育和脅迫響應(yīng)[24-25]。上述研究結(jié)果均表明,脂肪酸在植物抵抗生物脅迫中發(fā)揮著重要的作用。

        在蘋(píng)果(Malusdomestica)中,目前關(guān)于SDR基因功能的研究仍鮮有報(bào)道。西北農(nóng)林科技大學(xué)果樹(shù)病害病原生物學(xué)及綜合防治團(tuán)隊(duì)前期以富士蘋(píng)果cDNA為模板克隆獲得MdSDR基因編碼區(qū)(coding sequence,CDS)全長(zhǎng)序列,并通過(guò)預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn)其可能與脂肪酸的合成有關(guān)[26]。為了驗(yàn)證MdSDR蛋白是否參與脂肪酸的合成和調(diào)控植物免疫,本研究通過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時(shí)表達(dá)技術(shù)及實(shí)時(shí)熒光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)技術(shù)探究蘋(píng)果MdSDR對(duì)脂肪酸合成中關(guān)鍵基因表達(dá)的影響,揭示MdSDR在脂肪酸合成中的重要作用,并利用蘋(píng)果瞬時(shí)表達(dá)技術(shù)探究MdSDR對(duì)蘋(píng)果樹(shù)腐爛病菌侵染的影響,初步研究其抗逆功能和作用機(jī)理,旨在為蘋(píng)果抗性品種的研究提供一定的理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 植物材料

        嘎啦蘋(píng)果組培苗(Malusdomesticcv.Royal gala)由西北農(nóng)林科技大學(xué)園藝學(xué)院李明軍教授實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)。組織培養(yǎng)植株生長(zhǎng)于MS培養(yǎng)基中,培養(yǎng)基配方為:4.43 g·L-1MS+30 g·L-1蔗糖+8 g·L-1瓊脂+0.3 mg·L-16-芐氨基嘌呤+0.2 mg·L-1吲哚-3-乙酸,pH值為5.8;組培苗置于人工智能氣候箱(RXZ-500-D-PED,寧波江南儀器廠)內(nèi)培養(yǎng),培養(yǎng)條件為:溫度 25℃,光照16 h/黑暗8 h,光照度6 400 Lx,相對(duì)濕度60%。每15 d更換一次培養(yǎng)基。

        1.2 菌株和質(zhì)粒載體

        大腸桿菌DH5α、農(nóng)桿菌GV3101及載體pCAMBIA1302均購(gòu)自北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司;蘋(píng)果腐爛病菌03-8(Valsamali)保存于西北農(nóng)林科技大學(xué)。

        1.3 植物表達(dá)載體的構(gòu)建

        以富士蘋(píng)果mRNA反轉(zhuǎn)錄合成的cDNA為模板,利用特異性引物MdSDR-F、MdSDR-R對(duì)MdSDR基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增,采用快捷型瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒II(DP1722,Bioteke,北京)對(duì)目的基因條帶進(jìn)行回收。將回收產(chǎn)物與線性化載體pCAMBIA1302連接構(gòu)建重組質(zhì)粒pCAMBIA1302-MdSDR。熱激法轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,進(jìn)行卡那霉素抗性篩選及菌落PCR驗(yàn)證后提取質(zhì)粒送至上海生工生物工程股份有限公司測(cè)序。將測(cè)序重組質(zhì)粒及空載體(對(duì)照)分別電擊轉(zhuǎn)化至農(nóng)桿菌GV3101,卡那霉素抗性篩選及菌落PCR驗(yàn)證后于-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.4 農(nóng)桿菌介導(dǎo)的蘋(píng)果組培苗瞬時(shí)轉(zhuǎn)化

