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        Epothilone D對體外培養(yǎng)的BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元興奮性突觸結(jié)構(gòu)的影響*

        2022-09-07 03:09:32陳永紅劉永峰蔚洪恩
        解剖學雜志 2022年3期
        關(guān)鍵詞:小鼠

        陳永紅 楊 樺# 劉永峰 雷 強 蔚洪恩△

        (山西醫(yī)科大學,1 第五臨床醫(yī)學院神經(jīng)內(nèi)科,2 基礎醫(yī)學院,太原 030012)

        孤獨癥譜系障礙(autism spectrum disorder,ASD)是一種神經(jīng)發(fā)育障礙性疾病,患病率呈逐年上升趨勢,其病因和發(fā)病機制尚未闡明。興奮性突觸的發(fā)育和功能是腦發(fā)育過程中的重要事件,研究表明突觸功能障礙參與了ASD的發(fā)病機制[1]。微管作為細胞骨架中最大的一種,參與調(diào)節(jié)神經(jīng)元和大腦發(fā)育的所有過程[2],微管的穩(wěn)定性對神經(jīng)元突觸發(fā)育起著重要作用[3-4]。研究表明ASD的發(fā)病與微管的穩(wěn)定性有著密切的聯(lián)系[5]。微管穩(wěn)定劑埃博霉素D(epothilone D,Epo D)具有促進微管蛋白聚合和微管裝配的作用,可以減輕STOP基因敲除小鼠的行為缺陷和改善突觸功能異常[6]。據(jù)此,本研究擬探討微管穩(wěn)定劑 Epo D對體外培養(yǎng)的ASD模型 BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元興奮性突觸結(jié)構(gòu)的影響及機制,以期為ASD的治療提供新的理論基礎和藥物靶標。

        1 材料和方法

        1.1 實驗動物和主要試劑

        BTBR小鼠(購自南京大學模式動物研究所,飼養(yǎng)于山西省人民醫(yī)院實驗動物中心);埃博霉素D(MedChemExpress公司);DMSO(索萊寶公司);Neurobasal培養(yǎng)液、DMEM高糖培養(yǎng)基、神經(jīng)生長因子B27、青霉素-鏈霉素、0.25%胰酶、胎牛血清及胎馬血清(美國Gibco公司);多聚-D-賴氨酸氨溴酸鹽(美國Sigma公司);SDS-PAGE凝膠制備試劑盒、BCA蛋白測定試劑盒(BOSTER公司);抗MAP2、STOP、α-tubulin、PSD95、GluN2B、mGluR5抗體(CST公司);抗acetyl-tubulin抗體(美國Sigma公司);抗VGLUT1抗體(Synaptic Systems公司);抗GADPH抗體(Bioworld公司);羊抗兔 IgG、羊抗鼠 IgG(EarthOx公司);FITC羊抗兔IgG(ABclonal公司)。

        1.2 BTBR小鼠原代皮質(zhì)神經(jīng)元細胞的分離培養(yǎng)

        取孕15~16 d孕鼠脫臼處死,無菌條件下快速取出胚胎置于解剖液中,在體視顯微鏡下解剖分離且剝除腦膜和血管,將大腦皮質(zhì)組織置于培養(yǎng)皿中,胰酶消化,吸管反復輕柔吹打組織團塊,用細胞篩分散成單細胞懸液,計數(shù)、鋪板,調(diào)節(jié)細胞濃度,取適量細胞接種于經(jīng)多聚賴氨酸包被的培養(yǎng)皿,放入37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),4 h后換液,培養(yǎng)液換成含B27、青霉素-鏈霉素和L-谷氨酰胺的無血清Neurobasal培養(yǎng)基,以后每3天半量換液,培養(yǎng)10~14 d。

        1.3 BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元免疫熒光染色及鑒定

        觀察神經(jīng)元的生長狀態(tài),培養(yǎng)至7 d皮質(zhì)神經(jīng)元已成熟,胞體飽滿,可用于鑒定。4%多聚甲醛固定30 min,0.2% Triton X-100 作用20 min,5%BSA封閉20 min,加入 抗MAP2抗體(1∶100)于4 ℃孵育過夜,次日加入FITC標記的熒光二抗(1∶100)于37 ℃避光孵育1 h,二抗孵育結(jié)束后,加入DAPI染液避光孵育15 min,抗熒光衰減劑封片,后共聚焦顯微鏡觀察并拍照。

        細胞純度計數(shù):高倍鏡下每張爬片隨機選取5個視野,進行免疫熒光陽性細胞計數(shù)。分別計數(shù)MAP2 陽性的神經(jīng)元細胞數(shù),以及經(jīng)DAPI染核的細胞總數(shù)。每個視野下細胞的純度=陽性細胞數(shù)/細胞總數(shù)×100 %。重復5次。

