陳少宇,袁莉剛,楊洪早,陶金忠,丁偉
(1. 甘肅農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院,甘肅 蘭州 730070;2. 寧夏大學農(nóng)學院,寧夏 銀川 750021;3. 寧夏農(nóng)林科學院動物科學研究所,寧夏 銀川 750021)
胰島素樣因子3(insulin-like factor3,INSL3)是胰島素樣激素超家族中的一員,由131 個氨基酸組成,又稱松弛素樣因子,因其特異性表達于Leydig細胞,被稱為Leydig 細胞源胰島素樣肽[1]。INSL3 具有廣泛的生物活性和功能,可促進細胞的增殖和分化,調(diào)節(jié)機體出生后的生長發(fā)育[2]。嬰兒出生后睪丸從腹腔下降至陰囊中,其下降過程可分為腹腔內(nèi)下降及腹股溝下降兩個階段。INSL3在腹腔內(nèi)下降過程中發(fā)揮了重要作用,INSL3 在成年小尾寒羊睪丸的表達量較其他組織高,是睪丸發(fā)育成熟的指標[2-3]。INSL3 在出生前后的Leydig 細胞中特異性表達,雄性大鼠血液中的INSL3 濃度從出生第10 天開始升高,并一直持續(xù)到分娩第39 天達到成年水平[1]。INSL3在出生前后的高水平表達對胚胎及初生時期睪丸形態(tài)及功能的發(fā)育有重要調(diào)節(jié)功能。研究表明,在人[3]和小鼠[4]中,若INSL3 的表達缺失或低于正常水平時會造成隱睪癥的發(fā)生。INSL3與Leydig細胞的數(shù)量及分化狀態(tài)密切相關(guān),是Leydig 細胞分化的標志。研究表明,在公牛青春期以前未成熟的Leydig細胞中,其表達量極少[5]。在衰老小鼠Leydig細胞中水平明顯下降[6]。有證據(jù)表明,公牛[5]、大鼠[7]和人[5]等睪丸INSL3 在RNA 水平或蛋白水平隨年齡而變化,由于雄激素對垂體的反饋作用,性成熟初期雄激素及INSL3 穩(wěn)定在較低的水平。因此,INSL3 表達水平隨睪丸的發(fā)育及調(diào)節(jié)機能改變而變化。
灘羊是我國獨特的裘皮用綿羊,其生長發(fā)育的特殊時期(出生到30 d 左右)表現(xiàn)獨特的二毛皮特性,主要受胚胎發(fā)育和生態(tài)環(huán)境因素等方面的影響,尤其是二毛皮被毛卷曲的形成受遺傳因素及營養(yǎng)管理等影響明顯[8]。INSL3在動物出生前后對生長發(fā)育有重要調(diào)節(jié)功能。灘羊早期生長發(fā)育相關(guān)影響因子密切關(guān)系到灘羊二毛皮的特征表現(xiàn),為此,本研究通過組織化學染色、免疫組織化學法和免疫熒光技術(shù),對初生及35日齡(二毛皮)灘羊睪丸組織中纖維成分、糖原及INSL3等成分的分布進行比較分析,探究其生長發(fā)育特點,為灘羊二毛皮形成期的遺傳和生殖發(fā)育研究提供參考。
1.1.1 試驗動物 樣品采自寧夏回族自治區(qū)吳忠市灘羊選育中心,采用睪丸摘除手術(shù)收集初生及35日齡灘羊正常睪丸,4 mL/L 福爾馬林固定液中備用。
1.1.2 主要藥品試劑及儀器 Masson三色染色試劑(S0075)、網(wǎng)狀纖維染色試劑(S0071);兔源抗胰島素樣因子3(INSL3);熒光素Alexa Fluor 555標記鏈霉親和素(bs-0437P-AF555);DAPI 染色液(D-9106);抗熒光淬滅封片液(C02-04003);免疫組化染色試劑盒(SP-0023,美國ZYMED 生產(chǎn)),以上材料均購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司。DAB 顯色試劑盒(ZLI-9018,購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司)。
Epon812包埋機,NIKON ECLIPSE 80i顯微攝像系統(tǒng),LKB8800型超薄切片機,正倒置一體熒光顯微鏡(RVL100-G,ECHO,USA),激光掃描共聚焦顯微鏡(LSM800,Carl Zeiss,Germany)。
1.2.1 樣品制備 新鮮組織樣品切取1 cm×1 cm×0.6 cm 大小,經(jīng)4 mL/L福爾馬林固定液固定一周備用;常規(guī)梯度酒精脫水,石蠟包埋,超薄切片機連續(xù)切片(片厚4 μm),相鄰切片分為10套。
