竺利紅,李孝輝,施躍峰
(浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)與微生物研究所,杭州 310021)
鐵皮石斛Dendrobium candidiumWall. ex Lindl.,為蘭科石斛屬的多年生附生型草本植物,是我國(guó)傳統(tǒng)名貴中藥材,其多糖成分,具有提高人體免疫力、抗氧化和抗腫瘤的功效,人工栽培已相當(dāng)普遍[1,2]。
鐵皮石斛喜歡溫暖陰濕的環(huán)境,病蟲發(fā)生危害逐年加重,尤其是葉片炭疽病更為嚴(yán)重,已成為制約鐵皮石斛產(chǎn)業(yè)化、規(guī)模化發(fā)展的主要因素之一[3,4]。該病由膠孢炭疽菌Colletotrichum gloeosporioides引起,主要危害葉片和莖桿,引起落葉甚至植株枯死,對(duì)產(chǎn)量和品質(zhì)影響極大[5]。而我國(guó)在鐵皮石斛上尚沒有一種登記藥劑,生產(chǎn)上濫用農(nóng)藥的現(xiàn)象普遍,農(nóng)藥殘留超標(biāo)隱患大,“藥中藥”問題突出,嚴(yán)重威脅鐵皮石斛產(chǎn)業(yè)的健康持續(xù)發(fā)展[6]。對(duì)鐵皮石斛炭疽病的防治,急需安全高效的專用藥劑。
生物防治是目前植物病害防治的發(fā)展方向之一,其中微生物殺菌劑具有環(huán)境友好、安全性高等優(yōu)點(diǎn)而成為研究熱點(diǎn)[7]。已獲農(nóng)藥登記的微生物殺菌劑主要有芽胞桿菌類、木霉菌、假單胞菌類等[8],登記作物包括水稻、小麥、番茄、煙草等,鐵皮石斛尚未在列。國(guó)內(nèi)外關(guān)于鐵皮石斛炭疽病的生物防治研究報(bào)道較少,少量研究?jī)H限于實(shí)驗(yàn)室拮抗菌的分離篩選。曾欣等[9]通過離體葉片測(cè)定法發(fā)現(xiàn)內(nèi)生細(xì)菌貝萊斯芽胞桿菌Bacillus velezensisB-11對(duì)鐵皮石斛炭疽病的防效為64%。劉艷明等[10]通過平板對(duì)峙法測(cè)定了Ceriporiasp.F102等內(nèi)生真菌到對(duì)鐵皮石斛膠孢炭疽菌的抑菌活性。為了保障鐵皮石斛的綠色高效種植,迫切需要更多有應(yīng)用前景的生防資源,因此很有必要分離篩選該病原菌的優(yōu)質(zhì)、高效拮抗菌。本研究從土壤中分離到一株芽胞桿菌Bacillussp. SM905,發(fā)現(xiàn)其對(duì)鐵皮石斛膠孢炭疽菌有較好的抑制作用,對(duì)其展開了菌種鑒定、抑菌活性測(cè)定和盆栽防治試驗(yàn),為進(jìn)一步的田間應(yīng)用提供理論參考。
供試菌株芽胞桿菌SM905、膠孢炭疽菌由本實(shí)驗(yàn)室保存。10%苯醚甲環(huán)唑水分散粒劑由瑞士正先達(dá)作物保護(hù)有限公司生產(chǎn)。細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒、PCR試劑、16S rDNA通用引物27F/1492R、gyrB測(cè)序引物UP-1S/UP-2Sr由生工工程(上海)股份有限公司生產(chǎn)或合成。種子培養(yǎng)基:黃豆餅粉5 g,葡萄糖1 g,水1000 mL,pH 7.5。發(fā)酵培養(yǎng)基:麩皮20 g,黃豆餅粉15 g,番薯淀粉10 g,NaCl 5 g,K2HPO43 g,MgSO41.5 g,水1000 mL,pH 7.5。PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂15 g,水1000 mL,pH 自然。PDB培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,水1000 mL,pH自然。
1.2.1 形態(tài)學(xué)及生理生化特征鑒定 參照文獻(xiàn)[11]方法進(jìn)行。
