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        外源ABA對鎘脅迫下柳枝稷生理特性及鎘吸收的影響

        2022-02-15 03:42:26方志剛紀燕玲婁來清蔡慶生
        草地學報 2022年1期
        關(guān)鍵詞:柳枝脯氨酸外源

        肖 霄, 方志剛, 紀燕玲, 婁來清, 常 明, 蔡慶生*

        (1. 南京農(nóng)業(yè)大學生命科學學院, 江蘇 南京 210095; 2. 喀什大學生命與地理科學學院, 新疆 喀什 844000)

        人類的頻繁活動如化肥和農(nóng)藥的不合理施用、制造業(yè)及采礦業(yè)迅速發(fā)展,導致水體及土壤環(huán)境中的重金屬鎘(Cd)污染加劇。利用與修復Cd污染的邊際土地是環(huán)境科學、植物學及生態(tài)學等領(lǐng)域關(guān)注的熱點。近年來,許多研究表明,在重金屬污染土壤中開展能源植物的生長調(diào)控研究,可實現(xiàn)生物質(zhì)原料生產(chǎn)與污染土壤治理及開發(fā)的雙贏[1-3]。柳枝稷(Panicumvirgatum)是多年生C4植物,生物產(chǎn)量最高可達74 t·hm-2,能源轉(zhuǎn)化率高,且不進入食物鏈,被譽為最有發(fā)展?jié)摿Φ哪茉床輀4-6]。前期的研究表明,柳枝稷對Cd具有較強的富集能力,適合于在Cd污染土地中種植,是修復重金屬污染土地的良好材料[7]。

        Cd在土壤或水體中極易被植物吸收,當介質(zhì)中的Cd達到一定濃度時,會干擾植物對礦質(zhì)元素的吸收,誘發(fā)氧化脅迫,直接或間接影響細胞內(nèi)各種生理代謝及脫落酸(ABA)、乙烯(ETH)等植物激素的合成和轉(zhuǎn)運[8]。其中,ABA由葉黃素合成,是一種倍半萜烯化合物[9],它可以促進植物的衰老和脫落,還能夠通過全面調(diào)節(jié)細胞的生理代謝來影響植物的生長和發(fā)育。作為一種逆境激素,ABA參與包括重金屬脅迫在內(nèi)的多種非生物脅迫。外源ABA調(diào)控植物Cd耐性已有諸多報道,例如在水培液中,添加0.5 μmol·L-1ABA可通過提高小麥(Triticumaestivum)根系活力和葉片抗氧化酶活性,增強小麥對Cd的耐受性[10]。水培液中添加5 μmol·L-1ABA可抑制甘藍型油菜(Brassicanapus)地上部和根系中Cd的吸收,減小Cd對甘藍型油菜的毒害作用[11]。然而,關(guān)于外源ABA在柳枝稷響應Cd脅迫中的作用研究相對較少。

        本研究以能源植物柳枝稷為試驗材料,在Cd脅迫下,通過外源ABA預處理,從植株根系形態(tài)、水分代謝及Cd吸收等角度,分析外源ABA對Cd脅迫下柳枝稷幼苗生長、根系活力、膜脂過氧化產(chǎn)物、脯氨酸及Cd積累等指標的影響,探尋ABA緩解柳枝稷Cd毒害可能產(chǎn)生的生理機制,為外源ABA促進柳枝稷在Cd污染環(huán)境中的生長及Cd吸收機制提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 植物材料培養(yǎng)

        柳枝稷種子來源于美國ERNST SEEDS公司,選擇低地型品種‘Alamo’和高地型品種‘Cave in Rock’為試材。種子用50%的硫酸浸泡30 min以破除種子休眠,去離子水洗凈表面硫酸后,用10%次氯酸鈉浸泡消毒10 min,然后用去離子洗凈,播于鋪有雙層濾紙的培養(yǎng)皿中。將培養(yǎng)皿置于暗處,5~7 d后,種子萌發(fā),移至光下培養(yǎng)一周,選擇長勢均勻的幼苗移入盛有1 L四分之一霍格蘭營養(yǎng)液的塑料盆中,適應生長一周后換為二分之一霍格蘭營養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。植物材料培養(yǎng)期間,營養(yǎng)液每3 d更換一次,用NaOH或HCl溶液調(diào)整營養(yǎng)液的pH值為5.8,并調(diào)換盆砵位置以降低邊緣效應。種子萌發(fā)及幼苗培養(yǎng)期間的溫度為28℃~30℃,濕度50%~70%;幼苗培養(yǎng)的光照強度為50 μmol·m-2·s-1,光照/黑暗時間各為12 h。

