張羽森,張瑱,韓兆峰

(1 鄭州人民醫(yī)院整形美容外科,河南 鄭州 450000；2 鄭州大學第一附屬醫(yī)院整形美容外科)

皮膚損傷后成纖維細胞等修復細胞增殖加速和細胞外基質(ECM)大量合成是瘢痕疙瘩的病理學基礎，但目前其發(fā)病原因及機制尚未完全明確[1]。DNA甲基轉移酶1(DNMT1)是DNA甲基化過程中的一個重要分子。而DNA甲基化酶催化基因甲基化后可抑制基因轉錄及復制，導致基因相關的平衡失調，最終導致疾病發(fā)生[2]。DNMT1與纖維化及增生存在密切關系，尤其是細胞增殖和癌細胞存活[3]。但DNMT1與瘢痕疙瘩相關性研究尚未見報道。已有研究顯示，瘢痕疙瘩成纖維細胞(KFB)中DNMT1蛋白陽性表達率明顯高于正常皮膚成纖維細胞，甲基轉移酶抑制劑5-氮雜-2-脫氧胞苷可誘導體外培養(yǎng)的KFB凋亡，并抑制成纖維細胞因子DNMT1和TGF-β1表達，上調Smad7表達[4]。提示抑制基因甲基化有可能成為瘢痕疙瘩防治的新方法。因此，本文探討沉默DNMT1表達對KFB增殖及侵襲能力影響，為該病治療提供潛在靶點。

1 材料和方法

1.1 實驗材料

1.1.1標本來源 瘢痕疙瘩標本取自2016年5月—2017年10月鄭州人民醫(yī)院整形美容外科手術切除病灶，共9例，取自前胸部3例，耳垂部5例，上臂1例。選擇標準：病人無瘢痕疙瘩感染破潰及治療史，無免疫抑制劑、糖皮質激素等用藥史，無全身系統(tǒng)性疾病。樣本采集均符合手術標準，病人均簽訂知情同意書，并得到醫(yī)院倫理委員會批準。

1.1.2試劑和儀器 RPMI 1640培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)、青霉素和鏈霉素均購自美國Gibco；BCA蛋白定量試劑盒購自美國Pierce；CCK8溶液購自上海碧云天公司；Transwell細胞培養(yǎng)板及Matrigel膠均購自美國BD；DNMT1、β-連環(huán)蛋白(β-catenin)、c-myc、增殖細胞核抗原(PCNA)和基質金屬蛋白酶-2(MMP-2)抗體均購自美國CST；酶標儀購自美國BIORAD。

1.2 實驗方法

1.2.1KFB的培養(yǎng) 無菌條件下切取瘢痕疙瘩病人的病變組織。瘢痕疙瘩組織均經病理檢查而明確診斷。采用組織貼壁法原代培養(yǎng)KFB，即將組織剪成2 cm×2 cm大小，浸泡在含青霉素-鏈霉素的生理鹽水無菌盒中，用手術刀將組織塊削成厚度為1 mm左右的薄片，再剪成3 mm×3 mm大小組織塊。用槍鑷按照0.5～1.0 cm間距將組織平鋪在50 mL的無菌培養(yǎng)瓶中，向瓶中加入約0.5 mL的RPMI 1640培養(yǎng)液，緩慢翻轉培養(yǎng)瓶，底部朝上，放入含體積分數0.05 CO2、90%濕度、37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。4 h后加入含體積分數0.10 FBS及雙抗的RPMI 1640培養(yǎng)液，翻轉培養(yǎng)瓶，以使培養(yǎng)液能恰好覆蓋組織塊，于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。每2 d換液1次，倒置顯微鏡下觀察KFB長滿瓶底后，胰蛋白酶消化、培養(yǎng)液終止消化，接種至新的培養(yǎng)瓶。經3～4次傳代，收集對數期細胞用于實驗研究。

