吉穎 吳淑華 崔曉艷 涂麗琴 高丹娜 程兆榜 周益軍 陳新 季英華 郭青云
摘要:2019年在對(duì)江蘇大豆上病毒病進(jìn)行調(diào)查時(shí),發(fā)現(xiàn)徐州和淮安大豆田間出現(xiàn)一種表現(xiàn)葉片黃化、花葉癥狀的病毒病,為明確其伴隨病毒種類,對(duì)田間采集的70份疑似病樣進(jìn)行分子檢測(cè)和鑒定,結(jié)果在利用香石竹潛隱病毒屬(Carlavirus)通用引物檢測(cè)時(shí)發(fā)現(xiàn),70份疑似病樣中有15份樣品擴(kuò)增到800 bp左右的目的片段,序列測(cè)定后BLAST分析結(jié)果顯示,其與一種粉虱傳病毒——豇豆輕斑駁病毒CpMMV(cowpea mild mottle virus,CpMMV)的同源性最高,暗示了其可能是CpMMV的一個(gè)分離物。針對(duì)CpMMV編碼的CP基因設(shè)計(jì)特異性引物,檢測(cè)結(jié)果顯示15份陽性樣品均擴(kuò)增到目的片段,對(duì)獲得的CP基因片段進(jìn)行克隆測(cè)序,發(fā)現(xiàn)其序列全長867 bp,編碼分子量約為32ku的蛋白;序列聚類分析結(jié)果顯示,其與已報(bào)道的CpMMV分離物有較高的同源性,并聚類到同一個(gè)大的分支,其中與安徽、海南等地分離物相對(duì)近緣,聚在同一個(gè)小分支。這些結(jié)果表明江蘇大豆存在豇豆輕斑駁病毒的侵染危害,生產(chǎn)上需要密切關(guān)注。
關(guān)鍵詞:大豆;豇豆輕斑駁病毒;分子鑒定;聚類分析;進(jìn)化樹構(gòu)建
中圖分類號(hào): S435.651? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2022)10-0030-07
大豆(Glycine max L.)作為一種重要的經(jīng)濟(jì)作物,既是最常見油料作物,也是食品、飼料等行業(yè)的主要植物蛋白來源,在世界各地均有種植[1]。隨著種植區(qū)域的擴(kuò)張,大豆上病毒病的發(fā)生呈現(xiàn)多發(fā)常發(fā)態(tài)勢(shì)。據(jù)報(bào)道,在美國可侵染大豆的病毒有110種,在中國也有50多種[2],例如大豆花葉病毒(soybean mosaic virus,SMV)、花生輕型斑駁病毒(peanut mild mottle virus,PMMV)、大豆矮縮病毒(soybean dwarf virus,SbDV)、黃瓜花葉病毒(cucumber mosaic virus,CMV)、苜蓿花葉病毒(alfalfa mosaic virus,AMV)、豇豆輕斑駁病毒(cowpea mild mottle virus,CpMMV)等[3-5]。
豇豆輕斑駁病毒(cowpea mild mottle virus,CpMMV)是一種煙粉虱傳播的植物病毒[6],有相關(guān)報(bào)道亦可種傳[7-8],可侵染豆科、茄科、藜科和葫蘆科等多種植物。CpMMV侵染寄主植物常引起葉片斑駁癥狀,有些作物葉片會(huì)伴有系統(tǒng)性斑點(diǎn)、畸形、褪綠甚至壞死等癥狀[8],嚴(yán)重影響作物產(chǎn)量和品質(zhì)。1973年,Brunt 等首次報(bào)道加納豇豆上出現(xiàn)CpMMV的危害[8],隨后該病毒迅速蔓延,在巴西[9]、尼日利亞[10]、約旦[11]、泰國[12]、印度[13]、坦桑尼亞[14]、以色列[15]、蘇丹[16]、阿根廷[17]、伊朗[18]、波多黎各[19]、委內(nèi)瑞拉[20]、美國[21]、貝寧[22]、烏干達(dá)[23]、墨西哥[24]、肯尼亞[25]等多個(gè)國家和地區(qū)均有該病毒的報(bào)道。在中國,2013年Chang等首次報(bào)道臺(tái)灣豇豆和四季豆上存在CpMMV的侵染危害[26];2015年劉雪建利用小RNA深度測(cè)序及RT-PCR技術(shù)在江西四季豆上檢測(cè)到CpMMV[27];2019年,楊曉等報(bào)道海南豇豆上也出現(xiàn)CpMMV的危害[5];但目前CpMMV在大豆上僅安徽有危害報(bào)道[28]。
