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        文拉法辛聯(lián)合長春西汀在大鼠體內(nèi)的藥代動(dòng)力學(xué)研究

        2022-06-23 05:39:30麥麥提艾力·色依提孫鈺淑孫玲李文芳劉茜
        中國藥房 2022年11期
        關(guān)鍵詞:文拉法辛代謝藥代動(dòng)力學(xué)

        麥麥提艾力·色依提 孫鈺淑 孫玲 李文芳 劉茜

        關(guān)鍵詞文拉法辛;長春西汀;藥代動(dòng)力學(xué);藥物相互作用;代謝;大鼠

        抑郁癥是一種由生理、心理以及社會(huì)環(huán)境因素等導(dǎo)致的臨床常見復(fù)雜疾病。抑郁癥患者情緒低落、悲觀,生理上表現(xiàn)為思維遲緩、失眠、軀體不適,當(dāng)抑郁癥發(fā)展到嚴(yán)重階段,甚至?xí)a(chǎn)生自殘自殺行為[1]。抑郁癥難以治愈,復(fù)發(fā)率高,29%~66%的抑郁癥患者使用單一抗抑郁藥物進(jìn)行治療時(shí)不能完全恢復(fù)[2-4]。

        文拉法辛(venlafaxine,VEN)為第2 代非三環(huán)苯乙胺類抗抑郁藥,通過阻滯突觸前膜的5-羥色胺、去甲腎上腺素以及部分多巴胺重?cái)z取從而治療抑郁癥[5]。VEN口服吸收速度快,不良反應(yīng)小,是治療抑郁癥尤其是難治性抑郁癥的首選藥物之一[6-7]。VEN體內(nèi)主要代謝產(chǎn)物是N-去甲文拉法辛(N-desmethylvenlafaxine,NDV)和O-去甲文拉法辛(O-desmethylvenlafaxine,ODV),其中ODV 由VEN 通過細(xì)胞色素P450(CYP450)酶CYP2D6(89%)、CYP2C19(10%)和CYP2C9(1%)代謝生成,具有抗抑郁活性,且作用效果與VEN類似[8]。歐洲精神病藥理學(xué)會(huì)與神經(jīng)精神藥理學(xué)會(huì)發(fā)布的治療藥物監(jiān)測(cè)指南中推薦對(duì)VEN及ODV的血藥濃度進(jìn)行監(jiān)測(cè)[9]。

        長春西?。╲inpocetine,VIN)可抑制鈣離子依賴性磷酸二酯酶的活性,增加環(huán)磷酸腺苷的含量,松弛血管平滑肌,增加腦灌注量,常用于治療心血管疾病及抑郁癥[10]。VIN體內(nèi)吸收快速,約75%被迅速水解為活性代謝物阿樸長春胺酸(apovincaminic acid,AVA),致使VIN在血漿中的濃度較低。VIN 和AVA藥理活性具有顯著的相關(guān)性,檢測(cè)AVA 即可反映VIN 的藥代動(dòng)力學(xué)行為[11-12],因此本研究只測(cè)定AVA的血藥濃度。

        患者抑郁癥發(fā)作時(shí),進(jìn)行VEN聯(lián)合VIN 治療,可明顯降低其漢密爾頓焦慮量表評(píng)分,且療效較單用VEN明顯提高[13-14]。VEN代謝過程中涉及多種CYP450同工酶,而VIN對(duì)其中CYP3A4、CYP2D6 均有一定抑制作用,從而影響VEN 的代謝[15-16]?;诖耍狙芯坎捎靡合嗌V- 串聯(lián)質(zhì)譜(LC-MS/MS)法測(cè)定大鼠血漿中VEN、ODV、AVA 的濃度,進(jìn)而研究VIN 聯(lián)用VEN 的藥代動(dòng)力學(xué),考察兩者的相互作用,以期為兩者合理用藥提供參考。

        1 材料

        1.1 主要儀器

        本研究所用主要儀器有1100 型高效液相色譜儀(美國Agilent 公司)、API2000 型三重四極桿質(zhì)譜儀(美國ABSciex 公司)、管式加熱L-119A型氮吹儀[來亨科技(北京)有限公司]、DW-86W100 型臥式超低溫保存箱(青島海爾特種電器有限公司)、BS 124S 型電子天平[賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司]、KQ-50B型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)、LG10-2.4A型高速離心機(jī)(北京雷勃爾離心機(jī)有限公司)。

