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        不同溫度下外加磁場對磁性納米微粒分散性的影響

        2022-06-29 05:38:06逯陣毫楊陽李冰王玉堂
        中國醫(yī)學(xué)工程 2022年6期
        關(guān)鍵詞:包被分散性微粒

        逯陣毫,楊陽,李冰,王玉堂

        (鄭州安圖生物工程股份有限公司,河南 鄭州 450000)

        納米技術(shù)是目前最重要的現(xiàn)代科學(xué)研究之一[1],納米粒子以其獨(dú)特的尺寸和理化性質(zhì)優(yōu)勢,使其在生物醫(yī)學(xué)、材料科學(xué)、環(huán)境工程等多個(gè)領(lǐng)域廣泛應(yīng)用[2],各種納米粒子的合成和應(yīng)用收到廣泛關(guān)注。磁性納米顆粒是納米材料的一種,隨著納米生物技術(shù)的最新發(fā)展和需求,磁性納米顆粒在生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域的應(yīng)用潛力日益增大。磁性納米粒子通常分為純金屬、金屬氧化物和磁性納米復(fù)合材料,生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域常用的磁性納米粒子有鈷(Co)、鐵(Fe)、鎳(Ni)、鈦(Ti)及其氧化物,其中氧化鐵磁性納米粒子(通常為Fe2O3或Fe3O4)因毒性較低而使用最多[3],這些磁性納米微??梢员淮艌鰴z測和操縱,從而實(shí)現(xiàn)磁成像、磁分離、藥物和基因傳遞等功能。

        在體外診斷領(lǐng)域,磁性納米微粒作為固相載體可以實(shí)現(xiàn)待測物質(zhì)的快速分離,其分散性對其性能有直接的影響。例如,在儲(chǔ)存過程中如果發(fā)生凝集,磁微粒重新懸浮時(shí)無法重新分散均勻,測試結(jié)果就會(huì)表現(xiàn)出重復(fù)性較差,甚至出現(xiàn)跳孔、漏檢等異?,F(xiàn)象;導(dǎo)致磁微粒凝集的因素很多,表面Zeta 電位的改變,偶聯(lián)蛋白的性質(zhì),保存條件發(fā)生改變等等。在磁微粒試劑盒的開發(fā)中,磁微粒的分散性是試劑盒性能的一項(xiàng)重要指標(biāo)[4],試劑盒保存過程中,因?yàn)橹亓Φ淖饔么盼⒘3两翟谌萜鞯撞浚S時(shí)間的延長,磁微粒發(fā)生凝集的概率明顯增加,因此磁微粒的分散性加速考核就顯得極其重要。目前,研究磁微粒分散性加速考核多采取磁加速手段,具體操作為在磁微粒容器底部外加一定強(qiáng)度的磁場,根據(jù)阿倫尼烏斯經(jīng)驗(yàn)方程,采取增加溫度的方式加速考核[5]。

        本文重點(diǎn)研究不同溫度下的外加磁場對磁微粒分散性的影響,同時(shí)對磁微粒的粒徑、磁響應(yīng)、Zeta 電位進(jìn)行表征,試圖找到保存溫度與磁微粒分散性之間的關(guān)系,為磁微粒長期的保存提供借鑒意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        表面羧基磁性納米微粒購自德國Merk 公司;系列小鼠單克隆抗體mAb1-mAb5 購自鄭州伊美諾生物技術(shù)有限公司;牛血清白蛋白(BSA)購自Sigma 公司;磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉(純度分析純)購自Sigma 公司;2-(N-嗎啉)乙磺酸(MES)購自Sigma 公司;1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺鹽酸鹽(EDC)購自Sigma 公司;N-羥基琥珀酰亞(NHS)購自Sigma 公司。

        1.2 設(shè)備

        磁吸加速裝置,自制;垂直混勻器(寧波新芝生物科技有限公司,型號:HS-3);光學(xué)顯微鏡(日本奧林巴斯,型號:BX-43),顯微數(shù)字相機(jī)(廣州市明美光電技術(shù)有限公司,型號:MSX11);激光粒度儀(馬爾文帕納科,型號:MX3000);Zeta 電位儀(馬爾文帕納科,型號:ZEN3600)。隔水式電熱恒溫培養(yǎng)箱(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司,型號:HH-B11·360-BS-II);星星陳列柜(星星制冷設(shè)備有限公司,型號:LSC-518Y);Sepmag A200 磁分離器。

