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        成骨分化內(nèi)源性競爭性lncRNA-miRNA-mRNA網(wǎng)絡(luò)與核心基因的研究

        2022-01-06 13:25:58周子墨柳達陳森相覃森
        中國骨質(zhì)疏松雜志 2021年12期
        關(guān)鍵詞:關(guān)鍵分析

        周子墨 柳達 陳森相 覃森

        中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院骨科,遼寧 沈陽 110004

        成骨分化(osteogenesis differentiation)是一種涉及到多基因和多步驟的復(fù)雜過程。骨折、骨質(zhì)疏松等骨病的發(fā)展和修復(fù)是成骨細胞和破骨細胞共同作用的結(jié)果。間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cell,MSCs)可以分化形成成骨細胞,成骨細胞通過基質(zhì)分泌和鈣礦化,促進骨質(zhì)再生,起到重要的生物學(xué)作用[1]。

        非編碼RNA(noncoding RNA,ncRNA)是一類很少甚至沒有編碼潛能的RNA。在過去的研究中,其被認為是一類轉(zhuǎn)錄過程的“噪音”。隨著高通量測序技術(shù)的發(fā)展,越來越多的noncoding RNA被識別靶向在mRNA表達的調(diào)控通路中,在調(diào)控核染色質(zhì)結(jié)構(gòu)和基因表達方面具有積極的意義[2]。長鏈非編碼RNA(long noncoding RNA,lncRNA)是一類長度在200~100 000 nt的noncoding RNA。lncRNA被分為5種類型:正義型(sense)、反義型(antisense)、雙向型(bidirectional)、內(nèi)含型(intronic)、基因間型(intergenic),它們在功能上存在一定差異[3]。MicroRNA(miRNA)作為一類調(diào)控性RNA,可以通過多種方式介導(dǎo)基因表達,這些途徑可以被上游的lncRNA靶向調(diào)控。目前,大量研究證明lncRNA可通過內(nèi)源性競爭性RNA(ceRNA)學(xué)說靶向miRNA分子,形成miRNA海綿(Sponge)調(diào)節(jié)下游基因表達[4]。高通量測序技術(shù)可以通過基因芯片得到相應(yīng)的差異基因,被廣泛運用于基因組學(xué)和轉(zhuǎn)錄組學(xué)研究。Lim等[5]利用基因芯片,獲得大量DEGs,預(yù)測了miRNA-mRNA潛在通路。

        本研究通過對數(shù)據(jù)庫中3個不同基因芯片對MSCs的成骨分化進行測序的結(jié)果進行分析,得到了差異表達的RNA及DEGs,通過靶點的互相預(yù)測,最終分析得到了差異較大的lncRNA-miRNA-mRNA互作網(wǎng)絡(luò),同時構(gòu)建了PPI網(wǎng)絡(luò),預(yù)測關(guān)鍵基因,并將DEGs及關(guān)鍵基因進行功能富集分析和通路富集分析,為進一步的機制研究提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 數(shù)據(jù)收集

        從GEO公共數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)下載基因表達芯片GSE89330、GSE72429、GSE74837。GSE89330采用樣本為成骨誘導(dǎo)分化14 d MSCs及分化的MSCs(對照組),平臺為GPL16956,Agilent-045997 Arraystar human lncRNA microarray V3 (Probe Name Version);GSE72429采用樣本為3個不同細胞系滑膜源性干細胞(synovial membrane-derived MSCs,SM-MSCs)和4個不同細胞系脂肪源性干細胞(adipose-derived stem cells,ADSC)來源的已分化成骨細胞,并與來自同一細胞系的未分化細胞進行比較。平臺為GPL16770,Agilent-031181 Unrestricted_Human_miRNA_V16.0_Microarray (miRBase release 16.0 miRNA ID version)。GSE74837樣本為用骨生成誘導(dǎo)方法誘導(dǎo)的2 d和5 d MSCs,對照組為未進行誘導(dǎo)的人骨髓間充質(zhì)干細胞。平臺為GPL13915 3 D-Gene Human Oligo chip 25k V2.1。

        1.2 差異基因的數(shù)據(jù)分析

        使用GEO2R(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/geo2r/)在線分析并獲得差異基因(differentially expressed genes,DEGs)。GEO2R是美國國立生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)的GEO數(shù)據(jù)庫自帶公共在線分析工具[6],它將GEO數(shù)據(jù)進行l(wèi)imma差異表達分析,得出logFC、P.Value等數(shù)據(jù)。本研究將GSE74837得到的數(shù)據(jù)取P<0.05且∣logFC∣>2為DEGs;GSE72429得到的數(shù)據(jù)取P<0.05且∣logFC∣>1為DEmiRNAs;GSE89330得到的數(shù)據(jù)取P<0.05且∣logFC∣>2為DElncRNAs[7]。將得到的數(shù)據(jù)用火山圖和熱圖表達,火山圖使用R語言軟件(版本1.3.1093)R包ggplot2繪制,熱圖使用TBtools軟件(版本1.064)繪制。