        1.2 主要藥品與試劑本研究所用主要藥品與試劑有VIN對(duì)照品(廣東健坤藥業(yè)有限公司,含量100.2%,批號(hào)151221-41815003),VEN、ODV對(duì)照品(上海麥克林生化科技有限公司,含量均大于99.5%,批號(hào)分別為M00118009、C10034477),AVA對(duì)照品(國家標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)資源平臺(tái),含量99.5%,批號(hào)101439-201901),多潘立酮對(duì)照品(信陽市中檢計(jì)量生物科技有限公司,含量99.8%,批號(hào)100304-201103);甲酸、甲醇、乙腈為色譜純,甲基叔丁基醚、無水碳酸鈉為分析純,其余試劑為實(shí)驗(yàn)室常用規(guī)格,水為純凈水。

        1.3 動(dòng)物本研究所用動(dòng)物為SPF 級(jí)雄性SD 大鼠,體質(zhì)量為180~200 g,購自沈陽藥科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(遼)2019-0058。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 色譜與質(zhì)譜條件

        2.1.1 色譜條件(1)色譜條件一(檢測(cè)VEN、ODV):

        色譜柱為Agilent TC-C1(8 150 mm×4.6 mm,5 μm),保護(hù)柱為Agilent-C18(12.5 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相為甲醇-乙腈-0.5%甲酸溶液(50 ∶ 45 ∶ 5,V/V/V);流速為800μL/min;柱溫為40 ℃。(2)色譜條件二(檢測(cè)AVA):色譜柱為Agilent TC-C1(8 150 mm×4.6 mm,5 μm),保護(hù)柱為Agilent-C18(12.5 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相為甲醇-乙腈溶液(85 ∶15,V/V);流速為800 μL/min;柱溫為40 ℃。

        2.1.2 質(zhì)譜條件采用電噴霧離子源,正離子檢測(cè),多反應(yīng)監(jiān)測(cè)掃描;離子源溫度為450 ℃,離子源噴射電壓為5.5 kV;氣簾氣壓力為20 psi;噴霧氣、輔助加熱氣壓力均為70 psi;碰撞氣體壓力為7 psi;VEN、ODV、AVA及多潘立酮(內(nèi)標(biāo))的去簇電壓分別為22、23、100、55eV,碰撞能量分別為30、34、33、37.2 eV;定量分析離子對(duì)分別為m/z 278.1→m/z 121.0(VEN)、m/z 264.1→m/z107.0(ODV)、m/z 323.2→m/z 236.1(AVA)、m/z 426.1→m/z 175.1(內(nèi)標(biāo))。VEN、ODV、AVA和多潘立酮的全掃描質(zhì)譜圖及化學(xué)結(jié)構(gòu)見圖1。

        2.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制精密稱定VEN、ODV、AVA對(duì)照品各10 mg,分別置于100 mL 量瓶中,以甲醇溶解定容,即得VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度均為100 μg/mL的儲(chǔ)備液。取上述各成分儲(chǔ)備液適量,分別用甲醇稀釋成質(zhì)量濃度均為5、10、50、100、500、1 000、2 000、5 000 ng/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液。同法制備VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度均分別為10、100、4 000ng/mL的質(zhì)控(QC)工作溶液。

        2.3 標(biāo)準(zhǔn)血漿樣品與QC樣品的配制取VEN、ODV、AVA相同質(zhì)量濃度的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液各50 μL 于同一5 mL離心管中,共8 份,加入500 μL 空白血漿,配制成VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度均分別為0.5、1、5、10、50、100、200、500 ng/mL 的標(biāo)準(zhǔn)血漿樣品,備用。另取VEN、ODV、AVA的QC工作溶液各50 μL,加入500 μL 空白血漿,渦旋1 min,制備VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度均分別為1、10、400 ng/mL的QC樣品,備用。

        2.4 血漿樣品的預(yù)處理方法2.4.1 VEN及ODV血漿樣品的預(yù)處理取100 μL大鼠血漿,加入200 ng/mL 內(nèi)標(biāo)溶液10 μL,渦旋1 min;加入0.1 mol/L 碳酸鈉溶液100 μL,渦旋1 min,再加入甲基叔丁基醚3 mL,渦旋震蕩20 min;以12 000 r/min 離心10min,取上清液,置于另一離心管,以37 ℃氮?dú)獯蹈?,殘?jiān)?00 μL 甲醇-乙腈-0.5%甲酸溶液復(fù)溶,取20 μL 進(jìn)行LC-MS/MS分析。

        2.4.2 AVA血漿樣品的預(yù)處理取100 μL大鼠血漿,加入200 ng/mL 內(nèi)標(biāo)溶液10 μL,渦旋30 s;加入1 mol/L 鹽酸100 μL,渦旋30 s,再加入乙酸乙酯3 mL,渦旋1 min;以3 500 r/min 離心10 min,取上清液,置于另一離心管,以37 ℃氮?dú)獯蹈?,殘?jiān)?00 μL 甲醇-乙腈溶液復(fù)溶,取20 μL進(jìn)行LC-MS/MS分析。