        1.4 微管穩(wěn)定劑Epo D藥物干預

        將培養(yǎng)至相對成熟(10 d)的皮質(zhì)神經(jīng)元隨機分為實驗組和溶劑對照組,實驗組給予10 nmol/L Epo D DMSO溶解、溶劑對照組給予相同體積的0.1% DMSO溶劑,于培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h后移除含藥物的條件培養(yǎng)基,用加熱的無血清培養(yǎng)基清洗3次,后評估微管形態(tài),檢測微管穩(wěn)定標志蛋白、微管相關(guān)蛋白、興奮性突觸結(jié)構(gòu)相關(guān)蛋白及興奮性谷氨酸受體蛋白的表達水平。

        1.5 微管穩(wěn)定性的形態(tài)學檢測

        對培養(yǎng)至10 d的小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元隨機分為實驗組、對照組各2組,分別經(jīng)10 nmol/L Epo D和相同體積的溶劑干預后,吸棄條件培養(yǎng)基,加熱的無血清培養(yǎng)基清洗3次。一組繼續(xù)保持于培養(yǎng)箱37℃,90 min,另一組給予 4℃冷處理90 min,后迅速細胞固定,進行兔抗α-tubulin抗體(1∶100)免疫熒光染色標記微管,倒置熒光顯微鏡下觀察微管形態(tài),考察神經(jīng)元在冷處理干預下的穩(wěn)定性,并比較微管穩(wěn)定劑Epo D干預后微管穩(wěn)定性的變化。

        1.6 免疫印跡檢測蛋白表達

        實驗組給予10 nmol/L Epo D、對照組給予相同體積溶劑干預24 h后,評估微管穩(wěn)定標志蛋白、微管相關(guān)蛋白、興奮性突觸結(jié)構(gòu)相關(guān)蛋白及興奮性谷氨酸受體蛋白的表達水平。后裂解細胞提取總蛋白,采用BCA法檢測蛋白濃度,每孔上樣40 μg蛋白質(zhì)行凝膠電泳,電泳完成后進行電轉(zhuǎn)將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%奶粉封閉,然后用一抗acetyltubulin(1∶5 000)、α-tubulin(1∶1 000)、MAP2(1∶1 000)、STOP(1∶750)、PSD95(1∶1 000)、VGLUT1(1∶4 000)、GluN2B(1∶1 000)、mGluR5(1∶1 000)、GAPDH(1∶10 000)孵育過夜,洗膜4次后二抗(1∶20 000)孵育l h,PVDF膜置于凝膠成像分析系統(tǒng)中,均勻滴加顯影劑,顯影。

        1.7 統(tǒng)計學處理

        使用Image J軟件、Graphpad Prism 8.0對免疫印跡圖像進行分析,所有實驗數(shù)據(jù)使用SPSS 22.0軟件分析,所有計量資料結(jié)果均以±s表示。兩組之間的差異性比較采用t檢驗,取a=0.05為檢驗水準,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 胎鼠皮質(zhì)神經(jīng)元原代培養(yǎng)形態(tài)學觀察

        倒置相差顯微鏡下觀察大腦皮質(zhì)神經(jīng)元生長形態(tài)變化(圖1),接種培養(yǎng)2 d后大部分神經(jīng)元伸出突起,胞體多呈錐形,細胞突起之間、突起與胞體之間開始形成少量連接(圖1A);培養(yǎng)至4 d可見大腦皮質(zhì)神經(jīng)元細胞體積變大,突起生長增多,胞體飽滿,細胞間形成疏散的神經(jīng)網(wǎng)絡結(jié)構(gòu)(圖1B);培養(yǎng)至5 d后,神經(jīng)元胞體變大,突起連接形成的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)也更加明顯(圖1C);培養(yǎng)至7 d神經(jīng)元突起分支明顯延長,胞體更加飽滿,形成緊密的神經(jīng)網(wǎng)絡(箭頭所示),大腦皮質(zhì)神經(jīng)元成熟,可用于后續(xù)實驗(圖1D)。

        圖1 倒置相差顯微鏡觀察,原代培養(yǎng)的BTBR胎鼠大腦皮質(zhì)神經(jīng)元2~7 d的形態(tài)學變化。紅色標尺=100 μm,白色標尺= 50 μm.