1.2.2 特殊染色方法 蘇木精-伊紅(H.E)常規(guī)染色;Masson 膠原纖維染色,膠原纖維和細胞核呈藍色;Gomori 銀氨法染色(Gordon-Sweets method),網(wǎng)狀纖維呈黑色,細胞核呈紅色,細胞質(zhì)呈淡黃色;阿利新藍染色(Alcian,AB),酸性糖原類物質(zhì)呈藍色,細胞核為紅色;PAS 過碘酸雪夫染色(periodic acid-schiff stain,PAS),中性糖原類物質(zhì)呈紅色,細胞核呈藍色;AB-PAS 染色,糖原、中性黏蛋白等呈紫紅色,酸性糖原類物質(zhì)呈藍色。
1.2.3 免疫組織化學法 1)石蠟切片常規(guī)脫蠟;2)PBS 振洗3次,每次5 min,高壓法暴露抗原,冷卻至室溫,PBS 振洗;3)滴加30 g/L H2O2阻斷過氧化物酶活性,37 ℃孵育15 min,隨后PBS 振洗3 次,每次5 min;4)滴加山羊血清白蛋白,37 ℃孵育15 min 后傾去血清;5)分別滴加胰島素樣受體INSL3 (稀釋度1∶400),陰性對照組用PBS 代替抗體,37 ℃孵育4 h后PBS 振洗;6)滴加生物素標記山羊抗兔IgG 二抗工作液,孵育15 min;PBS振洗;7)依次滴加50 μL辣根酶標記鏈霉卵白素工作液,37 ℃孵育,PBS 振洗;8)滴加新鮮配制的DAB顯色液置于暗盒顯色,常規(guī)脫水、透明、封片。觀察時,棕褐色顯示陽性區(qū)域,蘇木精將細胞核染成藍色。
1.2.4 免疫熒光法 操作步驟均與免疫組織化學相同,將生物素標記山羊抗兔IgG 二抗替換為熒光素Alexa Fluor 555 標記鏈霉親和素(稀釋度1∶800)孵育2 h,PBS 振洗3 次,每次5 min;DAPI染色液孵育10 min后PBS 振洗,抗熒光淬滅封片液封片。采用激光掃描共聚焦顯微鏡觀察拍照。觀察時,紅色組織顯示AF555 的熒光著色;藍色組織表示DAPI標記的核熒光著色。
切片在NIKON ECLIPSE 80i 顯微攝像系統(tǒng)進行照相。每組隨機選取5張切片,分別拍攝8個不重復視野(×1 000)。用Image Pro Plus 6.0 軟件統(tǒng)計每個視野下橫切面圓管形生精小管內(nèi)Sertoli 細胞數(shù),生精小管管徑、橫截面積及周圍間質(zhì)組織面積,進而計算間質(zhì)面積/管腔截面積,同時檢測免疫組化陽性反應(yīng)物的平均光密度值,用統(tǒng)計軟件SPSS 23.0對數(shù)據(jù)進行單因素方差分析。免疫熒光染色在蔡司LSM 800 激光掃描共聚焦顯微鏡觀察拍照。每組隨機選取5 張切片,每張切片拍攝6 個不重復視野(×400)。檢測免疫組化陽性反應(yīng)物的平均光密度值,所得統(tǒng)計數(shù)據(jù)使用SPSS 23.0統(tǒng)計學軟件進行單因素方差分析,以“平均值±標準差”表示,P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。結(jié)果采用半定量的形式對染色結(jié)果的分布密度進行描述,-:無陽性表達;+/-:偶有陽性表達; +:陽性表達; + +:中等強度陽性表達; + + +:強陽性表達; + + + +:高密度強陽性表達。
初生灘羊生精小管尚未出現(xiàn)空腔,由1層Sertoli細胞和少量生殖母細胞構(gòu)成,Sertoli沿固有膜分布,胞漿豐富,突向管腔中央,胞核呈圓形,可見分裂象;生殖母細胞多位于生精小管中央,細胞核深染,呈卵圓形(圖1-A);Leydig 細胞成群分布于睪丸間質(zhì)組織,核多呈橢圓形或不規(guī)則形。生精上皮固有膜HE著色較深,管周肌樣細胞呈單層分布于固有膜外周,核呈長梭形,膠原纖維豐富(圖1-B);Leydig細胞群及生精小管固有膜中網(wǎng)狀纖維分布明顯(圖1-C);生精小管基膜AB染色呈弱陽性(圖1-D),PAS染色呈陽性反應(yīng)(圖1-E);AB-PAS 染色藍紫色條帶明顯,偶有Leydig細胞呈酸性糖原亮藍色強陽性表達。(圖1-F)。
35日齡灘羊生精小管亦無明顯空腔,由1~2層Sertoli細胞和生殖母細胞構(gòu)成,Sertoli細胞緊貼固有膜排列;生殖母細胞核深染,呈卵圓形,胞漿豐富,個別生殖母細胞接近于生精小管管壁分布(圖1-G);Leydig 細胞數(shù)量增多,部分細胞核深染。生精上皮固有膜膠原纖維和網(wǎng)狀纖維分布增加(圖1-H、圖1-I);AB 染色在生精小管基膜處陽性反應(yīng)明顯(圖1-J);生殖母細胞PAS染色陽性反應(yīng)增強(圖K);ABPAS 染色在生精小管固有膜上紫紅色條帶增強,Leydig細胞呈紫紅色強陽性數(shù)量增加明顯(圖1-L)。