CpMMV隸屬于蕪菁黃花葉病毒目(Tymovirales)乙型線狀病毒科(Betaflexiviridae)香石竹潛隱病毒屬(Carlavirus)[29],其基因組是正單鏈RNA,長度約為8 200 bp,病毒粒子為彎曲的絲狀顆粒(約650 nm×15 nm),具有5′末端帽子結(jié)構(gòu)和3′末端Poly(A)尾,編碼6個(gè)蛋白:ORF1編碼復(fù)制酶蛋白,含4個(gè)保守的基序,即甲基轉(zhuǎn)移酶、C23肽酶、解旋酶和RNA聚合酶(RNA dependent RNA polymerase,RdRp)[30-33];ORF2、ORF3和ORF4編碼病毒運(yùn)動(dòng)所必需的三重基因模塊(TGB1-3,大小分別為250、11.6、7.5 ku);ORF5編碼外殼蛋白(coat protein,CP,32 ku);ORF6編碼一個(gè)核酸結(jié)合蛋白(nucleic acid binding protein,NBP,15.2 ku)[34]。其中外殼蛋白是CpMMV重要的結(jié)構(gòu)蛋白,且能結(jié)合TGB1-3參與病毒胞間運(yùn)動(dòng)[35-36],在病毒分類上也是該屬一個(gè)重要的參考指標(biāo)[37]。
CpMMV在我國首次報(bào)道是2013年(中國臺(tái)灣地區(qū))[26],隨后江西、海南也出現(xiàn)該病毒發(fā)生危害的報(bào)道[5,27],而對(duì)于大豆,只在安徽有侵染危害報(bào)道[28]。2019年筆者在江蘇徐州和淮安的田間發(fā)現(xiàn)出現(xiàn)疑似病毒感染的大豆病株,大豆病樣采集后經(jīng)分子檢測(cè)與鑒定,結(jié)果在大豆病樣中檢測(cè)到CpMMV,之后的序列分析結(jié)果也證實(shí)了這一結(jié)果,說明CpMMV在江蘇大豆上已存在危害。
1 材料與方法
1.1 供試病樣
病樣為2019年采自江蘇省徐州市和淮安市疑似感染病毒病的大豆樣本,共70份,對(duì)照為網(wǎng)室內(nèi)培養(yǎng)的健康大豆苗,樣本采集后用液氮處理,于 -80 ℃ 保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2 病樣總RNA提取
取在超低溫冰箱中的大豆樣品,液氮處理后置于研磨機(jī)中研磨至粉末,采取Trizol法[38]提取樣品總RNA,保存于-80℃冰箱備用。
1.3 病樣RT-PCR檢測(cè)
以病樣總RNA為模板,用PrimeScriptTM RT Master Mix進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。反應(yīng)體系(20 μL):病樣總RNA 1 μL,5×PrimeScript RT Master Mix 4 μL,用RNase-Free H2O補(bǔ)足至總體積20 μL。反應(yīng)程序:37 ℃恒溫15 min,85 ℃變性 5 s,4 ℃保存,獲得cDNA。對(duì)其進(jìn)行PCR檢測(cè),PCR反應(yīng)體系(10 μL):2×Taq Master Mix 5 μL,ddH2O 3 μL,Car_F2b和Car_R(表1)各0.5 μL,cDNA 1 μL。反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性 15 s,47 ℃退火15 s,72 ℃延伸55 s,32個(gè)循環(huán);72 ℃ 延伸6 min,4 ℃保存。取5 μL PCR反應(yīng)產(chǎn)物在0.5 × TAE電泳緩沖液中,用1%瓊脂糖凝膠電泳分離PCR產(chǎn)物并拍照,將擴(kuò)增出的與目的片段一致的產(chǎn)物送通用生物系統(tǒng)(安徽)有限公司測(cè)序。
1.4 CpMMV CP基因克隆
