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        硅對(duì)稈銹菌侵染燕麥葉片病程相關(guān)蛋白活性及酚類(lèi)物質(zhì)代謝的影響

        2022-05-24 08:20:32李英浩劉景輝米俊珍趙寶平AllenXue
        西北植物學(xué)報(bào) 2022年4期
        關(guān)鍵詞:幾丁質(zhì)銹病酚類(lèi)

        李英浩,劉景輝*,呂 品,米俊珍,趙寶平,Allen Xue

        (1 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,呼和浩特 010019;2 加拿大農(nóng)業(yè)與農(nóng)產(chǎn)品部渥太華研發(fā)中心,加拿大 渥太華 KIA0C6)

        燕麥(AvenasativaL.)是世界上公認(rèn)的營(yíng)養(yǎng)保健谷物,其籽粒富含蛋白質(zhì)、不飽和脂肪酸和β-葡聚糖,同時(shí)富含燕麥特有抗氧化物質(zhì)及多種微量元素等[1],可以降脂控糖、降低心血管疾病風(fēng)險(xiǎn)[2-3]。燕麥具有抗旱、耐鹽堿、耐瘠薄、適應(yīng)性強(qiáng)等特點(diǎn),是中國(guó)北方、西北干旱冷涼等生態(tài)脆弱區(qū)主要的糧飼兼用及優(yōu)勢(shì)特色作物[4]。燕麥稈銹病(Pucciniagraminisf. sp.avenae)作為典型的真菌病害[5],發(fā)病初期為圓形暗紅色小點(diǎn),后病斑逐漸擴(kuò)展出現(xiàn)稍隆起的小瘡胞,即夏孢子堆[6]。稈銹病害在燕麥種植的地區(qū)和國(guó)家都有發(fā)生,曾分別于20世紀(jì)初和20世紀(jì)40年代在北美地區(qū)和加拿大西部地區(qū)大爆發(fā)[7]。稈銹病也是中國(guó)燕麥主產(chǎn)區(qū)主要病害之一,周期性發(fā)生,大幅度降低籽粒產(chǎn)量和質(zhì)量,嚴(yán)重制約燕麥產(chǎn)業(yè)可持續(xù)發(fā)展。調(diào)查結(jié)果顯示,2008-2009年在吉林白城、2012-2013年在河北張家口,燕麥稈銹病大面積爆發(fā),產(chǎn)量降低10%~15%[8]。因此,如何提高燕麥稈銹病抗性成為中國(guó)燕麥生產(chǎn)亟待研究的課題,對(duì)中國(guó)燕麥主產(chǎn)區(qū)發(fā)展具有重要意義。

        硅是地殼中第二大元素,可以提高某些作物對(duì)真菌病害的抵抗力[9],雖然該元素不是植物生長(zhǎng)的必要元素,但在提高植物抗病性上有重要作用。例如對(duì)水稻白葉枯病[10]、番茄根腐病[11]、黃瓜炭疽病[12]、小麥銹病[13]等病害均有一定的防治效果。誘導(dǎo)抗病性就是利用物理的、化學(xué)的以及生物的方法處理植株,改變植物對(duì)病害的反應(yīng)產(chǎn)生局部的或系統(tǒng)抗性的現(xiàn)象[14-16],其抗病效果取決于誘導(dǎo)抗性的強(qiáng)弱和速度。研究表明病程相關(guān)蛋白(pathogenesis-related proteins, PR)活性的顯著提高,酚類(lèi)物質(zhì)的積累以及木質(zhì)化作用的加強(qiáng)都是誘導(dǎo)抗性的重要機(jī)制[17]。有研究發(fā)現(xiàn),水稻侵染稻瘟病菌后,施硅能顯著提高葉片病程相關(guān)蛋白酶中幾丁質(zhì)酶和β-1,3-葡聚糖酶的活性以及可溶性總酚及木質(zhì)素含量[18]。Chérif等[19]發(fā)現(xiàn),施硅后黃瓜植株中被侵染的細(xì)胞通過(guò)積累酚類(lèi)物質(zhì)對(duì)真菌侵染的反應(yīng)更迅速,積累的酚類(lèi)物質(zhì)具有強(qiáng)烈的抗菌活性,抑制真菌侵入活性維管束系統(tǒng)。在黃瓜和水稻中也發(fā)現(xiàn)受硅調(diào)控的植保素的積累[20-21]。Rémus-Borel等[22]在研究硅增強(qiáng)小麥白粉病抗性的過(guò)程中,在施硅植株中提取到具有很強(qiáng)抗菌能力的化合物。