        用含50 μg·mL-1卡那霉素及50 μg·mL-1利福平的YEP培養(yǎng)基,以28℃、200 r·min-1的條件培養(yǎng)含有pCAMBIA1302-MdSDR和pCAMBIA1302表達(dá)載體的農(nóng)桿菌16 h,6 000 r·min-1離心10 min收集菌體,用0.01 mol·L-1的MgCl2溶液清洗2次,最終用含100 μmol·L-1乙酰丁香酮及10 μmol·L-12-嗎啉乙磺酸(4-morpholineethanesulfonic acid,MES)的MgCl2溶液重懸菌體,使其OD600值為1。挑選健康、長(zhǎng)勢(shì)相近的4周齡組培苗若干,使用真空滲透的方法[26]對(duì)其進(jìn)行瞬時(shí)轉(zhuǎn)化,轉(zhuǎn)化后的組培苗培養(yǎng)條件與1.1中的組培條件相同。

        1.5 蘋(píng)果總RNA提取及cDNA的合成

        組培苗瞬時(shí)表達(dá)48 h后隨機(jī)選取葉片樣品進(jìn)行蘋(píng)果總RNA的提取,提取方法參照快速通用植物RNA提取試劑盒說(shuō)明書(shū)(0416-50gk,北京華越洋生物有限公司),提取完成后對(duì)其濃度進(jìn)行測(cè)定,于-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。cDNA的合成參照High Capacity cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒說(shuō)明書(shū)(4368813,Thermo Fisher scientific,美國(guó))進(jìn)行,反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物于-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.6 實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析

        在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中找到MdβCT、MdACCase、MdKAR、MdKASⅠ、MdKASⅡ、MdHAD、MdENR等與蘋(píng)果脂肪酸合成相關(guān)的基因序列以及與植物脂滴調(diào)控相關(guān)基因MdSEIPIN[27-28],并以MdEF-1α為內(nèi)參基因[29]。使用Primier 5軟件對(duì)上述基因進(jìn)行引物設(shè)計(jì)(表1)。

        表1 引物序列

        利用PCR技術(shù)檢測(cè)上述引物的特異性,PCR反應(yīng)體系為20 μL:10 μL 2×Taq MasterMix、上下游引物各0.5 μL、1 μL cDNA、8 μL ddH2O。反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán)。

        基因相對(duì)表達(dá)水平測(cè)定:按照2×SYBR?Green PCR Master Mix(A311-10,北京康潤(rùn)誠(chéng)業(yè)生物科技有限公司)說(shuō)明書(shū)配制qRT-PCR反應(yīng)體系,每個(gè)樣品設(shè)3個(gè)重復(fù)。qRT-PCR反應(yīng)體系為20 μL:10 μL 2×RealStar Green Power Mixture、10 μmol·L-1正反向引物各0.5 μL、1.5 μL cDNA、7.5 μL ddH2O。使用羅氏LightCycler96實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀,反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性10 s,58℃退火30 s,72℃延伸30 s,45個(gè)循環(huán);熔解反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃ 10 s,65℃ 60 s,97℃ 1 s。

        1.7 真菌活化與侵染試驗(yàn)

        將蘋(píng)果腐爛病菌(V.mali)在馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar, PDA)培養(yǎng)基上活化,于25℃條件下培養(yǎng)3 d。組培苗瞬時(shí)轉(zhuǎn)化48 h后取葉片刺傷接種V.mali。將葉柄插入水瓊脂中保濕,25℃共培養(yǎng)36 h左右,拍照并用Image J軟件計(jì)算病斑直徑,重復(fù)3次。使用GraphPad Prism 9作圖并用SPSS 26.0進(jìn)行t測(cè)驗(yàn)分析。為了減少試驗(yàn)誤差,每次重復(fù)使用至少30個(gè)葉片,取自長(zhǎng)勢(shì)相似的組培苗。

        1.8 蘋(píng)果葉片脂肪酸含量的測(cè)定

        組培苗瞬時(shí)表達(dá)48 h后取葉片樣品,液氮速凍后用干冰保存運(yùn)輸,送至西安邁維代謝生物科技有限公司進(jìn)行脂肪酸含量及種類(lèi)的測(cè)定。處理組與對(duì)照組各做3次重復(fù),使用GraphPad Prism 9作圖并用SPSS 26.0進(jìn)行t測(cè)驗(yàn)分析。