        1.2 試驗處理

        柳枝稷幼苗培養(yǎng)30 d左右,幼苗長至5葉期時開始處理,試驗設(shè)4個處理組,分別為CK(對照,單獨霍格蘭營養(yǎng)液處理)、ABA,Cd及ABA+Cd。其中,ABA處理方式為:霍格蘭營養(yǎng)液的基礎(chǔ)上添加1 μmol·L-1ABA預處理2 d后,換為霍格蘭營養(yǎng)液培養(yǎng)。Cd處理方式為:霍格蘭營養(yǎng)液基礎(chǔ)上添加20 μmol·L-1Cd2+(以CdCl2·2.5H2O形式添加)。ABA + Cd的處理方式:1 μmol·L-1ABA預處理2 d后換為含20 μmol·L-1Cd2+的霍格蘭營養(yǎng)液進行培養(yǎng)。每個處理3次重復,根據(jù)前期預試驗結(jié)果,共處理9 d,收獲植物材料。

        1.3 指標測定方法

        1.3.1生物量及Cd含量的測定 收獲后的柳枝稷幼苗浸泡于20 mmol·L-1EDTA-Na2溶液中20 min,以去除附著在根系表面的Cd2+,再用去離子水沖洗干凈,將地上部與根部分離后,于70℃烘箱內(nèi)烘干至恒重,記錄干重(DW)。烘干后的樣品剪碎后,每份稱取0.2 g,置于消煮管內(nèi),分別加入5 mL HNO3,使用高效微波消解系統(tǒng)消解45 min,冷卻后定容至50 mL。使用電感耦合等離子發(fā)射光譜儀(ICP-OES)測定Cd含量[12]。

        1.3.2根系形態(tài)參數(shù)的測定 取柳枝稷幼苗根系,平鋪于透明塑料盒中,加入適量去離子水使根系漂浮,當根系分散無重疊時,用EPSON掃描儀將根系掃描生成電子圖片。根系形態(tài)參數(shù)如總根長(Total root length,RL)、根表面積(Root surface area,RA)、根體積(Root volume,RV)、根尖數(shù)(Number of root tips,RT)等指標用根系分析軟件[WinRHIZO software (V5.0,Regent Instruments,Quebec,Canada Inc.)]進行分析。

        1.3.3葉片相對含水量的測定 取新鮮的柳枝稷幼苗葉片,記錄其鮮重(FW),置于蒸餾水中浸泡4 h后,吸干葉片表面水分記錄飽和鮮重(TW),后放入70℃烘箱,烘干至恒重后,記錄葉片干重(DW)。按照以下公式[13]計算出葉片相對含水量:

        1.3.4根系活力、脯氨酸含量、丙二醛含量的測定 參考蔡慶生的方法[14],根系活力用TT苯基氯化C(2,3,5-三四氮唑)法測定,根系和葉片的丙二醛用硫代巴比妥酸法測定,脯氨酸含量用磺基水楊酸提取,用5600PC型紫外可見分光光度計測定。

        1.4 數(shù)據(jù)分析

        試驗數(shù)據(jù)用SPSS 23.0軟件進行方差分析,采用Duncan’s多重比較,檢驗不同處理間差異顯著性(P< 0.05)。數(shù)據(jù)以“平均值±標準差”表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 外源ABA預處理對Cd脅迫下柳枝稷幼苗生物量的影響

        不同處理條件下,柳枝稷幼苗生物量變化如圖1所示。與CK相比,Cd處理顯著降低了柳枝稷幼苗的干重(P< 0.05),‘Alamo’地上部與根部干重分別降低62.2%和60.8%,‘Cave in Rock’地上部與根部干重則分別降低49.6%和68.5%,‘Alamo’和‘Cave in Rock’整株干重分別降低61.7%和57.1%。與單獨Cd處理相比,外源1 μmol·L-1ABA預處理后,2個品種地上部與根部干重均顯著增加(P<0.05)(圖1A~1B)。其中,‘Alamo’的地上部和根部干重分別增加39.0%和35.4%;‘Cave in Rock’則分別增加25.0%和40.7%。單獨ABA處理沒有顯著影響柳枝稷根系和地上部干重。