        2.2 皮質(zhì)神經(jīng)元免疫熒光染色及鑒定

        選取培養(yǎng)7 d的大腦皮質(zhì)神經(jīng)元進行免疫熒光染色鑒定(圖2),通過對神經(jīng)元特異性標志蛋白MAP2進行免疫熒光染色,共聚焦顯微鏡拍攝觀察染色結(jié)果。觀察可見,細胞經(jīng)MAP2特異性染色和DAPI非特異性染色后,細胞在顯微鏡下細胞體和突起呈現(xiàn)綠色熒光、細胞核呈現(xiàn)藍色熒光,藍色熒光的細胞核大部分位于綠色熒光的細胞體中央。計數(shù)結(jié)果顯示神經(jīng)元純度可達到70%以上,且生長狀態(tài)良好,可用于后續(xù)實驗。

        圖2 免疫熒光鑒定原代培養(yǎng)胎鼠大腦皮質(zhì)神經(jīng)元純度:MAP2(神經(jīng)元特異性標志蛋白)、DAPI非特異性標記細胞核。圖片中雜細胞細胞核較少,神經(jīng)元純度>70%。標尺=100 μm.

        2.3 微管穩(wěn)定性的形態(tài)學檢測

        結(jié)果顯示(圖3),在正常的皮質(zhì)神經(jīng)元細胞中,α-tubulin染色均勻地分布在神經(jīng)元胞體、突起中,當經(jīng)過低溫刺激后,顯示在Epo D組小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元細胞中微管能抵抗低溫刺激,α-tubulin染色未見明顯變化。相反,在溶劑對照組小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元細胞中,α-tubulin的均一性染色消失,神經(jīng)元突起中的微管結(jié)構(gòu)似乎斷裂成許多顆粒狀結(jié)構(gòu),出現(xiàn)廣泛的微管解體。

        圖3 BTBR胎鼠皮質(zhì)神經(jīng)元微管的形態(tài)變化,一組保持在37 ℃,另一組暴露在低溫(4 ℃,90 min)中。微管用α-tubulin(綠色)標記。標尺=50 μm.

        2.4 免疫印跡檢測相關(guān)蛋白表達

        2.4.1 微管穩(wěn)定的標志蛋白和微管相關(guān)蛋白的表達 結(jié)果顯示(圖4),與溶劑對照組相比,Epo D實驗組acetyl-tubulin、α-tubulin和STOP蛋白表達水平顯著升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,P<0.01)。MAP2蛋白差異無統(tǒng)計學意義。

        圖4 免疫印跡檢測Epo D干預后BTBR小鼠原代皮質(zhì)神經(jīng)元acetyl-tubulin、α-tubulin、STOP和MAP2蛋白的表達

        2.4.2 興奮性突觸結(jié)構(gòu)相關(guān)蛋白的表達 結(jié)果顯示(圖5),與溶劑對照組相比,Epo D實驗組PSD95蛋白表達水平升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01);VGLUT1蛋白表達差異無統(tǒng)計學意義。2.4.3 興奮性谷氨酸受體的表達 結(jié)果顯示(圖6),與溶劑對照組相比,Epo D實驗組GluN2B蛋白和mGluR5蛋白表達水平均升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

        圖5 免疫印跡檢測Epo D干預后BTBR小鼠原代皮質(zhì)神經(jīng)元突觸結(jié)構(gòu)相關(guān)蛋白PSD95和VGLUT1蛋白的表達

        圖6 免疫印跡檢測Epo D干預后BTBR小鼠原代皮質(zhì)神經(jīng)元興奮性谷氨酸受體GluN2B和mGluR5蛋白的表達

        3 討論

        ASD是一種神經(jīng)發(fā)育障礙性疾病,是自幼兒階段即表現(xiàn)出的基于2大領域的損害:持續(xù)的社會交流和社會交往障礙;限制性的興趣和重復行為,通常伴隨著感覺異常和語言發(fā)展的延遲或缺失[7]。ASD患者社會適應差,生活不能自理,需要終身照顧,給社會和家庭帶來巨大的經(jīng)濟和精神負擔。雖然遺傳和環(huán)境因素及其相互作用被普遍認為與ASD的發(fā)病有關(guān),但其確切的病因和發(fā)病機制仍不清楚,仍缺乏有效的治療方法和預防措施[8]。目前對ASD的研究大多基于整體動物模型。本研究以體外培養(yǎng)的ASD模型BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元為研究對象,通過給予微管穩(wěn)定劑Epo D對ASD可能的發(fā)病機制進行了初步探索。研究結(jié)果表明Epo D可增加BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元微管的冷穩(wěn)定性及微管穩(wěn)定的標志蛋白、微管相關(guān)蛋白的表達;可以增加BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元興奮性突觸結(jié)構(gòu)、興奮性谷氨酸受體相關(guān)蛋白的表達(圖7)。本研究結(jié)果進一步驗證了微管穩(wěn)定性在ASD發(fā)病機制中的重要作用,為ASD的治療提供了新的可能。