依據(jù)CpMMV外殼蛋白序列設(shè)計(jì)一對(duì)特異引物CpMMCP_F和CpMMCP_R(表1),以檢測(cè)結(jié)果為陽性的cDNA為模板進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增體系(20 μL):2×Rapid Taq Master Mix 10 μL,CpMMCP_F和CpMMCP_R各 1 μL,cDNA 1 μL,ddH2O 7 μL;PCR反應(yīng)程序:95 ℃ 3 min;95 ℃ 15 s,51 ℃ 15 s,72 ℃ 30 s,循環(huán) 34 次;72 ℃ 5 min,4 ℃保存。PCR產(chǎn)物于經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),回收純化目的片段,將其與pMD-18T載體在16 ℃下連接過夜。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌Trans1-T1感受態(tài)細(xì)胞后涂布到含有氨芐青霉素的LB平板上,在37 ℃恒溫培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)。挑LB平板上的單克隆進(jìn)行菌落PCR和酶切驗(yàn)證,鑒定無誤后將菌液送通用生物系統(tǒng)(安徽)公司進(jìn)行測(cè)序。
1.5 序列測(cè)定及分析
委托通用生物系統(tǒng)(安徽)公司完成測(cè)序。使用ClustalX、BioEdit、DNAstar、MEGA6等軟件及NCBI網(wǎng)站上的BLAST程序(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/Blast.cgi)完成聚類分析及進(jìn)化樹構(gòu)建,進(jìn)化樹的可信度使用1 000次自導(dǎo)復(fù)制實(shí)現(xiàn)評(píng)價(jià)。
2 結(jié)果與分析
2.1 病害田間癥狀
2019年,筆者在對(duì)江蘇大豆上病害進(jìn)行調(diào)查時(shí)發(fā)現(xiàn)徐州和淮安大豆上存在疑似病毒侵染的病株,發(fā)病大豆植株田間主要表現(xiàn)葉片黃化、花葉等癥狀(圖1),病害田間多呈零星發(fā)生,個(gè)別田塊局部區(qū)域發(fā)病較重。
2.2 香石竹潛隱病毒屬(Carlavirus)病毒檢測(cè)
大豆上發(fā)生的病毒病多種多樣,對(duì)大豆病樣的RNA進(jìn)行RT-PCR檢測(cè)能明確其感染的病毒種類,在利用Carlavirus通用引物Car_F2b和Car_R對(duì)大豆樣品進(jìn)行檢測(cè)時(shí)發(fā)現(xiàn), 70份疑似病樣中有15份(徐州14份,淮安1份)擴(kuò)增到與目的條帶(800 bp)大小相近的片段,而健康對(duì)照中沒有擴(kuò)增到條帶(圖2),說明大豆病樣中可能有香石竹潛隱病毒屬病毒的感染。為明確病毒的種類,抽選5份樣品進(jìn)行序列測(cè)定,序列BLAST分析結(jié)果顯示其與豇豆輕斑駁病毒(MN908944)同源性最高(9891%),說明在徐州和淮安采集的大豆樣品中可能存在著豇豆輕斑駁病毒的侵染。
2.3 豇豆輕斑駁病毒的分子檢測(cè)
為進(jìn)一步驗(yàn)證檢測(cè)到的病毒是CpMMV,筆者針對(duì)CpMMV的CP基因設(shè)計(jì)一對(duì)特異性擴(kuò)增引物CPMMCP_F和CPMMCP_R,RT-PCR結(jié)果顯示,15份陽性樣品均擴(kuò)增到了與目的條帶大?。?67 bp)相近的特異性條帶(圖3),即CpMMV的CP基因條帶,這進(jìn)一步說明樣品中確有可能存在CpMMV的感染。
2.4 豇豆輕斑駁病毒CP基因克隆及其序列分析
隨機(jī)抽選3個(gè)樣品進(jìn)行CP基因PCR擴(kuò)增(圖4-a),經(jīng)單菌落PCR和酶切驗(yàn)證(圖4-b)后送通用生物系統(tǒng)(安徽)公司進(jìn)行測(cè)序。
對(duì)獲取的6個(gè)CP基因克隆進(jìn)行測(cè)序,結(jié)果顯示,序列全長都為867 bp,編碼一個(gè)由289個(gè)氨基酸組成的分子量約32 ku的蛋白。序列之間有很高的同源性,BLAST分析結(jié)果表明,它們與CpMMV(MT232837)同源性最高(99%),暗示了其屬于CpMMV的一個(gè)分離物。
2.5 豇豆輕斑駁病毒CP基因系統(tǒng)進(jìn)化分析