        1.3 磁微粒-蛋白偶聯(lián)

        偶聯(lián)過程采用EDC+NHS 活化磁微粒表面的羧基基團(tuán),具體步驟如下:抽取30 μL 磁微粒原液,用磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)洗滌2 次,加入20 mg/mL EDC MES 緩沖液和20 mg/mL NHS MES緩沖液各50 μL,震蕩反應(yīng)1 h,去上清后加入300 μL MES 緩沖液洗滌2 次,加入10 μL IgG 溶液,震蕩反應(yīng)2 h,去上清后加入300 μL 1%BSA磷酸鹽緩沖液封閉30 min,最后用1%BSA 磷酸鹽緩沖液定容至3 mL,2~8 ℃保存?zhèn)溆?。同時(shí)制備沒有包被任何蛋白的磁微粒作為對照,共制備6 種不同包被蛋白的磁微粒混懸液,用于磁加速考核。

        1.4 磁吸加速

        將所有磁微?;鞈乙悍殖扇M,放入磁吸加速裝置上,分別放置于4℃、25℃、37℃,放置天數(shù)3 d、7 d、10 d,磁吸加速完成后,將每瓶磁微粒混懸液置于垂直混勻器上混勻30 min,目測磁微粒分散狀態(tài),進(jìn)行磁微粒表征。

        1.5 磁性納米微粒表征

        1.5.1 分散性 抽取5 μL 磁微粒混懸液制片,置于光學(xué)顯微鏡下觀測,拍照比較分散性,以磁微粒原液為對照。

        1.5.2 粒徑 抽取2 mL 磁微?;鞈乙鹤鳛闃颖?,利用激光粒度儀測定粒徑,每個(gè)樣本重復(fù)三次,求平均粒徑。

        1.5.3 磁響應(yīng) 抽取2 mL 磁微粒混懸液加入玻璃管中,放入Sepmag A200 測定磁響應(yīng)時(shí)間。

        1.5.4 Zeta 電位 抽取1 mL 磁微粒混懸液,用1 mL 洗滌3 次,最后定容到原來體積1 mL,利用Zeta 電位儀測定Zeta 電位。

        2 結(jié)果

        2.1 分散性

        由圖1 可見,不同包被抗體的磁微?;鞈乙涸诓煌瑴囟葪l件下磁吸加速,重懸后磁微粒的分散性有明顯差異,37℃下磁吸加速,磁珠分散性最差,25℃次之,4℃分散性最好,同一批磁微粒原液,與是否包被抗體、抗體的種類無顯著關(guān)系。包被其他單抗的磁微粒顯示出相同的趨勢。

        圖1 包被不同蛋白的磁微?;鞈乙捍盼铀俸蠓稚⑿裕ㄒ詍Ab1 為例)

        由圖2 可見,包被同樣蛋白不同批次原液在不同溫度條件下磁吸加速,重懸后磁微粒的分散性有明顯差異,37℃下磁吸加速,磁珠分散性最差,25℃次之,4℃分散性最好,同一批磁微粒原液,與是否包被抗體、抗體的種類無顯著關(guān)系。其他批次磁微粒表現(xiàn)出相同的趨勢。

        圖2 不同批次磁微?;鞈乙捍盼铀俸蠓稚⑿裕ㄒ訫8932 為例)

        2.2 粒徑

        數(shù)據(jù)表明,磁微粒包被抗體后,磁加速同樣的時(shí)間,溫度越高,磁微粒粒徑越大,表明磁微粒分散性越差,與光學(xué)顯微鏡觀察到的結(jié)果一致。包被不同的單抗粒徑變化趨勢一致,未包被任何單抗的裸磁珠也表現(xiàn)出同樣的趨勢,說明磁微粒磁加速后分散程度與包被抗體的性質(zhì)無明顯關(guān)系。見表1。

        表1 包被不同單抗的磁微粒在不同溫度下磁加速3 d、7 d、10 d 后的粒徑變化(以mAb1 為例)