        圖7 微管穩(wěn)定劑Epothilone D對孤獨癥譜系障礙BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元興奮性突觸結(jié)構(gòu)的影響及機制

        穩(wěn)定的微管可以抵抗解聚條件,如寒冷刺激和一些解聚藥物[9]。微管功能障礙是神經(jīng)精神疾病的共同特征,這可能導致了神經(jīng)精神疾病的發(fā)生[10]。靶向微管藥物的研究正在成為治療各種神經(jīng)精神疾?。ㄈ缗两鹕喜?、阿爾茨海默病和精神分裂癥)的一種策略[11-14]。研究表明,細胞骨架和微管穩(wěn)定性在ASD的發(fā)病機制中起著重要作用[5]。微管相關(guān)蛋白(MAPs)是一類結(jié)合和穩(wěn)定微管的蛋白質(zhì),MAPs可以穩(wěn)定微管,這被認為是神經(jīng)元回路的發(fā)育、維持和功能所必需的[4]。其中MAP6(也稱為STOP蛋白)是一種鈣調(diào)節(jié)蛋白,負責神經(jīng)元微管的高度穩(wěn)定以及神經(jīng)元結(jié)構(gòu)和突觸可塑性的建立,被認為與神經(jīng)元微管對寒冷刺激和藥物的穩(wěn)定性相關(guān)[15]。研究表明與對照組相比,ASD患者血漿和BTBR小鼠大腦皮質(zhì)中的STOP顯著減少[1,15]。這些結(jié)果提示STOP基因與ASD發(fā)病有關(guān)。

        Epo D是一種天然存在于纖維素黏桿菌中的化合物,可以促進微管形成和穩(wěn)定,抑制微管解聚,并且很容易透過血腦屏障,這使其廣泛應用于神經(jīng)精神疾病的治療[10]。Epo D具有廣泛的效果,這取決于其所針對的疾病、涉及的細胞類型以及藥物在實驗中所采用的劑量和作用時間[16]。高濃度時,微管穩(wěn)定劑高度穩(wěn)定微管并干擾其正常破壞,是靶向和治療各種類型惡性腫瘤的手段之一。然而,在低濃度時這些藥物可以穩(wěn)定足夠的微管,以防止它們?nèi)O化和溶解,甚至促進它們的極化,這對于腦損傷的治療非常重要[17]。10 d的原代皮質(zhì)神經(jīng)元被認為是相對成熟的,突觸蛋白、谷氨酸受體、軸突/樹突連接的增加和電生理特性的改變在這一時間段發(fā)生[16]。因此,本研究選擇10 d的BTBR小鼠原代皮質(zhì)神經(jīng)元作為研究對象。Acetyl-tubulin是一種廣泛應用的穩(wěn)定聚合微管的標記物,在穩(wěn)定的微管中,α-tubulin在賴氨酸-40位點發(fā)生乙?;?,反之,α-tubulin在非聚合微管中迅速去乙酰化[17]。本研究結(jié)果表明,Epo D可提高BTBR小鼠大腦皮質(zhì)神經(jīng)元微管的冷穩(wěn)定性,可增加微管穩(wěn)定的標志蛋白和微管相關(guān)蛋白的表達。

        興奮性突觸的發(fā)育和功能在ASD的發(fā)病機制中起著重要作用[1]。VGLUT1作為興奮性突觸前膜標志物,對于興奮性神經(jīng)遞質(zhì)傳遞和正常突觸功能必不可少[18-19]。PSD-95是興奮性神經(jīng)元中突觸后致密物中重要的支架蛋白,調(diào)節(jié)谷氨酸的運輸和定位,參與突觸的發(fā)育和可塑性[20]。谷氨酸是最重要的興奮性神經(jīng)遞質(zhì)之一,通過與谷氨酸受體結(jié)合而引起興奮性突觸傳遞[21]。研究表明,興奮性和抑制性突觸之間的失衡導致大腦功能障礙,并參與ASD的病理過程[21-22]。BTBR小鼠大腦皮質(zhì)的谷氨酸釋放水平低于B6小鼠,而STOP基因敲除小鼠的突觸囊泡密度較低,釋放到突觸間隙中的谷氨酸也較少[21,23]。本研究結(jié)果表明,10 nmol/L Epo D可使BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元中興奮性突觸結(jié)構(gòu)相關(guān)蛋白、谷氨酸受體蛋白的表達水平增加。

        綜上所述,微管穩(wěn)定劑Epo D能改善體外培養(yǎng)的ASD模型BTBR小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元的興奮性突觸結(jié)構(gòu),其機制可能與增加微管的穩(wěn)定性有關(guān),有望成為治療ASD的有效藥物。

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