        所有這些發(fā)現(xiàn)清晰地表明,硅在感病的植株體內(nèi)誘導(dǎo)引發(fā)了一種生化防衛(wèi)反應(yīng),但迄今為止有關(guān)硅增強(qiáng)植物抗病性的作用機(jī)理尚不完全清楚,并且關(guān)于硅在感染稈銹病的燕麥體內(nèi)誘導(dǎo)產(chǎn)生抗病的機(jī)制尚未見(jiàn)報(bào)道?;谏鲜鲅芯勘尘埃狙芯恳砸赘卸掍P病的燕麥品種‘壩莜1號(hào)’為材料,考察硅對(duì)燕麥葉片酚類(lèi)物質(zhì)含量和病程相關(guān)蛋白活性的影響及其與燕麥稈銹病抗性的關(guān)系,以期揭示硅抗燕麥稈銹病的生理機(jī)制,為研發(fā)新型稈銹病害防治措施提供理論依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 材 料

        試驗(yàn)選用易感稈銹病的燕麥品種‘壩莜1號(hào)’為材料(由張家口市農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供),供試的燕麥稈銹菌從張家口市農(nóng)業(yè)科學(xué)院燕麥生產(chǎn)試驗(yàn)田采集,試驗(yàn)所用的硅酸鹽(K2SiO3)及其他化學(xué)試劑均為分析純,所用營(yíng)養(yǎng)液參照Hoagland經(jīng)典配方進(jìn)行配置[23]。

        1.2 燕麥幼苗培養(yǎng)

        試驗(yàn)采用盆栽方法,供試土壤為蛭石與泥炭土按質(zhì)量比為1∶1的比例混合而成。泥炭土中 N+P+K含量>10 g·kg-1,有機(jī)質(zhì)含量>50 g·kg-1,pH 7.0~8.0。塑料盆高12 cm,直徑15 cm,每盆裝混合土1 kg。選擇大小均勻一致的燕麥種子,使用3%氯酸鈉消毒10 min,蒸餾水沖洗3次并晾干后播種在花盆中,每盆20粒。燕麥出苗后將花盆置于日光溫室中進(jìn)行培養(yǎng)。

        1.3 接種方法

        待燕麥幼苗第一葉充分展開(kāi)即一葉一心時(shí)期,參照李天亞等[24]的方法進(jìn)行稈銹病菌接種。具體方法為:將分離純化后的稈銹病菌株置于培養(yǎng)皿內(nèi),首先用前端削成扁平的牙簽挑取稈銹菌株均勻涂抹于葉片背面,接種時(shí)各葉片涂抹菌要定量且保持一致。接種后的葉片用0.05%吐溫-20水溶液噴霧形成保濕膜,植株放置在16~18 ℃的黑暗環(huán)境中保濕16~20 h后,移入人工溫室內(nèi)進(jìn)行培養(yǎng),溫度控制在20~25 ℃,14 h(光)/10 h(暗)。

        1.4 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        試驗(yàn)共設(shè)4個(gè)處理,分別為CK(不施硅不接種)、+Si-P(施硅不接種)、-Si+P(不施硅接種)以及+Si+P(施硅接種),每個(gè)處理重復(fù)3次。從燕麥出苗開(kāi)始每隔3 d選用含1.5 mmol·L-1K2SiO3(前期的研究結(jié)果已證明該濃度防疫效果最佳)的1/2 Hoagland營(yíng)養(yǎng)液進(jìn)行澆灌,每盆200 mL,不加硅處理則加入同樣濃度的KNO3溶液,以補(bǔ)充由于施硅量不同帶來(lái)的鉀含量的差異。待幼苗長(zhǎng)至一葉一心時(shí)期進(jìn)行稈銹病菌接種,分別在接種前(0 d)和接種后(1、3、5、7、9和11 d)采集各個(gè)處理下的燕麥葉片樣品(第一片葉),用液氮冷凍,在-80 ℃下保存,用于后期指標(biāo)的測(cè)定。