        數(shù)據(jù)表明,不同批次磁微粒包被抗體后,磁加速同樣的時(shí)間,溫度越高,磁微粒粒徑越大,表明磁微粒分散性越差,與光學(xué)顯微鏡觀察到的結(jié)果一致,不同批次的磁微粒粒徑變化趨勢一致,說明磁加速后的分散程度與磁微粒批次無明顯關(guān)系。見表2。

        表2 不同批次磁微粒在不同溫度下磁加速3 d、7 d、10 d后的粒徑變化(以M8932 為例)

        以上數(shù)據(jù)均表明,磁加速分散程度與包被抗體、磁微粒批次無明顯關(guān)系,與外加磁場時(shí)的溫度有明顯關(guān)系,溫度越高,磁加速后的分散性越差。

        2.3 磁響應(yīng)

        數(shù)據(jù)表明,磁微粒包被抗體后,磁加速同樣的時(shí)間,溫度越高,磁響應(yīng)越小,粒徑數(shù)據(jù)表明,溫度越高粒徑有增大趨勢,經(jīng)驗(yàn)表明,粒徑增大磁響應(yīng)會(huì)變小。包被不同的單抗磁響應(yīng)變化趨勢一致,說明磁微粒磁加速后磁響應(yīng)變化與包被抗體的性質(zhì)無明顯關(guān)系。見表3。

        表3 包被不同單抗的磁微粒在不同溫度下磁加速3 d、7 d、10 d 后的磁響應(yīng)變化(以mAb1 為例)

        數(shù)據(jù)表明,不同批次磁微粒包被抗體后,磁加速同樣的時(shí)間,溫度越高,磁響應(yīng)越小,粒徑數(shù)據(jù)表明,溫度越高粒徑有增大趨勢。不同批次磁微粒磁響應(yīng)變化趨勢一致,說明磁微粒磁加速后磁響應(yīng)變化與磁微粒的性質(zhì)無明顯關(guān)系。見表4。

        表4 不同批次磁微粒在不同溫度下磁加速3 d、7 d、10 d后的磁響應(yīng)變化(以M8932 為例)

        2.4 Zeta 電位

        數(shù)據(jù)表明,磁微粒包被不同的抗體,磁加速同樣的時(shí)間,Zeta 電位變化并不明顯。包被不同單抗的磁微粒Zeta 電位變化同樣不明顯。不同批次的磁微粒Zeta 電位同樣無明顯變化,說明磁微粒磁加速后Zeta 電位無明顯變化,與包被的抗體和磁微粒本身的性質(zhì)無明顯關(guān)系。見表5、表6。

        表5 包被不同單抗的磁微粒在不同溫度下磁加速3 d、7 d、10 d 后的Zeta 電位變化(以mAb1 為例)

        表6 不同批次磁微粒在不同溫度下磁加速3 d、7 d、10 d后的Zeta 電位變化(以M8932 為例)

        3 討論

        磁微粒長期保存過程中會(huì)受重力的影響而在底部沉積,不同的保存溫度對磁微粒的分散性有顯著影響。從實(shí)驗(yàn)中可以得到,在37℃保存時(shí),對磁微粒的分散性有負(fù)面影響,在4℃保存時(shí)影響小于25℃和37℃,粒徑數(shù)據(jù)證實(shí)37℃時(shí)的粒徑大于25℃和4℃,證實(shí)37℃時(shí)磁微粒凝集程度大于25℃和4℃;磁響應(yīng)方面,37℃時(shí)由于磁微粒凝集程度最大,磁響應(yīng)也是最快的,但是Zeta 電位卻沒有明顯變化趨勢。

        同時(shí),不同批次磁微粒,包被不同蛋白的磁微粒,都有同樣的趨勢,分散性與外界溫度有明顯關(guān)系。這種變化的發(fā)生,可能與溫度改變了蛋白表面的水化層有直接關(guān)系[6]。蛋白質(zhì)溶液中溫度稍高時(shí),蛋白質(zhì)間分子間作用力增加,加速蛋白質(zhì)的凝集[7],同時(shí),蛋白質(zhì)構(gòu)象發(fā)生輕微改變,導(dǎo)致水化層的厚度減小,不利于蛋白質(zhì)膠體的穩(wěn)定性[8]。

        綜上所述,本研究可為磁微粒試劑盒保存環(huán)境的選擇以及磁微粒凝集方面提供一定參考。

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