圖1 初生及35日齡灘羊睪丸組織化學特征Figure 1 Histochemical characteristics of testicle of newborn and 35 day-old Tan sheep
統(tǒng)計結(jié)果表明,初生與35日齡灘羊Sertoli細胞數(shù)差異顯著(P<0.01),35日齡灘羊生精小管平均直徑較初生灘羊有明顯增長(P<0.01),生精小管面積極顯著增大(P<0.01);間質(zhì)/管腔截面積比差異顯著(表1)。35日齡相對初生灘羊Leydig細胞其細胞核明顯縮??;Sertoli 細胞胞質(zhì)顯著增大(P<0.05);管周肌樣細胞增大(P<0.05),生殖母細胞胞質(zhì)未有明顯差異(P>0.05),細胞核縮小,管腔內(nèi)各細胞核質(zhì)比均顯著下降(P<0.05)(表2)。
表1 初生及35日齡灘羊睪丸生精小管特征指數(shù)Table 1 The characteristics of spermatogenic tubules in testes of newborn and 35 day?old Tan sheep(±s,n=40)
表1 初生及35日齡灘羊睪丸生精小管特征指數(shù)Table 1 The characteristics of spermatogenic tubules in testes of newborn and 35 day?old Tan sheep(±s,n=40)
同列相同字母表示差異不顯著 (P>0.05),相鄰字母表示差異顯著(P<0.05),相間字母表示差異極顯著(P<0.01)。Column with the same letters mean no significant difference (P>0.05),the adjacent small letters mean significant difference(P<0.05); the alternate small letters mean extremely significant difference (P<0.01).
組別Group初生灘羊Newborn Tan sheep 35日齡灘羊35 days Tan sheep Sertoli細胞數(shù)/(個·生精小管-1)Number of Sertoli cells per seminiferous tubule 11.53±0.86 a 15.87±1.25 b管腔直徑/μm Lumen diameter 34.51±0.65 a 43.31±0.62 b管腔截面積/μm2 Lumen area 935.01±34.64 a 1 473.01±42.36b間質(zhì)組織截面積/管腔截面積Interstitial tissue area/lumen area 1.17±0.16 a 0.90±0.16 b
表2 初生及35日齡灘羊睪丸組織部分細胞特征指數(shù)Table 2 The characteristic index of some cells in the testicular tissue of the newborn and 35?day?old Tan sheep (±s,n=40)
表2 初生及35日齡灘羊睪丸組織部分細胞特征指數(shù)Table 2 The characteristic index of some cells in the testicular tissue of the newborn and 35?day?old Tan sheep (±s,n=40)
同行相同字母表示差異不顯著(P>0.05),相鄰字母表示差異顯著(P<0.05),相間字母表示差異極顯著(P<0.01)。Column with the same letters mean no significant difference (P>0.05),the adjacent small letters mean significant difference(P<0.05),the alternate small letters mean extremely significant difference (P<0.01).