        圖1 ABA對Cd脅迫下柳枝稷地上部(A),根部(B) 和整株(C)干重的影響Fig.1 Effects of ABA on dry weight of shoot (A) and root (B) under Cd stress注:不同小寫字母表示不同處理之間存在顯著差異(P<0.05),下同Note:Different lowercase letters indicate significant differences between different treatment at the 0.05 level,the same as below

        2.2 外源ABA預處理對Cd脅迫下柳枝稷根系形態(tài)的影響

        與CK相比,20 μmol·L-1Cd處理顯著抑制了柳枝稷的總根長(RL),根表面積(RS),根體積(RV)及根尖數(shù)(RT)(P<0.05)。上述指標中,‘Alamo’分別降低53.9%,38.2%,51.1%和81.8%,‘Cave in Rock’則分別降低44.8%,32.4%,69.5%和88.0%。1 μmol·L-1外源ABA預處理后,總根長,根表面積,根體積及根尖數(shù)與單獨Cd處理相比均顯著增加(圖2A~2D)。其中,‘Cave in Rock’的總根長及根表面積恢復至CK水平(圖2A~2B)。與Cd處理相比,‘Alamo’的根體積增加84.2%,根尖數(shù)增加282%;‘Cave in Rock’的根體積和根尖數(shù)分別增加134.4%和412.1%(圖2C~2D)。

        圖2 外源ABA預處理對Cd脅迫下柳枝稷根系形態(tài)的影響Fig.2 Effects of ABA on root morphology of switchgrass under Cd stress注:A,B,C,D分別代表總根長,根表面積,根體積和根尖數(shù)Note:A,B,C and D indicate root length,root surface area,root volume and number of root tips,respectively

        2.3 外源ABA預處理對Cd脅迫下柳枝稷根系活力和葉片含水量的影響

        與CK相比,20 μmol·L-1Cd處理使柳枝稷幼苗根系活力和葉片相對含水量顯著降低(P<0.05)。其中,‘Alamo’和‘Cave in Rock’的根系活力分別降低55.0%和52.9%,葉片相對含水量分別降低2.7%和4.8%。1 μmol·L-1ABA預處理后,2個品種的根系活力和葉片相對含水量相比Cd處理顯著升高(圖3A~3B)(P<0.05),‘Alamo’和‘Cave in Rock’的根系活力分別升高了45.4%和35.4%(圖3A),葉片相對含水量分別升高了1.3%和1.1%(圖3B)。

        圖3 ABA對Cd脅迫下柳枝稷根系活力和相對含水量的影響Fig.3 Effects of ABA on root activity and RWC of switchgrass under Cd stresses

        2.4 外源ABA預處理對Cd脅迫下柳枝稷體內(nèi)脯氨酸含量的影響

        不同處理條件下,‘Alamo’體內(nèi)脯氨酸含量均高于‘Cave in Rock’。與CK相比,20 μmol·L-1Cd處理使2個品種柳枝稷的地上部和根部的脯氨酸含量顯著增加(P< 0.05)。1 μmol·L-1外源ABA預處理后,2個柳枝稷地上部和根部的脯氨酸含量與Cd處理相比均顯著增加(P< 0.05)。其中,‘Alamo’地上部和根部分別增加19.1%和11.2%;‘Cave in Rock’分別增加24.0%和23.5%。

        圖4 ABA對Cd脅迫下柳枝稷不同組織中脯氨酸含量的影響Fig.4 Effects of ABA on the Pro concentration in different tissues of switchgrass under Cd stress注:A,B分別代表地上部和根部Note:A,B indicates root and shoot,respectively

        2.5 外源ABA預處理對Cd脅迫下柳枝稷丙二醛(MDA)含量的影響

        20 μmol·L-1Cd處理下,柳枝稷葉片和根系中MDA含量與CK相比均顯著增加(P<0.05),其中,‘Alamo’地上部與根部MDA含量分別增加35.1%和75.8%,‘Cave in Rock’地上部與根部MDA含量分別增加44.0%和127.1%(圖5A~5B)。與單獨Cd處理相比,1 μmol·L-1外源ABA預處理使柳枝稷地上部和根系中MDA含量顯著降低,其中,‘Alamo’地上部與根部MDA含量分別降低15.4%和14.7%,‘Cave in Rock’地上部與根部MDA含量分別降低15.4%和12.5%。