使用ClustalX等軟件將本研究測(cè)定的CpMMV CP序列與已公開的其他CpMMV分離物CP基因序列(表2)進(jìn)行比對(duì),同時(shí)利用MEGA 6軟件,使用臨近法(neighbor-joining,NJ)、Kimura 2-parameter模型重建了系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖5),各個(gè)分枝的Bootstrap置信度用1 000次自導(dǎo)復(fù)制來評(píng)價(jià)。
基于CP核苷酸序列重建的系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果(圖5、表2)顯示,本研究測(cè)定的分離物在進(jìn)化樹中全部聚類到CpMMV大分支中,說明檢測(cè)到的病毒為CpMMV的一個(gè)分離物;同時(shí)結(jié)果還顯示,江蘇分離物與我國的安徽大豆分離物、海南豇豆分離物、臺(tái)灣菜豆分離物(JX020701)、印尼大豆分離物及印度黑吉豆分離物(KJ534277)相對(duì)近緣共同聚類到一個(gè)分支,其中與安徽大豆分離物最為近緣,而與中國臺(tái)灣豇豆分離物(JX070669)及其他國外分離物相對(duì)遠(yuǎn)緣,分別處在不同的分支上。這些分析結(jié)果進(jìn)一步說明本研究在江蘇大豆上檢測(cè)到的病毒為CpMMV的一個(gè)分離物。
3 討論
江蘇省大豆栽植面積在25萬hm2左右,是我國重要的大豆產(chǎn)區(qū)之一[40]。近年來隨著各地經(jīng)貿(mào)往來(種苗調(diào)運(yùn))的頻繁和農(nóng)業(yè)種植模式的改變,加之傳播介體的大發(fā)生,大豆病毒病呈多發(fā)態(tài)勢(shì),而大豆病毒病危害通常會(huì)導(dǎo)致10%~15%的產(chǎn)量損失,復(fù)合侵染往往會(huì)加重產(chǎn)量損失[21]。本研究對(duì)2019年采集于江蘇省徐州和淮安地區(qū)的大豆病樣進(jìn)行檢測(cè)時(shí),發(fā)現(xiàn)其中伴隨有病毒侵染,進(jìn)一步通過基因克隆及序列分析等方法對(duì)其進(jìn)行了鑒定,結(jié)果顯示,它屬于CpMMV的一個(gè)分離物,該病毒之前在我國臺(tái)灣(菜豆、四季豆)[26]、江西(四季豆)[27]、海南(豇豆)[5]和安徽(大豆)[28]有發(fā)生危害的報(bào)道,但江蘇尚未有發(fā)生危害的報(bào)道,因此本研究是CpMMV侵染江蘇大豆的第1個(gè)報(bào)道,同時(shí)CpMMV也是第1個(gè)侵染危害江蘇省大豆的粉虱傳病毒。
CpMMV是我國近幾年來新發(fā)生的一種重要的粉虱傳播的植物病毒,能夠侵染豆科和茄科多種作物,目前已廣泛分布于亞洲、美洲和非洲[7-8,21],對(duì)包括大豆在內(nèi)的多種作物造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失[8]。目前我國安徽、海南等地已經(jīng)出現(xiàn)CpMMV發(fā)生危害,本研究報(bào)道江蘇也有該病毒發(fā)生危害,但目前我國大豆對(duì)該病毒的抗性尚不明確,而該病毒可由煙粉虱傳播,且近幾年來病毒傳播介體煙粉虱的大發(fā)生,極有可能導(dǎo)致該病毒在更大范圍流行危害,因此生產(chǎn)上應(yīng)當(dāng)高度重視,密切關(guān)注該病毒的危害動(dòng)態(tài),早發(fā)現(xiàn)、早防控,避免擴(kuò)散蔓延至全國范圍造成更大的危害和損失。
由于大豆上的病毒種類繁多,本研究中除了對(duì)CpMMV進(jìn)行檢測(cè)外,同時(shí)也對(duì)其他大豆常見病毒如黃瓜花葉病毒、菜豆普通花葉病毒、大豆花葉病毒等進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果在這批樣品中也檢測(cè)到了菜豆普通花葉病毒等病毒,說明江蘇大豆上病毒種類相對(duì)比較復(fù)雜,要摸清江蘇大豆上的病毒種類還需后續(xù)更廣泛的樣品采集和更為系統(tǒng)的病毒種類調(diào)查。
參考文獻(xiàn):
[1]趙團(tuán)結(jié),蓋鈞鎰. 栽培大豆起源與演化研究進(jìn)展[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2004,37(7):954-962.