        1.5 測(cè)試指標(biāo)及方法

        1.5.1 稈銹侵染型分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)及觀(guān)察參照Stewart等[25]的方法,燕麥葉片稈銹侵染型具體分為0(免疫)、0;(近免疫)、1(高抗)、2(中抗)、3(中感)、4(高感)和x(混合型)。接種6 d后開(kāi)始每天觀(guān)察病斑(夏孢子堆)發(fā)展情況,待接種11 d后記載侵染型并拍照。

        1.5.2 幾丁質(zhì)酶和β-1,3-葡聚糖酶活性取葉片0.5 g,加入液氮研磨至粉末,再加入7 mL濃度為50 mmol/L乙酸鈉緩沖液(pH5.0)勻漿?;旌衔镌? ℃、15 000×g離心15 min,上清液即為提取的粗酶液,用作幾丁質(zhì)內(nèi)切酶和外切酶活性的分析。幾丁質(zhì)酶活性測(cè)定參照Boller等[26]的方法,β-1,3-葡聚糖酶活性測(cè)定參照J(rèn)oosten等[27]的方法。以每秒催化產(chǎn)生1 mol N-乙酰氨基葡萄糖(GlcNAc)所需的酶量定義為1 katal(kat), 酶活性表示為nkat/mg。

        1.5.3 多酚氧化酶活性(PPO)活性稱(chēng)取鮮樣葉片0.5 g左右,放入提前預(yù)冷的研缽中,加入液氮研磨至粉末,加入0.1 mol/L磷酸鈉緩沖液(pH 6.4,含1% PVP)4 mL,充分勻漿后,轉(zhuǎn)入10 mL離心管中。將混合物在4 ℃條件下,15 000×g高速離心30 min上清液用于酶活性測(cè)定。參照Qin等[28]的方法進(jìn)行酶活性測(cè)定。

        1.5.4 苯丙氨酸解氨酶活性(PAL)活性稱(chēng)取鮮樣葉片0.3 g左右,放入提前預(yù)冷的研缽中,加入液氮研磨至粉末,用50 mmol/L硼酸鈉緩沖液(pH 8.8,含5 mmol/L巰基乙醇和1% PVP) 4 mL (分2次加入),充分勻漿后,轉(zhuǎn)入10 mL離心管中?;旌衔镌? ℃條件下,15 000×g 高速離心 30 min,上清液用于酶活性測(cè)定。參照Qin等[28]的方法進(jìn)行酶活性測(cè)定。以O(shè)D290變化0.01為一個(gè)酶活力單位(U)。

        1.5.5 總可溶性酚(TSP)和木質(zhì)素含量參照Rodrigues等[29]的方法。取0.1 g冷凍粉末葉片樣品至Ependorf管中,加入1.5 mL 80%的甲醇,用鋁箔紙將Ependorf管完全包裹,以防止光氧化,于轉(zhuǎn)速150 r/min、室溫25 ℃的搖床上振蕩過(guò)夜。將得到的提取物在離心力為12 000×g下高速離心5 min,之后將上清液轉(zhuǎn)移到新的塑料管中,在-20 ℃低溫冰箱中保存,用以測(cè)定總可溶性酚的含量。將沉淀也保存在-20 ℃的低溫冰箱中,用以測(cè)定木質(zhì)素的含量。

        1.6 數(shù)據(jù)分析

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2016軟件進(jìn)行處理和作圖,利用SPSS 22.0軟件進(jìn)行方差分析,并運(yùn)用Duncan’s檢驗(yàn)法對(duì)顯著性差異進(jìn)行多重比較。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 施硅對(duì)燕麥稈銹病抗病性的影響

        在接種稈銹病菌的情況下,外源施硅可以明顯減少燕麥幼苗葉片的稈銹病菌孢子量,減少病斑大小(圖1)。同時(shí),燕麥幼苗葉片的稈銹最高病級(jí)由4(高感)轉(zhuǎn)變?yōu)?(中抗),且與不施硅相比(表1),施硅處理下稈銹病發(fā)生嚴(yán)重度顯著降低了35.61%(P<0.05)。