指標Index細胞平均截面積/μm2Average cell crosssectional area細胞核平均截面積/μm2Average cell nuclear Crosssectional area核質(zhì)比Nucleo-cytoplasmic ratio Leydig細胞Leydig cells初生Newborn 67.43±5.24 a 26.09±6.37 a 0.68±0.28 a 35日齡35 d ays 58.08±9.18 b 19.04±3.89 b 0.50±0.13 b Sertoli細胞Sertoli cells初生Newborn 79.12±5.31 a 29.01±3.67 a 0.58±0.10 a 35日齡35 days 92.36±17.71 b 30.71±6.87 a 0.50±0.05 b生殖母細胞Gonocytes初生Newborn 117.17±9.90 a 47.45±7.96 a 0.70±0.16 a 35日齡35 days 116.24±17.36 a 43.59±6.62 b 0.62±0.14 b管周肌樣細胞Peritubular myold cells初生Newborn 46.66±11.97 a 21.84±5.63 a 0.92±0.19 a 35日齡35 days 56.91±27.61 b 21.85±9.41 a 0.68±0.24 b
免疫組化結(jié)果顯示,INSL3 在初生灘羊睪丸組織Leydig 細胞呈強陽性表達,生殖母細胞呈中等強陽性表達,Sertoli細胞呈陽性表達,管周肌樣細胞偶有陽性表達(圖2-A);陰性對照組未有陽性表達(圖2-B);INSL3 在35 日齡睪丸組織Leydig 細胞、生殖母細胞呈中等陽性表達,Sertoli 細胞和管周肌樣細胞偶有陽性表達(圖2-C);陰性對照未見陽性表達(圖2-D)。免疫組織熒光所得結(jié)果顯示,初生灘羊睪丸組織中Leydig 細胞紅色陽性表達明顯,生殖母細胞、Sertoli細胞、管周肌樣細胞發(fā)出的陽性表達較弱(圖2-E,2-F,2-G),陰性對照組無表達(圖2-H);35日齡灘羊生殖母細胞、Sertoli細胞、管周肌樣細胞發(fā)出的陽性表達相對較弱(圖2-I,圖2-J,圖2-K)。平均光密度值統(tǒng)計結(jié)果顯示(圖3,表3),35 日齡睪丸組織INSL3 表達量相對初生睪丸組織顯著下降(P<0.05),且Leydig 細胞、Sertoli 細胞、生殖母細胞、管周肌樣細胞中INSL3 表達水平顯著降低(P<0.05)。
圖2 INSL3在初生及35日齡灘羊睪丸組織分布定位比較Figure 2 Comparison of the distribution of INSL3 in testicular tissue of newborn and 35 day-old Tan sheep
表3 INSL3在灘羊睪丸中不同細胞陽性分布統(tǒng)計Table 3 Positive distribution statistics of INSL3 in different cells in testis of Tan sheep
圖3 INSL3在初生及35日齡灘羊睪丸中平均光密度值統(tǒng)計結(jié)果Figure 3 Statistical results of average optical density of INSL3 in testis of newborn and 35 day-old Tan sheep
哺乳動物的睪丸組織在性成熟前發(fā)育明顯,其生精功能隨之發(fā)生變化。湖羊在初生至60日齡生精小管內(nèi)出現(xiàn)精原細胞和Sertoli 細胞[9]。Sertoli 細胞是決定精原干細胞(Spermatogonial stem cells,SSCs)分化命運的關(guān)鍵細胞,動物性成熟前后Sertoli細胞通過不同信號通路的激活控制著SSCs 增殖和細胞分化相關(guān)因子的表達[10]。研究表明,大鼠出生后Sertoli細胞快速增殖[7];3月齡牦牛的生精小管以大量處于分裂期的幼稚型Sertoli細胞為主[11]。與此相一致,本試驗中初生及35日齡的灘羊生精小管尚未形成管腔,管內(nèi)主要為Sertoli 細胞及尚未分化的生殖母細胞。亦有研究表明:江香豬的Sertoli 細胞數(shù)量從15 日齡到30 日齡并沒有顯著的增加[12]。這種區(qū)別可能是由于物種間發(fā)育特點的差異所致。