[2]智海劍. 大豆對(duì)大豆花葉病毒抗侵染和抗擴(kuò)展特性的鑒定、遺傳和利用研究[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2005:3.
[3]單宇航,高維達(dá),于 曼,等. 大豆花葉病毒沈陽分離物全基因測(cè)序及系統(tǒng)進(jìn)化分析[J]. 中國植保導(dǎo)刊,2020,40(2):17-21.
[4]Hobbs H A,Domier L L,Nelson B D. First report of alfalfa mosaic virus and soybean dwarf virus on soybean in North Dakota[J]. Plant Disease,2012,96(12):1829.
[5]楊 曉,張 宇,陳 莎,等. 豇豆輕斑駁病毒海南分離物全基因組序列測(cè)定及分子特征[J]. 中國蔬菜,2019(6):35-38.
[6]Muniyappa V,Reddy D V R. Transmission of cowpea mild mottle virus by Bemisia tabaci in a non-persistent manner[J]. Plant Disease,1983,67(4):391-393.
[7]Iwaki M,Thongmeearkom P,Honda Y,et al. Cowpea mild mottle virus occurring on soybean and peanut in southeast Asian countries[J]. Technical Bulletin of the Tropical Agriculture Research Center,1986,21:106-120.
[8]Brunt A A,Kenten R H. Cowpea mild mottle,a newly recognized virus infecting cowpeas (Vigna unguiculata) in Ghana[J]. Annals of Applied Biology,1973,74(1):67-74.
[9]Zanardo L G,Silva F N,Bicalho A A C,et al. Molecular and biological characterization of cowpea mild mottle virus isolates infecting soybean in Brazil and evidence of recombination[J]. Plant Pathology,2014,63(2):456-465.
[10]Brunt A A,Phillips S. ‘Fuzzy vein’,a disease of tomato (Lycopersicon esculentum) in western Nigeria induced by cowpea mild mottle virus[J]. Tropical Agriculture,1981,58(2):177-180.
[11]Mansour A,Al-Musa A,Vetten H J,et al. Properties of a cowpea mild mottle virus (CPMMV) isolate from eggplant in Jordan and evidence for biological and serological differences between CPMMV isolates from leguminons and solanaceous hosts[J]. Journal of Phytopathology,1998,146(11/12):539-547.
[12]Iwaki M,Thongmeearkom P,Honda Y,et al. Whitefly transmission and some properties of cowpea mild mottle virus on soybean in Thailand[J]. Plant Disease,1982,66(1):365-368.
[13]Iizuka N R,Rajeshwari R,Reddy D V R,et al. Natural occurrence of a strain of cowpea mild mottle virus on groundnut (Arachis hypogaea) in India[J]. Journal of Phytopathology,1984,109(3):245-253.
[14]Mink G I,Keswani C L. First report of cowpea mild mottle virus on bean and mung bean in Tanzania[J]. Plant Disease,1987,71(6):557.
[15]Antignus Y,Cohen S. Purification and some properties of a new strain of cowpea mild mottle virus in Israel[J]. Annals of Applied Biology,1987,110(3):563-569.
[16]El-Hassan S M,Naidu R A,Ahmed A H,et al. A serious disease of groundnut caused by cowpea mild mottle virus in the Sudan[J]. Journal of Phytopathology,1997,145(7):301-304.
[17]Rodríguez Pardina P E,Arneodo J D,Truol G A,et al. First report of cowpea mild mottle virus in bean crops in Argentina[J]. Australasian Plant Pathology,2004,33(1):129-130.
[18]Tavassoli M,Shahraeen N,Ghorbani S. Detection and some properties of cowpea mild mottle virus isolated from soybean in Iran[J]. Pakistan Journal of Biological Sciences,2008,11(23):2624-2628.
[19]Brace R C,F(xiàn)ehr W R,Graham M A. Inheritance and molecular mapping of an allele providing resistance to a cowpea mild mottle-like virus in soybean[J]. Crop Science,2012,52(5):2109-2114.