1.2.2 分子鑒定 采用基因組DNA抽提試劑盒提取菌株SM905的總DNA,分別用16S rDNA和gyrB引物擴(kuò)增。16S rDNA擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,50 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min 30 s;35 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。gyrB擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性1 min,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,35 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)確定后送生工工程(上海)股份有限公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果分別在Genbank基因數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行BLAST比對(duì),并構(gòu)建分子系統(tǒng)發(fā)育樹。
取新鮮培養(yǎng)的SM905斜面接種于種子培養(yǎng)基中,37 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)16 h,即得種子液。取種子液(按5%的接種量計(jì))接入發(fā)酵培養(yǎng)基中,37 ℃、220 r/min振蕩培養(yǎng)至2/3芽胞脫落,取部分發(fā)酵液8000 r/min離心15 min,上清液過0.22 μm微孔過濾器,即得發(fā)酵上清液,4 ℃保存。剩余發(fā)酵液用助劑吸附、烘干,制備含孢量為100億CFU/g的粉劑,常溫避光保存。
1.4.1 對(duì)膠孢炭疽菌的抑菌活性 采用平板對(duì)峙法[12]測(cè)定 SM905對(duì)膠孢炭疽菌的抑菌活性。取新鮮培養(yǎng)的SM905斜面,用接種環(huán)蘸取少量接入到PDA培養(yǎng)基距中心25 mm的4個(gè)點(diǎn),打孔器打取培養(yǎng)7 d的膠孢炭疽菌菌絲塊(d=6 mm)接入培養(yǎng)皿中央,培養(yǎng)5 d后觀察抑菌效果。
1.4.2 對(duì)膠孢炭疽菌孢子萌發(fā)的影響 將膠孢炭疽菌菌絲塊接種在 PDB培養(yǎng)液,于 28 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)10 d 后,無菌擦鏡紙過濾,濾液即為孢子懸浮液。將發(fā)酵上清液與融化的PDA培養(yǎng)基混合,使其分別稀釋 5、10、20倍,對(duì)照組為空白PDA培養(yǎng)基。待培養(yǎng)基冷卻到45 ℃時(shí),加入1 mL孢子懸浮液,迅速搖勻倒平板。每處理設(shè) 5 個(gè)重復(fù),于28 ℃恒溫培養(yǎng)24 h。每皿用打孔器隨機(jī)打3個(gè)孔,將取得的培養(yǎng)物置于光學(xué)顯微鏡下觀察孢子萌發(fā)狀況,以孢子芽管長(zhǎng)度大于孢子短半徑者為萌發(fā)標(biāo)準(zhǔn),統(tǒng)計(jì)孢子萌發(fā)率。
1.4.3 對(duì)膠孢炭疽菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用 采用菌絲生長(zhǎng)速率法[13]測(cè)定不同濃度發(fā)酵上清液對(duì)鐵皮石斛膠孢炭疽菌菌絲生長(zhǎng)的抑制效果,將發(fā)酵上清液與融化的PDA培養(yǎng)基混合,使其分別稀釋5、10、20倍,以加入等體積無菌水的PDA培養(yǎng)基為對(duì)照。倒平板,待冷卻后在平板中心接入膠孢炭疽菌菌絲塊(d=6 mm),每處理設(shè)5個(gè)重復(fù),于28 ℃恒溫培養(yǎng)5 d。采用十字交叉法測(cè)量菌落直徑,計(jì)算抑菌率,并利用SPSS 22.0軟件進(jìn)行單因素方差分析,抑制率(%)=(對(duì)照組菌落直徑-處理組菌落直徑)/(對(duì)照組菌落直徑-6)×100。