        2.2 施硅對(duì)接種后燕麥葉片病程相關(guān)蛋白酶活性的影響

        2.2.1 幾丁質(zhì)酶活性在不接種稈銹病的情況下,施硅與否對(duì)燕麥葉片幾丁質(zhì)內(nèi)切酶和外切酶活性并未產(chǎn)生明顯影響(圖2),并隨接種后天數(shù)的延長(zhǎng)基本維持平穩(wěn)狀態(tài)。在接種稈銹病菌后,燕麥葉片的幾丁質(zhì)外切酶和幾丁質(zhì)內(nèi)切酶活性在施硅和不施硅處理下均表現(xiàn)出相同的先升后降的變化趨勢(shì)。其中,兩種酶活性在接種初期有一個(gè)快速上升階段,施硅和不施硅處理分別在接種第3天和第1天達(dá)到峰值后開(kāi)始快速下降,在第11天低于不接種時(shí)的正常水平;與不施硅處理峰值相比,施硅后葉片幾丁質(zhì)內(nèi)切酶和外切酶活性的峰值分別提高26.15%和16.67%,且差異均達(dá)到顯著水平(P<0.05)。以上結(jié)果表明施硅能使受稈銹病菌侵染的燕麥葉片中幾丁質(zhì)酶活性維持更持久更高水平,這有助于提高燕麥對(duì)稈銹病的抗性。

        表1 不同處理對(duì)燕麥稈銹病的防效

        2.2.2 β-1,3-葡聚糖酶活性從圖3中可以看出,在不接種稈銹病菌時(shí),外源施用硅對(duì)燕麥葉片β-1,3-葡聚糖酶活性并未產(chǎn)生影響,并基本維持平穩(wěn)狀態(tài)。在稈銹病菌侵染的初期,施硅和不施硅處理燕麥葉片β-1,3-葡聚糖酶活性均迅速同步升高,均在接種第3天達(dá)到最高值,之后均開(kāi)始快速降低,而均在第9天再次出現(xiàn)小幅度提升。與不施硅處理相比,在稈銹病菌接種后第1~7天內(nèi),施硅處理明顯提高葉片β-1,3-葡聚糖酶活性,并且峰值顯著提升了18.31%(P<0.05)。說(shuō)明施硅能誘導(dǎo)受稈銹病菌侵染的燕麥葉片β-1,3-葡聚糖酶活性明顯提升,致使燕麥稈銹病抗性增強(qiáng)。

        CK.不加硅不接種;+Si-P.加硅不接種;-Si+P.不加硅接種;+Si+P.加硅接種;下同圖2 不同處理下燕麥葉片幾丁質(zhì)內(nèi)切酶和外切酶活性隨接種時(shí)間的變化CK. No silicon no inoculation; +Si-P. Silicon application no inoculation; -Si+P. No silicon inoculation;+Si+P. Silicon and inoculation; The same as belowFig.2 The activities of chitin endonuclease and chitin exonuclease in oat leaves under different treatments after inoculation

        圖3 不同處理下燕麥葉片β-1,3-葡聚糖酶活性隨接種時(shí)間的變化Fig.3 The β-1, 3-glucanase activity in oat leaves under different treatments after inoculation

        2.3 施硅對(duì)接種后燕麥葉片酚類(lèi)物質(zhì)代謝的影響

        2.3.1 多酚氧化酶和苯丙氨酸解氨酶活性在不接種稈銹病菌條件下,燕麥葉片多酚氧化酶(PPO)和苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性基本保持恒定,并且施硅與否對(duì)二者無(wú)明顯影響(圖4)。在接種稈銹病菌后,施硅和不施硅處理葉片PPO活性和PAL活性隨接種后時(shí)間延長(zhǎng)均表現(xiàn)為先上升后下降的變化趨勢(shì),并均于接種后第3天達(dá)到峰值。在整個(gè)稈銹病菌侵染過(guò)程中,硅處理燕麥葉片的 PPO和PAL活性均始終明顯高于同期不加硅處理,其PPO和PAL活性的峰值分別比不施硅處理峰值顯著提高了13.04%和9.33%(P<0.05)??梢?jiàn),受到稈銹病菌侵染后,施硅能促使燕麥葉片中多酚氧化酶和苯丙氨酸解氨酶活性明顯提高,有助于增強(qiáng)燕麥對(duì)稈銹病的抗性。