        圖5 ABA對Cd脅迫下柳枝稷不同組織中丙二醛含量的影響Fig.5 Effects of ABA on the MDA content in different tissues of switchgrass under Cd stress注:A,B分別代表地上部和根部Note:A,B indicates root and shoot,respectively

        2.6 外源ABA對柳枝稷體內(nèi)Cd濃度、Cd轉(zhuǎn)運系數(shù)和Cd積累的影響

        由于CK與單獨外源ABA預處理中檢測的Cd的濃度低于儀器的檢測限,故圖中未展示上述結(jié)果。用1 μmol·L-1外源ABA預處理,‘Alamo’地上部和根部的Cd濃度分別比20 μmol·L-1Cd處理增加15.3%和31.6%(P<0.05);而‘Cave in Rock’地上部Cd濃度則降低21.7%(P<0.05),其根部Cd濃度無顯著變化(圖6A-6B)。經(jīng)1 μmol·L-1外源ABA預處理后,Cd在‘Alamo’降中的轉(zhuǎn)運低12%,‘Cave in Rock’則降低了21%(P<0.05)(圖6C);就Cd積累量而言,‘Alamo’地上部和根中的Cd積累量分別比Cd處理增加60.5%和78.9%,‘Cave in Rock’根中的Cd積累量增加37.7%;Alamo’與‘Cave in Rock’整株Cd積累量分別增加77.7%和41.0%(圖6D~6F)。

        圖6 ABA對Cd脅迫下2個柳枝稷品種Cd吸收、轉(zhuǎn)運和積累的影響Fig.6 Effects of ABA on Cd concentration,translocation factors (TF),Cd accumulation in two cultivars of switchgrass

        3 討論

        3.1 2個柳枝稷品種的耐Cd性及Cd積累差異

        環(huán)境中的Cd達到一定濃度時,會對植物的生長發(fā)育產(chǎn)生不利影響。根系是植物吸收水分和礦質(zhì)元素的主要器官,Cd2+與根系直接接觸,根系首先受到Cd脅迫毒害,根系形態(tài)如根長、根表面積及根尖數(shù)的變化,可反應植物對Cd耐性的強弱[15]。本研究中,20 μmol·L-1Cd處理對‘Alamo’總根長和根表面積的抑制作用明顯高于‘Cave in Rock’,這表明20 μmol·L-1Cd處理條件下,‘Cave in Rock’的耐受性強于‘Alamo’。另有研究表明,作物耐Cd性還與環(huán)境中的Cd濃度、作物品種、基因型及作物對Cd的吸收有關(guān)[16-19]。胡冰鈺開展了14個柳枝稷品種耐Cd性的研究,發(fā)現(xiàn)10 μmol·L-1Cd脅迫下,Alamo與‘Cave in Rock’的耐Cd能力相當[20],其結(jié)果與本研究結(jié)果不同,這可能與本試驗較高的Cd的濃度及‘Alamo’具有高Cd吸收和積累特性有關(guān)。本試驗結(jié)果表明,20 μmol·L-1Cd處理條件下,無論是否使用外源ABA預處理,‘Alamo’地上部和根部的Cd濃度及Cd積累量均顯著高于‘Cave in Rock’。因而,推薦Cd積累量高的柳枝稷品種‘Alamo’,種植在Cd污染土壤中,有利于提高土壤修復效率。