采用插片法[14]觀察菌絲的形態(tài),即取5 mL SM905發(fā)酵上清液加入95 mL融化的PDA培養(yǎng)基中,混勻,對(duì)照組培養(yǎng)基中加入等量無菌水,倒平板。將無菌蓋玻片 30度角斜插入凝固的平板,在蓋玻片與培養(yǎng)基交接處接入膠孢炭疽菌菌絲。于28 ℃恒溫培養(yǎng)3 d。取出蓋玻片置于光學(xué)顯微鏡下觀察菌絲生長(zhǎng)狀態(tài),另取少量菌絲于掃描電鏡進(jìn)一步形態(tài)觀察。
試驗(yàn)采用“雁蕩1號(hào)”品種,采用人工接種病原菌,即每盆噴施含孢量為107孢子/mL的鐵皮石斛膠孢炭疽菌孢子懸浮液10 mL,2 d后用于試驗(yàn)。試驗(yàn)設(shè)4個(gè)處理:(1)噴施SM905粉劑100倍液20 mL 1次;(2)間隔7 d噴施SM905粉劑100倍液20 mL 2次;(3)噴施10%苯醚甲環(huán)唑水分散粒劑800倍液20 mL 1次;(4)噴施無菌水20 mL 1次。每處理30盆,重復(fù)3次。每個(gè)處理分別于首次施藥后15、30 d隨機(jī)調(diào)查30株鐵皮石斛,統(tǒng)計(jì)病情指數(shù)并計(jì)算防效。病情分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)為:0級(jí),無病斑;1級(jí),病斑面積占整個(gè)葉面積5%以下;3級(jí),病斑面積占整個(gè)葉面積6%~15%;5級(jí),病斑面積占整個(gè)葉面積16%~25%;7級(jí),病斑面積占整個(gè)葉面積26%~50%;9級(jí),病斑面積占整個(gè)葉面積50%以上。計(jì)算病情指數(shù)和防治效果,病情指數(shù)=Σ(病級(jí)數(shù)×該病級(jí)植株數(shù))/(最大病級(jí)數(shù)×植株總株數(shù))×100,防治效果(%)=(對(duì)照組病情指數(shù)-處理組病情指數(shù))/對(duì)照病情指數(shù)×100,利用SPSS 22.0 軟件進(jìn)行單因素方差分析。
2.1.1 形態(tài)學(xué)、生理生化特征 SM905在營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基上呈淡黃色菌落,表面干燥且粗糙,邊緣不整齊。革蘭氏染色呈陽(yáng)性,短桿狀,兩端鈍圓,單個(gè)、成對(duì)或成串出現(xiàn),橢圓形芽胞,中生到次端生(圖1)。好氧,能利用葡萄、和乳糖、蔗糖、甘露醇和麥芽糖等,發(fā)酵葡萄糖產(chǎn)酸,可水解淀粉和明膠,氧化酶反應(yīng)、V-P反應(yīng)、硝酸鹽還原反應(yīng)和接觸酶反應(yīng)均呈陽(yáng)性。根據(jù)上述特征,初步判斷SM905為芽胞桿菌屬。
圖1 SM905桿狀體(A)、孢囊體(B)、芽胞(C)形態(tài)(100×)Fig. 1 Rod-shaped strain(A), sporangium (B) and spore(C)morphology of strain SM905 (100×)
2.1.2 16S rDNA和gyrB 序列分析 菌株SM905的16S rDNA和gyrB序列Genbank號(hào)分別為OM021868和OM037015,并與相關(guān)屬種進(jìn)行比對(duì),構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2)可以看出,菌株SM905與貝萊斯芽胞桿菌B.velezensis的模式菌株BCRC 17467聚合在一枝,同源性達(dá)99%以上。結(jié)合形態(tài)學(xué)和生理生化特征,將菌株SM905鑒定為貝萊斯芽胞桿菌。