1.2.2細胞轉染方法[5]根據Gen Bank中提供的人DNMT1基因序列以及siRNA原則，設計針對DNMT1的特異性siRNA序列，同時提供隨機序列作為陰性對照siRNA，序列由上海吉瑪制藥技術有限公司合成。實驗分為空白組、陰性對照組(陰性組)和DNMT1-siRNA組(實驗組)。取生長狀態(tài)良好的第4代KFB接種于6孔板，培養(yǎng)箱常規(guī)培養(yǎng)，當達30%～50%匯合度時，陰性組和實驗組將依據脂質體制備的siRNA-LipofectamineTM2000復合物加入至6孔板，空白組加脂質體，置于含體積分數0.05 CO2、37 ℃培養(yǎng)箱孵育4 h，換成細胞生長培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。48 h后，應用Western blotting檢測各組細胞DNMT1的蛋白表達。

1.2.3轉染效果和Wnt/β-catenin信號通路相關蛋白檢測[6]以適量細胞裂解液提取轉染siRNA后的細胞總蛋白，使用BCA試劑盒測定蛋白濃度。DNMT1稀釋比為1∶500，內參照GAPDH稀釋比為1∶1 000，加HRP標記的二抗稀釋比為1∶3 000，37 ℃孵育1 h。TBST洗膜，加ECL化學發(fā)光試劑，在暗室室溫下溫育5 min，X線膠片曝光、顯影、定影。同法檢測β-catenin、c-myc、MMP-2和PCNA蛋白的表達。

1.2.4細胞增殖能力檢測[7]以3×107/L細胞密度接種生長狀態(tài)良好的4代KFB于96孔板，每孔100 μL，孵育24 h后按照上述分組轉染siRNA，同時設置空白組，每組設置5個復孔。分別在轉染的24、48、72和96 h取出96孔板，加CCK8試劑(每孔10 μL)。實驗重復3次。

1.2.5細胞侵襲能力檢測[8]將40 μL的 Matrigel(用預冷無血清培養(yǎng)基以1∶3比例稀釋)加入到預冷的Transwell小室中，37 ℃孵育2 h以使膠凝固。上室中加入轉染siRNA 48 h的細胞，下室中加入600 μL的完全培養(yǎng)基，用結晶紫染色10 min，倒置顯微鏡(400倍)隨機選擇5個視野，計數穿膜細胞數，取均值。實驗重復3次。

1.3 統(tǒng)計學方法

2 結 果

2.1 DNMT1在轉染DNMT1-siRNA的KFB表達

DNMT1-siRNA轉染KFB后 48 h，Western blotting檢測DNMT1蛋白表達結果顯示，空白組、陰性組和實驗組的表達量分別為0.679±0.059、0.679±0.059和0.087±0.012，實驗組DNMT1表達明顯低于空白組(F=139.156，P<0.05)，而陰性組DNMT1表達與空白組差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見圖1。

圖1 DNMT1在轉染DNMT1-siRNA的KFB表達

2.2 沉默DNMT1表達對KFB活力的影響

CCK8方法檢測沉默DNMT1對KFB活力影響的結果見表1。析因設計方差分析結果顯示，不同時間、組間及其二者交互作用下KFB活力差異均有統(tǒng)計學意義(F組間=1 197.182，F時間=1 380.040，F交互=19.115，P均<0.001)。實驗組的KFB活力在24～96 h均顯著低于空白組，差異均有統(tǒng)計學意義(F組內=45.688～57.141，F組間=15.037～28.811，P均<0.05)。

表1 沉默DNMT1表達不同轉染時間對KFB活力的影響

2.3 沉默DNMT1表達對KFB侵襲能力的影響

Transwell小室檢測沉默DNMT1后KFB侵襲能力的結果顯示，空白組、陰性組和實驗組的穿膜細胞數分別為176.7±9.2、172.8±8.5和91.2±4.6，實驗組細胞侵襲能力顯著低于空白組，差異有統(tǒng)計學意義(F=117.810，P<0.05)。

2.4 沉默DNMT1表達對KFB 的Wnt/β-catenin信號通路影響

Western blotting檢測各組細胞中Wnt/β-catenin信號通路關鍵分子β-catenin和c-myc及下游PCNA和MMP-2的蛋白表達結果顯示，與空白組比較，實驗組β-catenin、c-myc、PCNA和MMP-2的蛋白表達均明顯降低，差異均有統(tǒng)計學意義(F=34.926～103.743，P<0.05)。見圖2和表2。