幼稚Sertoli細胞核近圓形,表面有小凹陷,成熟后細胞核凹陷加深,細胞停止分裂并出現(xiàn)細胞間連接復合體[11]。研究表明,初生小鼠生精小管呈實心的索狀[13]。大鼠生精小管平均面積從出生至3月齡迅速增大并達到最大值[7]。本研究中,初生及35 日齡灘羊Sertoli 細胞均為幼稚型,分布于生精小管基底部固有膜內(nèi)側(cè),胞質(zhì)呈錐形并突向管腔中央。35日齡灘羊生精小管的平均截面積相比初生灘羊顯著增大;Sertoli細胞數(shù)量增多,提示35日齡灘羊的生精小管管徑增加主要是以Sertoli 細胞的數(shù)量增加為主。
生殖母細胞是介于原始生殖細胞和精原干細胞間過渡態(tài)的細胞類型[14]。動物出生后的早期發(fā)育階段,生殖母細胞遷移至睪丸生精小管基膜附近并分化為精原細胞[1]。研究發(fā)現(xiàn),1月齡山羊睪丸中存在大量位于生精小管中央的生殖母細胞,部分遷移到生精小管邊緣[15]。研究報道,新生田鼠生殖母細胞數(shù)量較少,隨發(fā)育向生殖細胞索周邊遷移[16]。與此相一致,本試驗中初生灘羊生殖母細胞多位于生精小管中央,而35日齡灘羊的生殖母細胞已有部分位于生精小管基膜周圍,提示生殖母細胞逐漸向管壁遷移。
Leydig細胞是睪丸組織中分泌睪酮的重要體細胞,其發(fā)育過程中存在胚胎型Leydig 細胞(Fetal Leydig cells,F(xiàn)LCs)和成年型Leydig 細胞(Adult Leydig cells,ALCs)[17]。Leydig 細胞的發(fā)育及分化一般只限于胚胎發(fā)生和青春期初期,一旦形成后,其細胞數(shù)量不會再發(fā)生顯著變化[18]。初生小鼠睪丸間質(zhì)中僅有分化較低且無分泌功能的間質(zhì)祖細胞(pro?genitor LC,PLCs),出生后28~35 d,PLCs逐漸分化為具有分泌功能的未成熟間質(zhì)細胞(immature LC,ILCs),PLCs與ILCs在形態(tài)上最大的差異是從紡錘形變?yōu)閳A形,細胞核也變大[19]。研究表明,初生小香豬睪丸中存在大量形態(tài)較小的Leydig細胞,1月齡時則出現(xiàn)大的Leydig 細胞,生精小管單位面積Leydig細胞數(shù)量減少[20]。本試驗中,初生至35日齡的灘羊Leydig 細胞核明顯縮小,核質(zhì)比下降,核由橢圓形、不規(guī)則形逐漸趨向圓形,且細胞核深染;提示初生至35日齡的灘羊Leydig類型由PLCs向ILCs分化。
管周肌樣細胞是圍繞生精小管呈環(huán)形排列的類肌成纖維細胞,即有成纖維細胞的特點又有平滑肌細胞的特性,細胞扁平呈星形或長形,核橢圓,與Sertoli 細胞一起形成精原干細胞龕的細胞邊界[21]。研究表明,管周肌樣細胞會產(chǎn)生膠質(zhì)細胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(GDNF),并向未分化的精原細胞發(fā)出信號,參與精原細胞與Sertoli 細胞的功能調(diào)節(jié)[22]。本試驗中管周肌樣細胞呈單層環(huán)形分布于固有膜外周,初生至35日齡灘羊管周肌樣細胞增加且隨生精小管的增大而更加細長,提示管周肌樣細胞形態(tài)發(fā)育趨勢與生精小管體積的增大保持一致,其功能變化有待于進一步研究。