        2.5 方法學(xué)考察2.5.1 專屬性考察取大鼠空白血漿100 μL,除用10μL甲醇替代內(nèi)標(biāo)外,其余操作同“2.4”項(xiàng)下2 種血漿樣品的預(yù)處理方法分別處理后,再按“2.1”項(xiàng)下條件進(jìn)樣分析。按“2.3”項(xiàng)下方法操作,配制VEN、ODV、AVA、內(nèi)標(biāo)質(zhì)量濃度分別為0.5、0.5、0.5、200 ng/mL 的標(biāo)準(zhǔn)血漿樣品,再按上述方法處理后進(jìn)樣分析。取“2.6”項(xiàng)下給藥0.25 h 后單只大鼠血漿樣品,再按上述方法處理后進(jìn)樣分析。結(jié)果顯示,VEN、ODV、內(nèi)標(biāo)的保留時(shí)間分別為1.85、1.85、1.86 min,AVA、內(nèi)標(biāo)的保留時(shí)間分別為3.12、2.94 min(均以標(biāo)準(zhǔn)血漿樣品計(jì)),表明該法血漿中內(nèi)源性物質(zhì)不干擾目標(biāo)分析物。結(jié)果見圖2、圖3。

        2.5.2 線性關(guān)系與定量下限考察取“2.3”項(xiàng)下配制的標(biāo)準(zhǔn)血漿樣品,按“2.4”項(xiàng)下2 種血漿樣品預(yù)處理方法操作,再按“2.1”項(xiàng)下條件進(jìn)樣分析,記錄圖譜。以VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),VEN、ODV、AVA分別與內(nèi)標(biāo)的峰面積比值為縱坐標(biāo)(Y),采用加權(quán)最小二乘法[17]進(jìn)行線性回歸。結(jié)果顯示,VEN、ODV、AVA的回歸方程分別為Y=9.98×10-2X-0.061 2×10-2 (r=0.999 8)、Y=9.86×10-2X+3.81×10-2(r=0.998 1)、Y=9.17×10-2X+3.27×10-3(r=0.995 7),線性范圍均為0.5~500 ng/mL,定量下限均為0.5 ng/mL。

        2.5.3 準(zhǔn)確度與精密度考察按“2.3”項(xiàng)下操作,配制0.5 ng/mL 的VEN、ODV、AVA定量下限樣品,取“2.3”項(xiàng)下質(zhì)量濃度分別為1、10、400 ng/mL 的QC樣品適量,按“2.4”項(xiàng)下方法操作,各質(zhì)量濃度平行分析6 樣本,連續(xù)3個(gè)分析批。根據(jù)所建標(biāo)準(zhǔn)曲線,得各樣品的實(shí)測(cè)質(zhì)量濃度,并考察日內(nèi)、日間精密度[以相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)表示]和準(zhǔn)確度[以相對(duì)誤差(RE)表示],結(jié)果見表1。

        2.5.4 穩(wěn)定性考察取VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度均為1、400 ng/mL 的QC樣品,按“2.4”項(xiàng)下方法操作,各質(zhì)量濃度平行分析3 樣本,分別考察血漿樣品處理前室溫放置2 h 和處理后室溫放置0、4、8 h 的穩(wěn)定性,自動(dòng)進(jìn)樣器放置穩(wěn)定性,3 次冷凍-解凍循環(huán)穩(wěn)定性和長期穩(wěn)定性(-70 ℃保存30 d)。結(jié)果顯示,VEN、ODV、AVA的不同QC樣品在上述條件下,實(shí)測(cè)質(zhì)量濃度的RSD 均小于14%(n=3),穩(wěn)定性良好。

