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        全自動烷基汞測定儀分析魚及魚飼料中的甲基汞

        2022-02-06 07:00:20易華娟蘇雍倫何潔玲張樹權陳錦杭
        農產品加工 2022年23期
        關鍵詞:魚飼料酸法堿法

        易華娟,蘇雍倫,何潔玲,張樹權,陳錦杭

        (1.東莞市食品藥品檢驗所,廣東 東莞 523808;2.廣東醫(yī)科大學,廣東 東莞 523808;3.中山海關技術中心,廣東 中山 528403)

        汞(Hg)是一種常見的高毒性元素,具有持久性、全球性和生物累積性[1],主要分為無機態(tài)(Hg,Hg2+,Hg+)和有機態(tài)(MeHg、乙基汞(EtHg)等)[2],有機汞的毒性較無機汞更強,其中MeHg的毒性最強[3]。Hg主要以氣態(tài)形式存在于大氣中,其中的無機汞因重力、雨水等原因進入地表[4],同時水體因各種生產活動而被Hg污染,水中的無機汞經過微生物作用轉換為MeHg[5-6]。MeHg因其碳鏈短、分子量小、脂溶性大而極易被魚類吸收,而MeHg排除的速率卻很低,并因生物累積效應在生物體內富集,富集因子高達1×104~1×107[2]。所以,即使在低濃度MeHg的水里,還是能夠引起魚類的高水平污染,這最終都會反饋給食用者[7]。魚飼料在生產及儲存過程中會因復雜的環(huán)境、原材料及生產器械等而被甲基汞污染[8]。

        研究指出,人類暴露于MeHg的主要途徑為食用水產品[7-9],甲基汞沿著食物鏈中的細菌、浮游生物等富集到魚類中,被人類食用后,會被人體吸收并隨血液輸送到全身組織器官中[10]。中毒表現主要為末梢感覺紊亂、精神失常、喪失意識、震顫、共濟失調和向心性失調等[11]。上世紀50年代,日本“水俁事件”的成因就是食物鏈被MeHg污染[12]。因此,研究食物鏈中MeHg的累積效應對保護人類健康具有重要意義。

        我國是世界水產養(yǎng)殖第一大國,同時也是汞污染較為嚴重的國家[13-14],隨著養(yǎng)殖業(yè)的商業(yè)化,魚飼料在投料中所占比例也越來越高,魚飼料的污染水平將是控制水產品品質的關鍵[15]。目前,國內外對水生食物鏈中甲基汞的放大作用主要集中在不同營養(yǎng)層間的捕食關系上[16],鮮有研究魚飼料在食物鏈中的累積效應。通過對不同魚體、飼料的深入分析,能夠使人們對甲基汞在不同魚體中的分布狀況有一定的認識,同時也為后續(xù)對于魚飼料中甲基汞的研究提供借鑒。

        目前,液相和氣相色譜等分離方法與原子熒光光譜[17-18]、原子吸收光譜、原子發(fā)射光譜[19]和電感耦合等離子質譜[20-22]等高靈敏度的檢測儀器聯(lián)用被廣泛應用于甲基汞的檢測研究中[23]。但這些方法因成本高、前處理繁雜、耗時長、分析效果不理想等原因,限制了其在日常批量檢驗中的使用。研究采用了吹掃捕集-氣相色譜-冷原子熒光光譜儀法,該方法具有操作簡便、檢出限低、分離效果佳、時間短和成本低等優(yōu)勢[24-25]。隨著檢測行業(yè)的發(fā)展和國家標準的完善,GC-CVAFS法在日常檢測中的推廣必定更具發(fā)展前景。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        鯇魚、草魚、烏鱧、鯉魚、鳙魚、多春魚、帶魚、鲅魚、黃花魚、鮸魚和魚飼料,購自市場。

        氫氧化鉀、三水合乙酸鈉(優(yōu)級純)、冰乙酸(色譜純),中國天津市科密歐化學試劑有限公司提供;鹽酸(優(yōu)級純)、硝酸(分析純),廣州試劑廠提供;甲醇(色譜純),德國默克公司提供;四乙基硼化鈉(≥98%);魚肉中總汞與甲基汞成分分析標準物質(標準值5.5±0.17 mg/kg),歐盟聯(lián)合研究中心提供;甲基汞標準溶液(1.0 mg/L),中國計量科學研究院提供。