睪丸組織中糖類物質(zhì)是精子發(fā)生所必須的營養(yǎng),通過血管及固有膜提供給生精上皮。研究表明,睪丸中細胞能量代謝是Sertoli細胞通過葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白(GLUT)將睪丸間質(zhì)中的葡萄糖進行糖酵解,產(chǎn)生的乳酸通過單羧酸轉(zhuǎn)運蛋白(MCT)轉(zhuǎn)運出細胞外供生精細胞利用[23]。王乾梅等[24]研究表明,正常山羊生精小管周圍分布有較多的酸性糖原。PAS及AB-PAS 陽性反應(yīng)的糖原,糖蛋白以及蛋白多糖存在于睪丸結(jié)締組織,粘液以及基膜中,健康大鼠睪丸PAS陽性反應(yīng)隨生精細胞的成熟而逐漸增強,糖原類物質(zhì)代謝與正常睪丸發(fā)育水平呈正比[25]。而老齡牦牛睪丸間質(zhì)血管及生精小管固有膜中PAS 及AB-PAS陽性反應(yīng)增強與間質(zhì)組織中結(jié)締組織合成增加有關(guān)[26]。因此,隨著睪丸的發(fā)育,睪丸內(nèi)多糖類物質(zhì)的增多與睪丸發(fā)育水平呈正相關(guān),本研究中,初生至35日齡灘羊的生精小管固有膜上糖原類物質(zhì)分布增加,且酸性糖原的增長明顯,表明在睪丸發(fā)育過程中酸性糖類物質(zhì)代謝優(yōu)于其他糖類成分。
研究發(fā)現(xiàn),小鼠睪丸間質(zhì)結(jié)締組織的變化可能會影響睪丸局部代謝,其與生精上皮的發(fā)育以及精子的發(fā)生密切相關(guān)[27]。幼齡期牦牛睪丸組織被膜發(fā)育基本完善,結(jié)締組織部分主要為膠原纖維,隨著牦牛發(fā)育,睪丸內(nèi)網(wǎng)狀和膠原纖維逐漸致密并同步增長;性成熟前牦牛睪丸間質(zhì)組織中膠原纖維含量較少,網(wǎng)狀纖維較多[28]。藏綿羊生精小管外周膠原纖維分布明顯,Leydig 細胞散在分布于豐富的膠原纖維之間,固有膜及血管外周的網(wǎng)狀纖維較豐富[29]。本研究中,35日齡較初生灘羊睪丸間質(zhì)中膠原分布有明顯增長,網(wǎng)狀纖維分布變化不明顯,表明網(wǎng)狀纖維在灘羊睪丸發(fā)育過程中形成較早,其生成早于膠原纖維。
INSL3 為Leydig 胰島 素樣因子 或Leydig 細胞特異性胰島素樣肽(LEY-IL)[30]。正常男性,INSL3主要表達于出生前和出生后Leydig 細胞,胎兒期Leydig 細胞上高表達,對引帶及睪丸的發(fā)育起到促進作用[3]。嬰兒出生后其表達量逐漸下降至青春期前最低。研究證實,人類男性胚胎期血清INSL3 濃度是青春期前的2~4倍,青春期Leydig細胞逐漸成熟,血清INSL3水平會再度升高,對睪丸的成熟起到重要作用[31]。本研究中,INSL3在初生和35日齡灘羊Leydig 細胞中均有較高的陽性表達,提示在早期發(fā)育階段Leydig 細胞可以通過分泌INSL3 調(diào)控睪丸組織的發(fā)育;在初生至35日齡灘羊的Leydig細胞中INSL3 表達強度顯著下降,這可能與FLCs 細胞在睪丸組織中所占比例逐漸減少有關(guān)。
INSL3 可抑制公豬睪丸的生殖細胞凋亡[32],刺激小鼠Leydig 細胞系TM3 在體外的增殖[33]。Sa?bine H K 等[34]研究表明,INSL3 在生殖細胞有絲分裂高峰時Sertoli 細胞中高表達,從而間接影響精原細胞的分裂,提示INSL3 在介導促性腺激素作用中的重要性。本研究中,INSL3在Sertoli細胞、管周肌樣細胞中生殖母細胞INSL3 的表達量相對較弱,且隨時間推移呈下降趨勢,提示INSL3 的含量與生殖母細胞的發(fā)育呈負相關(guān)。
綜上所述,初生及35日齡灘羊生精小管管腔尚未形成,生精小管以未成熟的Sertoli細胞為主,并隨著Sertoli 細胞數(shù)量和體積的增加而增大;灘羊初生至35日齡睪丸發(fā)育過程中,酸性糖類物質(zhì)代謝優(yōu)于其他糖類成分,網(wǎng)狀纖維生成早于膠原纖維。INSL3 對睪丸生精細胞無明顯調(diào)節(jié)作用;其表達降低與Leydig 細胞中FLCs 細胞群逐漸減少相一致。本研究為INSL3 對Leydig 細胞分泌功能調(diào)控機制的研究提供了參考。