        1.9 蘋(píng)果葉片中脂滴的染色觀察

        尼羅紅(HY-D0718,MedChemExpress, 美國(guó))在緩沖液中稀釋至200 mmol·L-1,pH值為7。將組培苗瞬時(shí)表達(dá)48 h后取葉片樣品,在尼羅紅染液中37℃避光孵育5~10 min,洗去染色液后制片。用FV3000激光共聚焦掃描顯微鏡(奧林巴斯,日本)觀察,由488 nm激發(fā),在500~540 nm光譜下收集信號(hào)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 蘋(píng)果葉片抗病性檢測(cè)

        為了探究MdSDR蛋白在植物抗生物脅迫中的作用,在蘋(píng)果組培苗葉片中瞬時(shí)表達(dá)MdSDR基因后接種V.mali,檢測(cè)病斑變化情況。結(jié)果顯示,過(guò)表達(dá)MdSDR的蘋(píng)果葉片的病斑明顯小于對(duì)照(圖1-A)。平均病斑直徑統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示,過(guò)表達(dá)MdSDR的蘋(píng)果葉片的病斑直徑顯著小于(P<0.001)對(duì)照(約14.46%)(圖1-B),表明過(guò)表達(dá)MdSDR提高了蘋(píng)果葉片對(duì)V.mali的抗病性。

        注:A:V. mail.侵染蘋(píng)果葉片36 h后的葉片表型;B:V. mail.侵染蘋(píng)果葉片36 h后的平均病斑直徑。***表示在P<0.001水平差異顯著。

        2.2 脂肪酸合成相關(guān)關(guān)鍵基因的表達(dá)水平檢測(cè)

        為了探究MdSDR對(duì)植物脂肪酸合成的影響,對(duì)脂肪酸合成通路關(guān)鍵酶編碼基因的表達(dá)水平進(jìn)行了檢測(cè)。與對(duì)照相比,瞬時(shí)過(guò)表達(dá)MdSDR蘋(píng)果葉片中脂肪酸從頭合成通路中的相關(guān)基因全部顯著上調(diào)表達(dá),其中MdACCase、MdKAR和MdENR上調(diào)幅度較大,MdACCase上調(diào)48.41倍,MdKAR上調(diào)129.79倍,MdENR上調(diào)168.20倍。MdβCT、MdKASⅠ、MdKASⅡ和MdHAD均呈現(xiàn)出上調(diào)表達(dá)的趨勢(shì),其中MdβCT、MdKASⅠ和MdKASⅡ均上調(diào)約5倍,MdHAD上調(diào)8.67倍(圖2)。上述結(jié)果表明,MdSDR蛋白參與調(diào)控脂肪酸的生物合成。

        注:***表示在P<0.001水平差異顯著;****表示在P<0.000 1水平差異顯著。

        2.3 蘋(píng)果葉片脂肪酸含量測(cè)定

        為了探究過(guò)表達(dá)MdSDR對(duì)植物葉片中脂肪酸積累水平的影響,對(duì)蘋(píng)果葉片中的脂肪酸含量進(jìn)行了測(cè)定。通過(guò)對(duì)試驗(yàn)組與對(duì)照組數(shù)據(jù)進(jìn)行差異顯著性分析,發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)MdSDR的蘋(píng)果葉片中各種脂肪酸含量未發(fā)生顯著變化(P>0.05)(圖3)。

        圖3 脂肪酸相對(duì)含量

        2.4 脂滴合成關(guān)鍵基因的表達(dá)水平檢測(cè)

        為了驗(yàn)證上述推測(cè),過(guò)表達(dá)MdSDR后檢測(cè)了調(diào)控脂滴形成的關(guān)鍵基因MdSEIPIN的表達(dá)水平變化。結(jié)果顯示,瞬時(shí)表達(dá)MdSDR后,蘋(píng)果葉片中MdSEIPIN基因的表達(dá)水平顯著提高(圖4-A)(P<0.05),表明瞬時(shí)表達(dá)MdSDR促進(jìn)了脂滴的生物合成。Western Blot結(jié)果顯示,在瞬時(shí)表達(dá)MdSDR基因的蘋(píng)果組培苗葉片中檢測(cè)到MdSDR蛋白(圖4-B),表明通過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)瞬時(shí)表達(dá)技術(shù),MdSDR蛋白在蘋(píng)果組培苗葉片中成功表達(dá)。