表2 各組β-catenin、c-myc、PCNA和MMP-2蛋白相對表達量比較

圖2 沉默DNMT1表達對KFB 的Wnt/β-catenin信號通路影響

3 討 論

DNA甲基化是表觀遺傳學的重要分支，其在調節(jié)機體生命活動過程中作用顯著，機體內DNA異常甲基化，可伴隨DNMTs異常表達[9]。DNMT1是從真核生物中第一個克隆出來的DNMTs，主要功能是維持DNA復制后的甲基化狀態(tài)[10]。已有多項研究表明，DNMT1在腫瘤發(fā)生、胚胎發(fā)育、細胞衰老等過程中起重要作用[11-13]。瘢痕疙瘩是傷口愈合及修復過程中以KFB過度增殖及ECM大量沉積為特點的體表纖維化疾病。已有研究結果表明，DNMT1表達水平與瘢痕疙瘩生長呈負相關，同時越靠近邊緣區(qū)域的瘢痕疙瘩組織的DNMT1表達越高[14]。這提示DNMT1與瘢痕疙瘩的進行性生長及浸潤生長存在密切關系。而DNMT1表達上調提示KFB存在異常甲基化。

RNA干擾(RNAi)是一種在mRNA水平上高度特異性沉默基因的機制，由于合成的小干擾RNA(siRNA)體積小、包封率高及安全性高，已成為重要的核酸類藥物，用于多種疾病的治療[15]。已有多項研究表明，抑制基因表達可降低KFB生長，如轉染靶向GSK-3β的siRNA可有效降低該基因在KFB內的表達，從而抑制了瘢痕疙瘩生長[16]；siRNA沉默DNMT1基因可抑制KFB生長，并誘導凋亡[17]。本研究結果顯示，沉默DNMT1可抑制KFB活力和侵襲能力。

Wnt/β-catenin信號在細胞增殖、分化、侵襲遷移、凋亡及腫瘤形成等多種生理活動中發(fā)揮重要作用。近年來越來越多的研究也表明，Wnt/β-catenin信號通路與多種纖維化疾病的發(fā)病機制存在密切關系[18-19]。如Wnt/β-catenin信號通路的關鍵分子β-catenin在瘢痕疙瘩組織中表達明顯升高，TGF-β刺激可上調成纖維細胞Wnt/β-catenin信號[20]。以上結果提示，在包括瘢痕疙瘩在內的纖維化疾病中Wnt/β-catenin信號發(fā)揮重要作用，且可能是潛在的治療靶點。而也有研究指出，抑制Wnt/β-catenin信號可以降低KFB增殖，如Wnt信號通路抑制劑IWR-1可抑制成纖維細胞增殖、遷移及膠原生成等[21]。PCNA與細胞周期進展、細胞增殖密切相關。已有研究結果表明，PCNA表達水平可有效反映瘢痕組織增生程度[22]。MMP-2是MMPs家族成員，其主要負責基底膜上的Ⅳ型膠原降解。有研究表明，瘢痕疙瘩的侵襲遷移機制與MMP-2存在密切關系，抑制MMP-2的表達可降低KFB侵襲能力[23-24]。本研究結果顯示，沉默DNMT1表達可下調β-catenin、c-myc、PCNA和MMP-2表達，提示沉默DNMT1表達可能是通過抑制Wnt/β-catenin信號通路而降低KFB增殖和侵襲能力。

綜上所述，本研究顯示沉默DNMT1表達可抑制KFB增殖和侵襲能力，其機制可能與抑制Wnt/β-catenin信號通路有關。提示DNMT1有可能是瘢痕疙瘩治療的一個新靶點。但DNMT1上游調控基因有哪些，是如何調控DNMT1基因表達而參與瘢痕疙瘩發(fā)生及發(fā)展過程均尚需進一步探究，這可為進一步揭示瘢痕疙瘩發(fā)生及發(fā)展的分子機制奠定實驗基礎。