圖2 菌株SM905基于16S rDNA(A)和gyrB(B)序列的進(jìn)化樹Fig. 2 Phylogenetic trees of strain SM905 based on sequences of 16S rDNA (A) andgyrB (B)
2.2.1 對(duì)膠孢炭疽菌的抑菌活性 從圖3可知,SM905對(duì)鐵皮石斛炭疽病菌有較強(qiáng)的抑菌活性,形成了明顯的抑菌帶,界限邊緣整齊,靠近抑菌帶邊緣菌絲稀疏并顏色加深。
圖3 SM905對(duì)膠孢炭疽菌的抑菌活性Fig. 3 Antifungal activity of SM905 againstColletotrichum gloeosporioides
2.2.2 對(duì)膠孢炭疽菌孢子萌發(fā)的影響 與對(duì)照相比,不同稀釋倍數(shù)的 SM905發(fā)酵上清液對(duì)膠孢炭疽菌孢子萌發(fā)率與對(duì)照相比差異不顯著(表1)。從形態(tài)上觀察,SM905發(fā)酵上清液對(duì)新萌發(fā)菌絲生長(zhǎng)抑制明顯,表現(xiàn)為菌絲粗細(xì)不一,分支少,菌絲中部有明顯的膨大,而對(duì)照組菌絲粗細(xì)均勻、舒展,分支多,呈大網(wǎng)狀(圖4)。表明SM905發(fā)酵過程中產(chǎn)生了含有抗膠孢炭疽菌的活性物質(zhì),能顯著抑制其孢子萌發(fā)后新菌絲的生長(zhǎng)。
表1 SM905發(fā)酵上清液對(duì)膠孢炭疽菌孢子萌發(fā)及菌絲生長(zhǎng)的抑制效果Table 1 Inhibitory effect of strain SM905 fermentation filtrate on spore germination and mycelial growth ofC.gloeosporioides
圖4 SM905對(duì)膠孢炭疽菌孢子新萌發(fā)菌絲的影響(400X)Fig. 4 Effect of SM905 against the newly germinated mycelium ofC. gloeosporioides(400X)
2.2.3 對(duì)膠孢炭疽菌菌絲生長(zhǎng)的影響 從表1可以看出,SM905發(fā)酵上清液不同稀釋倍數(shù)對(duì)膠孢炭疽菌菌絲生長(zhǎng)的抑制率存在極顯著差異(P<0.01),隨著稀釋倍數(shù)增大,抑制效果逐漸下降(表1)。SM905發(fā)酵上清液 20倍稀釋液對(duì)膠孢炭疽菌菌絲生長(zhǎng)的抑制率仍大于90%,通過光學(xué)顯微鏡觀察到該濃度處理組氣生菌絲粗細(xì)不一、盤曲折疊,隔膜之間菌絲縮短,菌絲膨大,大量色素積累;基部菌絲產(chǎn)生大量分生孢子。而對(duì)照組膠孢炭疽菌菌絲均勻、光滑、粗壯,菌絲內(nèi)無色素積累現(xiàn)象,無分生孢子產(chǎn)生。進(jìn)一步通過掃描電鏡觀察到處理組菌絲出現(xiàn)大量空洞,菌絲斷裂現(xiàn)象明顯,證實(shí)了SM905對(duì)膠孢炭疽菌菌絲的破壞作用(圖5)。
圖5 SM905對(duì)膠孢炭疽菌菌絲形態(tài)的影響Fig. 5 The effect of strain SM905 on mycelial morphology ofC. gloosporioides