        注:A:MdSEIPIN相對(duì)表達(dá)水平;B:MdSDR蛋白表達(dá)檢測(cè)。*表示在P<0.05水平差異顯著。

        2.5 蘋(píng)果葉片中脂滴的染色觀察

        本研究采用尼羅紅染色[30]觀察瞬時(shí)表達(dá)MdSDR的蘋(píng)果葉片樣品,結(jié)果顯示,瞬時(shí)表達(dá)MdSDR后的蘋(píng)果葉片出現(xiàn)大量的點(diǎn)狀綠色熒光(圖5-A),而在對(duì)照中并未發(fā)現(xiàn)有大量的點(diǎn)狀綠色熒光(圖5-B)。本試驗(yàn)過(guò)表達(dá)的MdSDR蛋白上融合有GFP標(biāo)簽,因此為了排除GFP熒光給試驗(yàn)帶來(lái)的干擾,單獨(dú)表達(dá)了MdSDR-GFP和GFP,觀察并未發(fā)現(xiàn)點(diǎn)狀綠色熒光(圖5-C、D)。綜上所述,瞬時(shí)表達(dá)MdSDR促進(jìn)了脂滴的形成。

        注:脂滴被尼羅紅染色后激發(fā)出的熒光呈點(diǎn)分布。A:瞬時(shí)表達(dá)MdSDR-GFP后用尼羅紅染色的蘋(píng)果葉片;B:瞬時(shí)表達(dá)GFP后用尼羅紅染色的蘋(píng)果葉片;C:瞬時(shí)表達(dá)MdSDR-GFP后未染色的蘋(píng) 果葉片;D:瞬時(shí)表達(dá)GFP后未染色的蘋(píng)果葉片。

        3 討論

        短鏈脫氫/還原酶不僅可以參與調(diào)控植物初級(jí)代謝,如脂肪酸生物合成、葉綠素生物合成或降解,還可以參與調(diào)控植物的次級(jí)代謝,如萜類(lèi)、類(lèi)固醇、酚類(lèi)和生物堿的生物合成[31]。在脂肪酸生物合成的過(guò)程中,乙酰CoA的羧化反應(yīng)是脂肪酸合成通路的限速步驟,故乙酰CoA羧化酶(acetyl CoA carboxylase, ACCase)活性控制著脂肪酸的合成速度;在脂肪酸鏈延伸階段中,β-酮脂酰-ACP合酶(β-ketoacyl-ACP synthaseⅡ, KAS)能催化第一步的縮合反應(yīng);同時(shí),β-酮脂酰-ACP還原酶(β-ketoacyl-ACP reductase, KAR)和烯脂酰-ACP還原酶(enoyl-ACP reductase, ENR)負(fù)責(zé)催化其中兩步還原反應(yīng),即在還原型輔酶II NADPH的協(xié)助下,KAR催化β-酮丁?;摩?位羰基還原為羥基,ENR催化△2-烯丁?;摩?雙鍵還原為單鍵;而β-羥脂酰-ACP脫水酶(β-hydrdoxyacyl-ACP dehydrase, HAD)則負(fù)責(zé)催化β-羥丁酰基α、β-碳原子間的脫水反應(yīng)[32]。本研究發(fā)現(xiàn)瞬時(shí)過(guò)表達(dá)MdSDR后,蘋(píng)果中乙酰CoA羧化酶(MdACCase)基因、β-酮脂酰-ACP合酶(MdKAS)基因、β-酮脂酰-ACP還原酶(MdKAR)基因、烯脂酰-ACP還原酶(MdENR)基因的表達(dá)水平顯著上調(diào)(圖2)。上述結(jié)果表明,MdSDR能參與調(diào)控植物脂肪酸的生物合成過(guò)程,這與本實(shí)驗(yàn)室前期預(yù)測(cè)的結(jié)果[26]一致。