        2.5.5 提取回收率考察取“2.3”項(xiàng)下VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度均為1、10、400 ng/mL 的QC樣品,按“2.4”項(xiàng)下方法操作,各質(zhì)量濃度平行分析6 樣本,得峰面積均值A(chǔ)。取VEN、ODV、AVA 質(zhì)量濃度均為10、100、4 000ng/mL的QC工作液各10 μL于不同離心管中,以氮?dú)獯蹈?另取大鼠空白血漿100 μL,除用10 μL甲醇替代內(nèi)標(biāo)外,其余按“2.4”項(xiàng)下方法操作,然后將上清液移至上述氮?dú)獯蹈傻碾x心管中,渦旋使之充分溶解,再以氮?dú)獯蹈?,?00 μL 甲醇復(fù)溶后進(jìn)樣分析,各質(zhì)量濃度平行分析6 樣本,得峰面積均值B。內(nèi)標(biāo)同法操作。按公式計(jì)算提取回收率(提取回收率=A/B×100%),結(jié)果見表2。2.5.6 基質(zhì)效應(yīng)考察取VEN、ODV、AVA質(zhì)量濃度分別為1、400 ng/mL 的QC樣品各10 μL 和內(nèi)標(biāo)10 μL,以氮?dú)獯蹈?取大鼠空白血漿100 μL,除不加內(nèi)標(biāo)外,其余按“2.4”項(xiàng)下方法操作至取上清液,轉(zhuǎn)移上清液至上述氮?dú)獯蹈傻碾x心管中,渦旋使之充分溶解,再以氮?dú)獯蹈桑恿鲃?dòng)相100 μL復(fù)溶,取20 μL進(jìn)樣分析,各質(zhì)量濃度平行分析6 樣本,得到峰面積均值A(chǔ)1。另外,除用水代替大鼠空白血漿外,其余處理同上,得到峰面積B1。以A1/B1計(jì)算得VEN、ODV、AVA和內(nèi)標(biāo)的基質(zhì)因子,利用各成分和內(nèi)標(biāo)的基質(zhì)因子計(jì)算經(jīng)內(nèi)標(biāo)歸一化的基質(zhì)因子。

        結(jié)果顯示,VEN、ODV、AVA的1 ng/mL QC 樣品的基質(zhì)因子變異系數(shù)分別為0.93%、0.98%、1.00%,400 ng/mLQC 樣品的基質(zhì)因子變異系數(shù)分別為1.01%、0.96%、0.90%,符合生物樣品測(cè)定要求。

        2.6 藥代動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)將18 只健康雄性SD 大鼠,隨機(jī)分為VEN 組(13.5mg/kg)、VIN 組(1.8 mg/kg)和VEN+VIN 組(13.5 mg/kgVEN+1.8 mg/kg VIN),每組6 只,給藥劑量參考文獻(xiàn)[14]設(shè)置。給藥前,各組大鼠禁食不禁水12 h,一次性灌胃給予相應(yīng)藥物。VIN 組于給藥前(0 h)和給藥后0.333、0.583、0.75、1、1.25、2、4、6、8、12、24、36 h 采血;VEN組于給藥前(0 h)和給藥后0.083、0.333、0.583、0.75、1、1.25、2、4、8、12 h 采血;VIN+VEN組于給藥前(0 h)和給藥后0.083、0.333、0.583、0.75、1、1.25、2、4、6、8、12、24、36 h 采血。每只大鼠均從眼眶靜脈叢采血約0.5 mL,并置于肝素處理過的離心管中。各組采集的血漿樣品以4 000r/min 離心10 min,取上清液,按“2.4”項(xiàng)下方法處理,按“2.1”項(xiàng)下條件進(jìn)樣分析,記錄峰面積,代入當(dāng)日建立的標(biāo)準(zhǔn)曲線中計(jì)算各樣品中VEN、ODV、AVA 的質(zhì)量濃度,再用Origin 9.0 軟件繪制大鼠單獨(dú)灌胃給予VEN、VIN及聯(lián)合灌胃給予VEN和VIN后血漿中VEN、ODV、AVA的平均血藥濃度-時(shí)間曲線。結(jié)果見圖4。

        2.7 藥代動(dòng)力學(xué)評(píng)價(jià)將經(jīng)過方法學(xué)驗(yàn)證的分析方法用于本研究后,采用DAS2.0 軟件計(jì)算藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù),然后應(yīng)用SPSS19.0軟件對(duì)主要藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù)即峰濃度(cmax)、消除半衰期(t1/2)、藥時(shí)曲線下面積(AUC)、平均駐留時(shí)間(MRT)、清除速率(CL/F)、表觀分布容積(Vz/F)進(jìn)行獨(dú)立樣本t 檢驗(yàn)分析,達(dá)峰時(shí)間(tmax)采用非參數(shù)秩和檢驗(yàn),檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。結(jié)果見表3~表5。

        由表3~表5 可見,與VEN組比較,VEN+VIN 組大鼠血漿中VEN、ODV 的藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù)cmax、AUC0 - t、AUC0-∞、MRT0-(t VEN除外)、MRT0-∞(VEN除外)均顯著增大,CL/F、Vz/F 均顯著減小(P<0.05 或P<0.01)。與VIN 組比較,VEN+VIN 組大鼠血漿中AVA的各項(xiàng)藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù)差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        3 討論