        1.2 儀器與設備

        全自動甲基汞測定分析儀,美國Brooks Rand Labs公司產品;渦旋振蕩儀,德國IKA公司產品;烘箱,德國Memment公司產品;電子分析天平,北京Satorious科學儀器公司產品;微量移液器,德國艾本德有限公司產品;超純水處理系統(tǒng),美國密理博產品。

        1.3 試劑及標準溶液配制

        1.3.1 20%(W/V)氫氧化鉀(KOH)甲醇溶液

        稱取10.0 g KOH置于50 mL離心管中,分4次加入40 mL甲醇溶解,混勻,裝聚四氟乙烯試劑瓶內保存。

        1.3.2 乙酸鈉(NaAc-HAc)緩沖溶液(2 mol/L)

        稱取54.4 g三水合乙酸鈉,加入到23.6 mL冰乙酸中,用水定容至200 mL。

        1.3.3 30%硝酸溶液

        量取30 mL硝酸,加入至70 mL水中;2%(W/V)KOH水溶液:稱取1.0 g KOH置于50 mL塑料容量瓶中,加水溶解并定容至50 mL。

        1.3.4 乙基化試劑

        將質量分數為2%的KOH溶液置于-20℃冰箱中凍至水溶液出現晶體后,加入0.5 g四乙基硼化鈉粉末,混勻后分裝到液相小瓶中,置于-20℃下保存。

        1.3.5 0.5%乙酸+0.2%鹽酸混合溶液

        量取0.5 mL乙酸溶液和0.2 mL鹽酸溶液,緩緩倒入100 mL水中。

        甲基汞標準使用液(200 pg/mL):吸取相應量的甲基汞標準溶液,用0.5%乙酸+0.2%鹽酸混合溶液逐級稀釋至質量濃度為200 pg/mL,置于4℃以下冰箱儲存使用。

        1.4 樣品前處理

        1.4.1 提取前準備

        將魚樣用水洗凈,取可食部分放入攪拌器中絞碎、混勻,裝入樣品罐中,放入-20℃冰箱中保存?zhèn)溆?;取顆粒狀魚飼料放入攪拌器中絞碎至粉末狀、混勻,裝入樣品罐中保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.4.2 堿法提取

        稱取0.1 g(精確到0.000 1 g)樣品到50 mL離心管中,加入預先配制的質量分數為20%的KOH甲醇溶液5 mL,搖勻后置于60℃的烘箱中消解4 h。消解過程中,每隔1 h渦旋1次,使消解液與樣品充分接觸。在進樣瓶中加水至瓶頸處,加入樣品消解液50 μL,用10% HCl試劑調節(jié)pH值至6~8,加入NaAc-HAc緩 沖溶液300 μL,將pH值調節(jié)至4.5~5.0,加入乙基化試劑50 μL,加水至出現凸液面,迅速蓋上瓶蓋,搖勻,使其乙基化反應充分進行。

        1.4.3 酸法提取

        稱取0.1 g(精確到0.000 1 g)樣品到50 mL離心管中,加入質量分數為30%的硝酸溶液10 mL,蓋緊,置于60℃烘箱中消解12 h。取出消解完的樣品,加水定容至20 mL。在進樣瓶中加水至瓶頸處,準確移取0.2 mL樣品消解液至瓶內,再加入質量分數為20%的KOH甲醇溶液0.16 mL,用質量分數為10%的HCl溶液試劑調節(jié)pH值至6~8,加入NaAc-HAc緩沖溶液將pH值調節(jié)至4.5~5.0,加入50 μL的乙基化試劑,加水至出現凸液面,迅速蓋上瓶蓋,搖勻,使其乙基化反應充分進行。

        1.5 標準曲線的配制

        將40 mL棕色進樣瓶加水至瓶頸處,分別移取0.2 ng/mL甲基汞標準溶液0.05,0.25,0.50,1.25,2.50,5.00 mL,加入NaAc-HAc緩沖溶液300 μL,再加入乙基化試劑50 μL,加水至呈凸液面,蓋緊混勻,配成甲基汞質量分別為10,50,100,250,500,1 000 pg的標準溶液系列。

        1.6 儀器條件及原理

        1.6.1 儀器條件

        冷原子熒光檢測器光電倍增管(PMT)電壓670 V;基線信號值36 μV;吹掃捕集氣:氮氣,流速50 mL/min,時間5 min;干燥氣:氮氣,流速40 mL/min,時間3 min;Tenax管解析加熱時間9.9 s;GC溫度35℃;GC載氣為氬氣,流速30 mL/min。