由盆栽試驗(yàn)結(jié)果(表2)可以看出,人工接種病原菌后,對(duì)照組開始陸續(xù)發(fā)病,30 d時(shí)病情指數(shù)為15.78。SM905粉劑100倍液間隔7 d噴施2次,藥后15 d對(duì)鐵皮石斛炭疽病的防效達(dá)83.96%,與噴施1次的防效(55.36%)差異極顯著,但低于10%苯醚甲環(huán)唑800倍液(85.4%);30 d時(shí)防效仍保持在80%,優(yōu)于10%苯醚甲環(huán)唑800倍液(79.28%),顯著優(yōu)于SM905噴施1次防效(50.70%)。表明SM905防治鐵皮石斛炭疽病應(yīng)選擇發(fā)病初期用藥,并且連續(xù)用2次防效更好,持效期更長(zhǎng)。
表2 SM905粉劑防治鐵皮石斛炭疽病的盆栽試驗(yàn)Table 2 Control efficacy of strain SM905 onDendrobiumbium officinaleanthracnose
鐵皮石斛是名貴中藥材,炭疽病是影響其品質(zhì)和產(chǎn)量的重要病害之一。研制安全、高效的生物農(nóng)藥,對(duì)于保障鐵皮石斛質(zhì)量安全,促進(jìn)產(chǎn)業(yè)持續(xù)健康發(fā)展具有重要的研究意義及廣闊的應(yīng)用前景。貝萊斯芽胞桿菌屬于芽胞桿菌屬,該菌首次發(fā)現(xiàn)于西班牙馬拉加的一條名為貝萊斯河的河口。研究表明貝萊斯芽胞桿菌對(duì)引起稻瘟病、梨灰霉病、草莓炭疽病、小麥赤霉病等病害的多種植物病原菌具有抑制作用[15-18],在生物防治方面具有巨大的應(yīng)用潛能。貝萊斯芽胞桿菌對(duì)鐵皮石斛炭疽病的研究局限于實(shí)驗(yàn)室拮抗菌的分離篩選階段。所篩菌株僅在室內(nèi)中表現(xiàn)出拮抗作用還是不夠的,只有在應(yīng)用中依舊表現(xiàn)出良好防效的拮抗菌株,才具有生防應(yīng)用潛力[19]。本研究篩選到一株貝萊斯芽胞桿菌SM905,平板對(duì)峙試驗(yàn)表明該菌對(duì)鐵皮石斛膠孢炭疽菌具有較強(qiáng)的抑制活性。本研究還進(jìn)一步展開了 SM905對(duì)鐵皮石斛炭疽病的盆栽防治試驗(yàn),結(jié)果表明SM905粉劑100倍液對(duì)炭疽病的防效達(dá)80%以上,優(yōu)于10%苯醚甲環(huán)唑800倍液,本說明該菌株具有較強(qiáng)的開發(fā)前景。
各生防菌株的來源不同,產(chǎn)生的拮抗活性物質(zhì)類型不同,其作用機(jī)理也有所差異[20],作用機(jī)理的研究對(duì)建立田間使用技術(shù)十分關(guān)鍵。以往研究表明貝萊斯芽胞桿菌的抑菌機(jī)理為致使病原菌菌絲畸形和降低孢子萌發(fā)率[21-24],相比之下本研究菌株SM905在機(jī)理上有兩個(gè)不同點(diǎn)。SM905僅抑制膠孢炭疽菌孢子萌發(fā)后新菌絲的生長(zhǎng),對(duì)孢子萌發(fā)率本身沒有顯著影響;SM905發(fā)酵上清液 20倍稀釋液能抑制膠孢炭疽菌氣生菌絲的生長(zhǎng),使其膨大畸形、空洞,甚至斷裂,但同時(shí)也發(fā)現(xiàn)其能誘導(dǎo)病原菌基部菌絲在3 d內(nèi)產(chǎn)生大量分生孢子,而對(duì)照組菌絲培養(yǎng)10 d后才開始形成明顯的分生孢子堆,說明SM905發(fā)酵產(chǎn)生的活性物質(zhì)脅迫了病原菌菌絲的生長(zhǎng),加速其老化產(chǎn)孢。分生孢子可以在不良環(huán)境中休眠,如條件合適,則繼續(xù)萌發(fā)生長(zhǎng),侵染植物。因此在實(shí)際應(yīng)用中應(yīng)選擇發(fā)病初期施藥,同時(shí)保證足夠的藥劑濃度,或者通過重復(fù)施藥,以達(dá)到徹底殺滅病原菌菌絲的目的,這一點(diǎn)與盆栽試驗(yàn)結(jié)果吻合。SM905粉劑100倍液施用2次效果優(yōu)于1次。在后續(xù)的研究中,我們將進(jìn)一步開展SM905的發(fā)酵工藝研究、活性物質(zhì)的分離鑒定以及田間應(yīng)用技術(shù)研究,希望能為鐵皮石斛的安全生產(chǎn)提供一種新型高效的生防制劑。