[20]Brito M,F(xiàn)ernández-Rodríguez T,Garrido M J,et al. First report of cowpea mild mottle Carlavirus on yardlong bean (Vigna unguiculata subsp. sesquipedalis) in Venezuela[J]. Viruses,2012,4(12):3804-3811.
[21]Rosario K,Capobianco H,Ng T F F,et al. RNA viral metagenome of whiteflies leads to the discovery and characterization of a whitefly-transmitted Carlavirus in North America[J]. PLoS One,2014,9(1):e86748.
[22]Zinsou V A,Afouda L A C,Zoumarou-Wallis N,et al. Importance of cowpea mild mottle virus on soybean (Glycine max) in Benin and effect of planting date on soybean (G.max) virus level in northern Benin[J]. Crop Protection,2015,72:139-143.
[23]Orawu M,Obuo J,Omadi R. Distribution and detection of cowpea viruses infecting cowpea in Uganda[J]. American Journal of Plant Sciences,2015,6(5):574-581.
[24]Chiquito-Almanza E,Caballero-Pérez J,Guevara-Olvera L,et al. First report of cowpea mild mottle virus infecting cultivated and wild Phaseolus in the central-western region of Mexico[J]. Plant Disease,2018,102(5):1047.
[25]Odhiambo Patrick O,Were H,Ndonga M,et al. First report of cowpea polero virus 1 (CPPV1) infecting cowpea in Kenya[J]. International Journal of Genetics and Genomics,2019,7(4):119-123.
[26]Chang C A,Chien L Y,Tsai C F,et al. First report of cowpea mild mottle virus in cowpea and French bean in Taiwan[J]. Plant Disease,2013,97(7):1001.
[27]劉雪建. 浙江省和江西省蔬菜病毒鑒定與變異研究[D]. 杭州:浙江大學(xué),2015:113-116.
[28]Wei Z Y,Wu G W,Ye Z X,et al. First report of cowpea mild mottle virus infecting soybean in China[J]. Plant Disease,2020,104(9):2534.
[29]King A. Virus taxonomy:ninth report of the international committee on taxonomy of viruses[M]. San Diego:Academic Press,2012:855-881.
[30]Rozanov M N,Koonin E V,Gorbalenya A E. Conservation of the putative methyltransferase domain:a hallmark of the ‘Sindbis-like’ supergroup of positive-strand RNA viruses[J]. Journal of General Virology,1992,73(8):2129-2134.
[31]Koonin E V. The phylogeny of RNA-dependent RNA polymerases of positive-strand RNA viruses[J]. Journal of General Virology,1991,72 ( Pt 9):2197-2206.
[32]Lawrence D M,Rozanov M N,Hillman B I. Autocatalytic processing of the 223-kDa protein of blueberry scorch carlavirus by a papain-like proteinase[J]. Virology,1995,207(1):127-135.
[33]Gorbalenya A E,Koonin E V. Viral proteins containing the purine NTP-binding sequence pattern[J]. Nucleic Acids Research,1989,17(21):8413-8438.
[34]Zanardo L G,Carvalho C M. Cowpea mild mottle virus (Carlavirus,Betaflexiviridae):a review[J]. Tropical Plant Pathology,2017,42(6):417-430.
[35]Wylie S J,Adams M,Chalam C,et al. ICTV virus taxonomy profile:Potyviridae[J]. Journal of General Virology,2017,98(3):352-354.
[36]Lough T J,Netzler N E,Emerson S J,et al. Cell-to-cell movement of potexviruses:evidence for a ribonucleoprotein complex involving the coat protein and first triple gene block protein[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions,2000,13(9):962-974.
[37]Adams M J,Antoniw J F,F(xiàn)auquet C M. Molecular criteria for genus and species discrimination within the family Potyviridae[J]. Archives of Virology,2005,150(3):459-479.
[38]吳淑華,趙文浩,李廷芳,等. 南京辣椒上一種斑駁類型病毒病的分子鑒定[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2015,31(6):1284-1290.
[39]Nie X Z,Bai Y J,Molen T A,et al. Development of universal primers for detection of potato carlaviruses by RT-PCR[J]. Journal of Virological Methods,2008,149(2):209-216.
[40]陳 新,顧和平,張紅梅,等. 江蘇省大豆生產(chǎn)發(fā)展歷史、現(xiàn)狀與前景分析[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,39(1):6-9.