        圖4 不同處理下燕麥葉片多酚氧化酶和苯丙氨酸解氨酶活性的變化Fig.4 The activities of polyphenol oxidase and phenylalanine ammonia lyase in oat leaves under different treatments

        2.3.2 總可溶性酚和木質(zhì)素含量如圖5所示,在不接種稈銹病條件下,施硅處理對(duì)燕麥葉片的總可溶性酚(TSP)和木質(zhì)素含量影響均較小,含量水平基本保持穩(wěn)定。在接種稈銹病菌后,施硅處理和不施硅處理燕麥葉片中的TSP和木質(zhì)素含量均快速大幅上升,并均在接種后第3天達(dá)到峰值,之后開(kāi)始緩慢下降;在接種后第1~11天內(nèi),施硅處理的燕麥葉片TSP和木質(zhì)素含量均明顯高于同期不施硅處理,且施硅處理后二者的峰值分別顯著提高了5.10%和27.81%(P<0.05)。這說(shuō)明燕麥幼苗接種稈銹病菌后,施硅處理能有效提高燕麥葉片中總可溶性酚和木質(zhì)素的含量,從而增強(qiáng)燕麥對(duì)稈銹病的抗性。

        圖5 不同處理下燕麥葉片總可溶性酚和木質(zhì)素含量的變化Fig.5 The contents of total soluble phenol and lignin in oat leaves under different treatments

        3 討 論

        當(dāng)植物受病原物侵染后均能產(chǎn)生誘導(dǎo)抗性,并且在感病初期就能立即啟動(dòng)誘導(dǎo)抗性機(jī)制,但其對(duì)病原物侵染起到抑制作用并能夠殺死病原物[30]。在本研究中,燕麥葉片在接種稈銹病菌后能夠快速反應(yīng),在侵染初期(0~3 d)葉片內(nèi)病程相關(guān)蛋白活性和酚類(lèi)物質(zhì)含量均快速升高達(dá)到峰值,以起到抵抗稈銹菌侵染葉片細(xì)胞結(jié)構(gòu)的作用。

        病程相關(guān)蛋白(pathogenesis-related proteins)是由植物寄主基因編碼,在病程相關(guān)情況下誘導(dǎo)生成的一類(lèi)蛋白質(zhì)。植物病原細(xì)菌、真菌、病毒和類(lèi)病毒都可以誘導(dǎo)病程相關(guān)蛋白生成。幾丁質(zhì)酶是廣泛存在于微生物和植物體內(nèi)的一類(lèi)蛋白質(zhì),是植物體中與防御有關(guān)的一種次生水解酶,幾丁質(zhì)是很多植物病原真菌細(xì)胞壁的主要成分,植物受病原真菌侵染后,幾丁質(zhì)酶在植物體內(nèi)快速積累,從而抑制真菌的生長(zhǎng)[31]。β-1,3-葡聚糖酶是一類(lèi)能夠水解以β-1,3-葡萄糖鍵連接的葡聚糖酶系,它廣泛存在于真菌、細(xì)菌、藻類(lèi)、軟體動(dòng)物和高等植物體內(nèi)。幾丁質(zhì)酶與β-1,3-葡聚糖酶在植物防衛(wèi)反應(yīng)中常協(xié)同表達(dá),從而增強(qiáng)了植物的抗病性[17]。本研究結(jié)果表明,在不接種燕麥稈銹病原菌時(shí),施硅對(duì)感病燕麥品種葉片的幾丁質(zhì)酶和β-1,3葡聚糖酶活性影響不顯著,但在有病原菌侵染條件下,外源硅可以顯著地提高燕麥麥葉片幾丁質(zhì)酶和β-1,3葡聚糖酶活性。這表明硅參與燕麥的生理代謝調(diào)節(jié)過(guò)程,誘導(dǎo)了幾丁質(zhì)酶和β-1,3葡聚糖酶活性的激發(fā),從而促進(jìn)燕麥對(duì)稈銹病的抗病性。楊艷芳報(bào)道了類(lèi)似的研究結(jié)果,即外源硅誘導(dǎo)了小麥葉片中幾丁質(zhì)酶和β-1,3葡聚糖酶活性的提升,從而增強(qiáng)小麥對(duì)白粉病的抗病性[32]。另外,本研究結(jié)果顯示,施硅后會(huì)推遲稈銹菌侵染下葉片幾丁質(zhì)酶活性峰值到達(dá)的時(shí)間,并且峰值顯著提高,使得葉片幾丁質(zhì)酶提高抗病性的作用更強(qiáng),時(shí)間更持久。