        1.6.2 儀器工作原理

        全自動烷基汞測定分析儀的儀器檢出限(IDL)為0.002 ng/L,其工作原理為:將樣品經前處理消解提取出甲基汞,取定量樣液進行乙基化反應后,在加壓狀態(tài)下被氮氣自動輸送至氣液分離器中,經氮氣吹脫至Tenax捕集管并被干燥,加熱Tenax捕集管使Hg解析,而后被氬氣輸送至氣相柱使不同形態(tài)的Hg分離,熱解還原為單質Hg,經冷原子熒光檢測器(CVAFS)進行測定[26]。

        陽性樣品出峰色譜圖見圖1。

        圖1 陽性樣品出峰色譜圖

        色譜圖中包含3個峰,從左到右依次為Hg0,MeHg,Hg2+和CH3-CH2-Hg+。

        2 結果與分析

        2.1 GC柱分離溫度的優(yōu)化

        取衍生好的甲基汞標準溶液作為樣品,設定GC溫度為30,35,40,45℃,比較不同溫度下Hg0,MeHg,Hg2+和CH3-CH2-Hg+乙基化產物的分離效果。由圖1可知,溫度為45℃時,3個峰勉強分離;當溫度為30,35,40℃時,3個峰可以完全分離開;但溫度為30℃時,MeHg的峰拖尾時間較長,不利于快速檢測;所以,當溫度為35℃和40℃時,3個峰的分離效果最好,考慮到經濟效益及環(huán)保節(jié)能,選取35℃作為GC柱的分離溫度最為合適。

        2.2 乙基化反應條件的優(yōu)化

        2.2.1 乙基化反應的pH值

        用標準參考物質作為質控樣品,按照1.4.2中堿法消解的步驟對樣品進行前處理,用質量分數為10%的HCl溶液試劑調節(jié)pH值至6~8后,加入濃度為2 mol/L的NaAc-HAc緩沖溶液調節(jié)pH值至3,4,5,6,8,9,10,每個pH值條件做6組平行。

        乙基化反應pH值對回收率的影響(n=6)見圖2。

        圖2 乙基化反應pH值對回收率的影響(n=6)

        回收率在pH值5時最高,此時添加的2 mol/L NaAc-HAc緩沖溶液為300 μL,回收率為99.927%。研究所得的最佳乙基化反應pH值與王雪婷等人[27]的研究結果相符。

        2.2.2 乙基化試劑的使用量

        乙基化試劑的使用量對乙基化反應有直接影響,乙基化試劑使用量過少時甲基汞的乙基化反應不充分,但使用量過大時又會使得乙基化反應劇烈造成甲基汞揮發(fā)而損失,回收率下降,同時也會提高試驗成本[28]。因此,確定最佳的乙基化試劑使用量尤為重要。

        用標準參考物質作為質控樣品,按照1.4.2中堿法消解的步驟對樣品進行前處理,分別加入乙基化試劑20,40,50,70 μL,測定其含量。

        不同乙基化試劑使用量時標樣中MeHg的測定值(n=6)見表1。

        表1 不同乙基化試劑使用量時標樣中MeHg的測定值(n=6)

        由表1可知,乙基化試劑的投加量為40 μL和50 μL時,標樣的測定值都在標準值范圍內,為確保樣品中的乙基化反應充分進行,試驗選取的乙基化試劑投加量為50 μL。

        2.3 消解方法的比較

        在生物組織中,有機汞的含量占總汞的70%~90%,有機汞化合物與硫基高度親和[29],必須通過化學試劑破壞硫化合物,從而釋放有機汞。不同的提取方式對MeHg的回收率和不同形態(tài)Hg之間的轉換會產生不同的效果。因此,樣品的前處理方法對于檢測結果中的質量控制至關重要。

        2.3.1 魚肉消解方法的選擇

        稱取魚肉中甲基汞成分分析標準物質作進行試驗,分別按照1.4中的酸法和堿法對樣品進行消解。

        2種消解方法處理魚肉標準物質的結果對比(n=3)見表2。

        表2 2種消解方法處理魚肉標準物質的結果對比(n=3)