        3.2 外源ABA預處理對柳枝稷生理特性與Cd吸收的影響

        當環(huán)境中的Cd過量時,植物體內(nèi)ABA合成會迅速增加,通過改變生理代謝,影響植物對Cd的吸收,該過程與ABA濃度、植物富集Cd的能力及耐Cd性等因素有關(guān)。已有研究表明,100 μmol·L-1Cd2+脅迫下,外源施加5 μmol·L-1ABA可通過降低不結(jié)球白菜(Brassicachinensis)的蒸騰速率,顯著降低其地上部分Cd濃度,但根部Cd濃度卻顯著升高[21];用1~40 μmol·L-1ABA處理2種生態(tài)型的少花龍葵(Solanumphoteinocarpum),可顯著促進少花龍葵對Cd的吸收和積累[22];此外,土壤中20 mg·kg-1Cd脅迫下,噴施5~25 mg·L-1ABA促進了繁縷(Stellariamedia)生長,提高了Cd在其根系及地上部中的積累;當用50 mg·L-1ABA噴施繁縷,則降低其根系及地上部分中Cd的積累[23]。也有研究指出,外源添加0.2 mg·L-1的ABA可促進東南景天(SedumalfrediiHance)根系對Cd的吸收,其原因主要涉及Cd轉(zhuǎn)運基因HsfA4、氧化應激基因的表達[24]。上述研究結(jié)果表明,外源ABA可調(diào)節(jié)植物對Cd的吸收,但所涉及的信號通路及激素代謝機制仍不明確。本研究結(jié)果顯示,柳枝稷幼苗根部用1 μmol·L-1外源ABA預處理后,顯著緩解20 μmol·L-1Cd處理對柳枝稷根系生長的抑制作用,同時顯著提高其根系活力及葉片相對含水量,說明低濃度的ABA處理可促進Cd脅迫下根系的發(fā)育,而發(fā)達根系有利于柳枝稷根系對水分和Cd的吸收。此外,1 μmol·L-1ABA預處理還使柳枝稷根部和葉片中MDA含量下降,且‘Alamo’根和葉片中的MDA含量顯著低于‘Cave in Rock’,說明‘Alamo’根系和葉片細胞質(zhì)膜損傷程度低于‘Cave in Rock’,這也有利于‘Alamo’根系吸收的Cd2+沉淀在其細胞壁或轉(zhuǎn)運至液泡中,從而減少Cd對根部細胞器的損傷。

        3.3 外源ABA預處理緩解Cd對柳枝稷的毒害作用

        Cd脅迫下,植物干物質(zhì)量通常被用來評估植物受毒害的程度。植物葉片利用太陽光能制造干物質(zhì),而干物質(zhì)的積累與分配也是衡量植株生長狀況的指標。研究表明,外源ABA可通過增加Cd脅迫下小麥(Triticumaestivum)葉片中葉綠素含量,提高小麥光合速率,以便制造更多的同化物,從而促進小麥生長[24]。在本研究中,1 μmol·L-1ABA預處理,通過促進Cd脅迫下柳枝稷總根長,根表面積和根尖數(shù),進而增大根系與營養(yǎng)液中離子接觸的機會,最終提高柳枝稷幼苗的干重,這與外源ABA促進Cd脅迫下繁縷生長的結(jié)果相似[23]。脯氨酸是細胞內(nèi)的一種滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),用于提高細胞液的濃度,降低細胞水勢,促進細胞吸水,從而維持細胞的膨壓。本研究表明,用1 μmol·L-1ABA預處理能顯著促進20 μmol·L-1Cd處理下柳枝稷葉片中脯氨酸的積累,通過滲透調(diào)節(jié)使葉片葉肉細胞吸收水分,從而維持柳枝稷葉片水分平衡。另有研究發(fā)現(xiàn),用1×10-5mg·L-1~1×10-3mg·L-1的ABA噴施水培液中Cd處理青萍(Lemnaminor)幼苗,能夠提高其葉片中脯氨酸的含量,同時顯著降低膜脂過氧化產(chǎn)物MDA的積累[26],說明微量的ABA處理能夠維持植物水分代謝,減少氧化脅迫,這與本研究部分結(jié)果類似。在本研究中,1 μmol·L-1ABA預處理減少了MDA的積累,有利于減輕Cd對柳枝稷根系細胞質(zhì)膜的氧化傷害,部分地緩解了Cd對柳枝稷的毒害作用。

        4 結(jié)論

        20 μmol·L-1Cd脅迫可顯著抑制兩個柳枝稷品種幼苗生長,‘Cave in Rock’的耐Cd性強于‘Alamo’。用1 μmol·L-1ABA預處理柳枝稷幼苗,可顯著促進20 μmol L-1Cd處理下植株根系形態(tài)發(fā)育,提高Cd脅迫下柳枝稷的根系活力,降低膜脂過氧化產(chǎn)物MDA的含量,通過積累脯氨酸,維持植株的水分平衡,從而促進Cd脅迫下柳枝稷的生長,緩解Cd對柳枝稷的毒害作用。此外,1 μmol·L-1ABA預處理,顯著促進‘Alamo’對Cd的吸收,降低Cd向地上部的轉(zhuǎn)運。

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