        同時(shí),酚類(lèi)物質(zhì)具有殺菌活性,能加強(qiáng)植物木質(zhì)化作用[33]。多酚氧化酶(PPO)、苯丙氨酸解氨酶(PAL)及總可溶性酚(TSP)都是酚類(lèi)物質(zhì)代謝過(guò)程中的關(guān)鍵酶,對(duì)酚類(lèi)物質(zhì)的形成、氧化以及木質(zhì)素的合成具有重要作用[34]。植物體內(nèi)酚類(lèi)物質(zhì)的來(lái)源有兩個(gè)主要的途徑,一是植物原始酚類(lèi)物質(zhì)的積累,二是在受病原菌侵染后,宿主細(xì)胞作出反應(yīng),酚類(lèi)物質(zhì)迅速積累。特別是抗病品種在受侵染時(shí),會(huì)積累從莽草酸或乙酸途徑合成的大量酚類(lèi)物質(zhì)。梁永超等研究硅和黃瓜炭疽病的關(guān)系后發(fā)現(xiàn),誘導(dǎo)接種能使加硅處理葉片的酚類(lèi)物質(zhì)含量明顯提高,植株能被成功誘導(dǎo)出系統(tǒng)抗病性蛋白,說(shuō)明病原物侵染植物后,寄主體內(nèi)酚類(lèi)物質(zhì)變化與寄主抗病性有重要關(guān)系[12]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,施硅能使受稈銹病菌侵染的燕麥葉片中多酚氧化酶活性和酚類(lèi)物質(zhì)含量提高,有助于增強(qiáng)燕麥對(duì)稈銹病的抗性。但相關(guān)研究結(jié)果表明,小麥葉片中酚類(lèi)物質(zhì)含量均在接種黑胚病菌后第2天達(dá)到峰值,然后開(kāi)始下降[35],而本研究中在接種稈銹病菌后,施硅處理和不施硅處理的燕麥葉片中的酚類(lèi)物質(zhì)含量均快速上升,并在接種后第3天才達(dá)到峰值,接著開(kāi)始下降,與前人研究結(jié)果不盡相同。這可能是因?yàn)橹仓晔艿讲煌≡秩緯r(shí),處理間植株生長(zhǎng)差異較大,結(jié)構(gòu)抗性或物理屏障作用較明顯,導(dǎo)致處理間的植株對(duì)病原菌的敏感性不一致而造成的。但也有研究指出,施硅對(duì)感病植株葉片的酚類(lèi)物質(zhì)代謝不會(huì)造成影響,這可能因?yàn)楣柙诓煌≡?寄主中作用機(jī)理存在差異[12],如黃瓜白粉病和小麥白粉病都是病原物的活體寄生,而黃瓜炭疽病菌乃腐生型,但具體作用機(jī)制尚待進(jìn)一步研究。

        結(jié)合本試驗(yàn)結(jié)果和已發(fā)表的研究結(jié)果表明,外源硅可通過(guò)調(diào)節(jié)植株體內(nèi)的生化代謝反應(yīng),影響植物抗病相關(guān)酶活性,并在侵染位點(diǎn)沉積硅元素從而構(gòu)建了防病原菌侵入的“物理或機(jī)械屏障”,以達(dá)到增強(qiáng)植株的系統(tǒng)抗病性,從而抑制植物病害發(fā)展。本試驗(yàn)研究了燕麥感染稈銹病初期,葉片內(nèi)酚類(lèi)物質(zhì)代謝能力和病程相關(guān)蛋白酶活性的變化,并探討它們和稈銹病抗性之間的關(guān)系,隨著病情的進(jìn)一步擴(kuò)展和發(fā)病級(jí)別的升高,各指標(biāo)變化規(guī)律需要進(jìn)一步研究。

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