        已有研究表明脂肪酸能參與調(diào)控植物的免疫反應(yīng)[1,21]。例如茄子中棕櫚油酸的積累提高了植物對(duì)白粉病菌的抗病性[33];番茄中棕櫚油酸的積累增加了植物對(duì)黃萎病菌的抗病性[34];亞油酸和亞麻酸的積累會(huì)顯著提升鱷梨對(duì)炭疽病菌(Colletotrichumgloeosporioides)和番茄對(duì)丁香假單胞菌(Pseudomonassyringae)的抗病性[35-36];根際微生物誘導(dǎo)植物對(duì)灰霉病菌(Botrytiscinerea)的抗病性同樣與植物中亞油酸和亞麻酸積累水平密切相關(guān)[37]。本研究發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)MdSDR能夠提高蘋(píng)果對(duì)腐爛病菌的抗性(圖1),然而蘋(píng)果葉片中脂肪酸含量無(wú)顯著變化(圖3)(P>0.05)。因此推測(cè)MdSDR參與調(diào)控脂肪酸的生物合成,但并未通過(guò)增加脂肪酸含量來(lái)提高蘋(píng)果抗性。

        脂肪酸作為初級(jí)代謝產(chǎn)物,是生物體內(nèi)多種中性脂質(zhì)生物合成的前體。然而過(guò)高水平的脂肪酸會(huì)對(duì)細(xì)胞造成損傷[38]。因此生物體會(huì)通過(guò)多種途徑將脂肪酸轉(zhuǎn)化成中性脂質(zhì),例如脂肪酸能夠通過(guò)多步反應(yīng),最終在SEIPIN蛋白調(diào)控下形成了成熟的脂滴[28,30],保持了細(xì)胞內(nèi)的脂肪酸水平的穩(wěn)態(tài)[22,39]。

        脂滴是由富含膜蛋白的單層磷脂分子層包裹中性脂類(lèi)物質(zhì)組成的細(xì)胞器[40]。脂滴一般存在于種子等植物的營(yíng)養(yǎng)儲(chǔ)存器官中,為植物提供能量和參與植物生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控。葉片等光合組織中脂滴的數(shù)量通常遠(yuǎn)小于種子和花,但葉片脂滴能參與調(diào)控植物的非生物和生物脅迫響應(yīng)[23,39]。例如,脂滴相關(guān)蛋白(LD-associated protein,LDAP)能調(diào)控植物脂滴的產(chǎn)生。對(duì)擬南芥ldap1/ldap3雙敲除突變體的研究發(fā)現(xiàn),突變體植物比野生型更容易受到干旱脅迫的影響[41]。而過(guò)表達(dá)ldap基因的擬南芥顯著提高了對(duì)干旱脅迫的抗性,這說(shuō)明脂滴參與調(diào)控植物的干旱脅迫響應(yīng);另外兩種脂滴表面的雙加氧酶(dioxygenase)和caleosin能將α-亞麻酸轉(zhuǎn)化為氧化脂類(lèi)(oxylipin)植保素,從而作為一種信號(hào)分子觸發(fā)植物的超敏反應(yīng)(hypersensitive response, HR)[21,25]。這些研究均表明脂滴參與植物的非生物和生物脅迫響應(yīng)。本研究發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)MdSDR促進(jìn)了脂滴的產(chǎn)生(圖4、5),同時(shí)也提高了蘋(píng)果對(duì)病原菌的抗性(圖1)。因此推測(cè)MdSDR蛋白通過(guò)調(diào)控脂肪酸的生物合成間接提高了脂滴的積累水平,從而提高了蘋(píng)果對(duì)腐爛病菌的抗性,但脂滴提高蘋(píng)果抗病性的具體調(diào)控機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。

        4 結(jié)論

        本研究利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時(shí)轉(zhuǎn)化體系在蘋(píng)果組培苗中過(guò)表達(dá)MdSDR,檢測(cè)到蘋(píng)果葉片中脂滴數(shù)量增加,并且對(duì)V.mali的抗性顯著提高。初步證明MdSDR可以通過(guò)促進(jìn)脂肪酸的生物合成,間接提高葉片脂滴的水平,從而增加植物的抗病性。該研究為理解植物抵抗病原脅迫的途徑提供了新思路。

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