        早期相關(guān)研究采用熒光法分析VEN及其代謝物[18],但存在血漿樣品取樣量大、靈敏度不足、分析時(shí)間長的問題。鑒于生物樣品成分的復(fù)雜性,本研究建立的LC-MS/MS 法可減少干擾,具有專屬、高效、靈敏的特點(diǎn)。為獲得良好的峰形和較高的質(zhì)譜響應(yīng),筆者考察了流動(dòng)相甲醇、乙腈、水的組成比例,并在水相中加入甲酸來提高離子化程度。結(jié)果發(fā)現(xiàn),當(dāng)流動(dòng)相為甲醇-乙腈-0.5%甲酸溶液(50 ∶45 ∶5,V/V/V)時(shí),VEN、ODV、內(nèi)標(biāo)的響應(yīng)較高、峰形良好,VEN、ODV的保留時(shí)間均在1.95 min 內(nèi),較文獻(xiàn)[19]中的保留時(shí)間更短;當(dāng)流動(dòng)相為甲醇-乙腈溶液(85 ∶15,V/V)時(shí),AVA的峰形良好、響應(yīng)較高且保留時(shí)間適宜。

        前期研究階段,筆者考察了液液萃取法(萃取劑包括乙酸乙酯、甲基叔丁基醚)和蛋白沉淀法(沉淀劑包括甲醇、乙腈)對(duì)VEN、ODV血漿樣品預(yù)處理的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),以乙酸乙酯萃取時(shí),VEN、ODV的提取回收率較低;以甲醇和乙腈沉淀蛋白時(shí),VEN、ODV的峰形變寬、柱效較低、重現(xiàn)性差,故采用甲基叔丁基醚作為萃取劑。另外,由于VEN、ODV偏堿性,故在樣品處理時(shí)加入碳酸鈉來提高兩者的提取回收率。筆者同樣也考察了液液萃取法(萃取劑包括乙酸乙酯、甲基叔丁基醚、乙酸乙酯-甲基叔丁基醚混合溶液)和蛋白沉淀法(沉淀劑包括甲醇、乙腈)對(duì)AVA血漿樣品預(yù)處理的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),以甲基叔丁基醚、乙酸乙酯-甲基叔丁基醚混合溶液為萃取劑時(shí),AVA的提取回收率較;以甲醇和乙腈沉淀蛋白時(shí),AVA的峰形變寬、柱效較低、重現(xiàn)性差,故采用乙酸乙酯作為萃取劑。另外,由于AVA偏酸性,故在樣品處理時(shí)加入鹽酸來提高AVA的提取回收率

        進(jìn)一步的藥代動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與VEN 組比較,VEN + VIN 組中VEN、ODV 的藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù)AUC0-t、AUC0-∞、cmax、MRT0-(t VEN除外)、MRT0-∞(VEN除外)均顯著增大,CL/F、Vz/F均顯著減小,tmax、t1/2差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示VIN對(duì)VEN、ODV在大鼠體內(nèi)的藥代動(dòng)力學(xué)行為有影響。與VIN 組比較,VEN+VIN 組中AVA的藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù)cmax、AUC0-t、AUC0-∞、Vz/F、CL/F、tmax、t1/2、MRT0-t、MRT0-∞差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示VEN 對(duì)VIN 在大鼠體內(nèi)的藥代動(dòng)力學(xué)行為并無明顯影響。由此可知,VIN 可增大VEN、ODV的吸收程度,并使兩者的消除減慢,但對(duì)兩者的吸收速度無明顯影響。究其原因可能是由于VEN和ODV是經(jīng)CYP2D6 酶代謝的,而VIN 對(duì)CYP2D6 酶有一定的抑制作用,從而減慢VEN、ODV的代謝,造成兩者在體內(nèi)蓄積。由于VIN 的血管擴(kuò)張作用可改善腦循環(huán),并增強(qiáng)VEN在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的生物利用度[14],基于本研究結(jié)果筆者推測(cè),VIN可能會(huì)導(dǎo)致VEN的中樞神經(jīng)濃度過高,進(jìn)而產(chǎn)生不良反應(yīng)。因此建議在臨床應(yīng)用過程中,應(yīng)適當(dāng)調(diào)整VIN 和VEN 聯(lián)合用藥的劑量和給藥間隔,并密切關(guān)注兩者聯(lián)用期間患者的不良反應(yīng),以增加治療安全性。

        綜上所述,VEN 和VIN 聯(lián)用后,VIN 可通過增大VEN、ODV在大鼠體內(nèi)的吸收程度、減慢兩者消除,影響VEN的代謝。

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