        由表2可知,2種方法的回收率相差不大,測定值均在標準值范圍內,因此2種前處理方法均適用于魚類中甲基汞的測定。考慮到堿法消解的前處理時間相較于酸法消解短,接下來魚類中甲基汞的測定均采用堿法消解。

        2.3.2 魚飼料消解方法的選擇

        分別按照1.4中的堿法和酸法對樣品進行前處理。

        2種消解方法處理魚飼料的結果對比(n=6)見表3。

        表3 2種消解方法處理魚飼料的結果對比(n=6)

        魚飼料的基質較為復雜,富含蛋白質原料,如魚粉、蝦粉、豆粕和米糠等。魚飼料消解完成后,發(fā)現酸法的消解液沉淀少、呈澄清狀態(tài),而堿法處理魚飼料樣品的消解液中出現乳濁、顆粒性沉淀現象及少量泡沫。酸法消解的RSD%為2.92%,具有良好的平行性;堿法消解的RSD%為9.81%,且提取效率顯著低于酸法消解(p<0.05)。

        由消解現象及測定結果可知,相比于堿法消解,酸法消解能較完全地消解魚飼料樣品并提取甲基汞,因此接下來的試驗中魚飼料采取酸法消解。

        2.4 線性關系

        質量分別為10,50,100,250,500,1 000 pg的一系列標準溶液,在上述優(yōu)化條件下測定,以MeHg的出峰高度為縱坐標(Y),MeHg質量為橫坐標(X),作線性回歸曲線,標準曲線方程為Y=365.68X-1 900.2,相關系數R2=0.999 8。

        2.5 方法檢出限與定量限

        以11個空白樣品考查該方法的靈敏度,計算11個空白樣品測量值的標準偏差,以3倍標準偏差為檢出限,10倍標準偏差為定量限。根據樣品前處理方法中的稱樣量和稀釋倍數,可計算出方法的檢出限和定量限。

        不同消解方法的檢出限和定量限見表4。

        表4 不同消解方法的檢出限和定量限

        2.6 方法精密度與準確度

        分別選取草魚和魚飼料作為試驗材料,以1倍,2倍及10倍定量限作為加標水平。分別按照1.4中的堿法和酸法對樣品進行消解及測定。每個加標水平做6個平行試驗。

        魚肉中甲基汞加標回收率和精密度測定結果(n=6)見表5,魚飼料甲基汞加標回收率和精密度(n=6)見表6。

        表5 魚肉中甲基汞加標回收率和精密度測定結果(n=6)

        表6 魚飼料甲基汞加標回收率和精密度(n=6)

        在低、中、高3個加標水平下的回收率和RSD均符合GB/T 27404—2008《實驗室質量控制規(guī)范 食品理化檢測》中附錄F的要求,定量限適用性良好。

        2.7 實際樣品的測定

        應用研究建立的分析方法對10種魚類和10批魚飼料進行測定。

        魚及魚飼料中甲基汞含量的測定結果(n=6)見表7。

        由表7可知,淡水魚測定含量為3.79~16.74 μg/kg,海水魚測定含量為26.45~142.19 μg/kg。魚飼料中2批檢出甲基汞的含量范圍為3.68 μg/kg和5.51 μg/kg。GB 2762—2017《食品中污染物限量》中MeHg限量規(guī)定:肉食性水產動物及其制品1.0 mg/kg,非肉食性魚類及其制品0.5 mg/kg,在此次測定中所有水產品的MeHg含量均符合該限量要求。

        表7 魚及魚飼料中甲基汞含量的測定結果(n=6)

        從結果大致可知,海水魚的甲基汞含量普遍高于淡水魚中的甲基汞含量,造成這種差異的原因可能是生活環(huán)境和食物中甲基汞濃度的不同。海水魚多數是野生的且生長周期長,在海水中有較長且穩(wěn)定的食物鏈,對于甲基汞的富集作用強。而淡水魚一般是養(yǎng)殖魚,淡水中的甲基汞污染沒有海水中的污染嚴重,且能夠人為控制,并且主要以甲基汞含量極低的魚飼料作為主要食物來源,生長周期短,食物鏈短,富集MeHg的程度低[30]。

        3 結論

        建立了氣相色譜-冷蒸氣原子熒光光譜法測定魚及魚飼料中甲基汞的方法,該方法靈敏度高,操作步驟簡便快速、準確、高效、經濟可行,分析測定得到的數據具有良好的精密度,準確性高,在日常檢測中具有很大的推廣空間和發(fā)展前景。

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