        1.3 基因功能富集分析

        GO(gene ontology)是常用的DEGs功能作用分析方法,其可以通過注釋基因或其產(chǎn)物、識別基因芯片數(shù)據(jù)而分析得到生物學(xué)特征結(jié)果。GO富集按照生物途徑(biological process,BP)、細胞定位(cellular component,CC)、分子功能(molecular function,MF)對基因進行注釋和分類。KEGG分析(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes analysis)是另一種常用的基因通路分析方法,可以將基因注釋和富集在信號通路上進行研究[8-9]。本研究應(yīng)用DAVID (Database for Annotation,Visualization and Integrated Discovery)在線數(shù)據(jù)庫分析工具進行分析,獲得所需的GO和KEGG數(shù)據(jù)。本研究使用的DAVID數(shù)據(jù)庫版本6.8,地址為https://david.ncifcrf.gov/,由美國國立變態(tài)反應(yīng)與傳染病研究所支持[10]。隨后使用Fisher Exact 或EASE Score 統(tǒng)計方法,以GO數(shù)據(jù)各項P<0.05且FDR<0.05為篩選條件,KEGG<0.05為篩選條件進行分析篩選[11-12]。

        1.4 內(nèi)源性競爭性lncRNA-miRNA-mRNA互作用網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建

        內(nèi)源性競爭性RNA(competing endogenous RNA,ceRNA)是以miRNA海綿為基礎(chǔ),lncRNA可直接與miRNAs相互作用并調(diào)控其活性的假設(shè)而構(gòu)建的。基于這一假設(shè),通過3個步驟建立了lncRNA-miRNA-mRNA網(wǎng)絡(luò):(1)篩選潛在可能的lncRNA、miRNA和mRNA。本研究以差異基因作為潛在可能靶點;(2)利用miRcode在線預(yù)測工具(http://www.mircode.org)根據(jù)mRNA預(yù)測潛在的miRNA靶點;(3)利用DIANA在線預(yù)測工具LncBase版本2.0(http://carolina.imis.athena-innovation.gr/diana_tools/web/index.php)進行基于miRNA的潛在lncRNA靶點預(yù)測,篩選方法為臨界值=0.7,細胞類型為hMSCs-BM,組織為骨組織,種類為干細胞[13]。最后,從三者中篩選出符合條件的RNA構(gòu)建ceRNA網(wǎng)絡(luò)。使用Cytoscape(version 3.5.1)可視化lncRNA-miRNA-mRNA網(wǎng)絡(luò)。

        1.5 蛋白互作網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建和分析

        STRING (Search Tool for the Retrieval of Interacting Genes)是一款在線分析工具,可以用來構(gòu)建蛋白互作網(wǎng)絡(luò)(protein-protein interaction network,PPI network)和進行在線分析[14]。在“Creative Commons BY 4.0”中,數(shù)據(jù)可以開放獲取。將篩選的所有DEGs導(dǎo)入STRING(版本11.0,https://string-db.org/)在線分析軟件,設(shè)置置信度(confidence score)≥0.4,互作最大值(maximum number of interactors)=0,得到相應(yīng)數(shù)據(jù)[15],并導(dǎo)入Cytoscape(版本3.5.1)進行MCODE (Molecular Complex Detection,版本1.4.2)分析,設(shè)置參數(shù)為degree cutoff=2,node score cutoff=0.2,k-core=2,max.depth=100,從PPI中篩選出連接最為緊密的集簇,并將score設(shè)置為>4,得到兩個最為緊密的集簇[16]。將得到的結(jié)果通過ClueGO+CluePedia進行GO富集分析。

        1.6 關(guān)鍵基因篩選

        將PPI網(wǎng)絡(luò)導(dǎo)入Cytoscape(版本3.5.1)軟件進行關(guān)鍵基因(hub gene)篩選,使用cytoHubba(版本0.1)進行分析及可視化,設(shè)置篩選條件hubba nodes ranked為degree=10,得到10個關(guān)鍵基因,并進行可視化處理[17]。

        2 結(jié)果

        2.1 差異表達RNA的篩選和鑒定

        本研究選用基因表達芯片GSE89330、GSE72429、GSE74837,經(jīng)GEO2R初步分析和條件篩選,共獲得186個DEGs,包含81個下調(diào)基因和105個上調(diào)基因;89個DEmiRNA,包括25個下調(diào)miRNA和64個上調(diào)miRNA;441個DElncRNA,包括205個下調(diào)lncRNA和236個上調(diào)lncRNA。通過火山圖和熱圖進行可視化,得到明顯的差異表達(圖1)。

        圖1 DEGs、DElncRNA、DEmiRNA的篩選和差異表達A:DEGs火山圖,紅色點代表篩選出的上調(diào)DEGs,藍色點代表篩選出的下調(diào)DEGs;B:miRNA火山圖,紅色點代表篩選出的上調(diào)DEmiRNA,藍色點代表篩選出的下調(diào)DEmiRNA;C:DElncRNA火山圖,紅色點代表篩選出的上調(diào)DElncRNA,藍色點代表篩選出的下調(diào)DElncRNA;D:GSE74837中DEGs表達熱圖;E:GSE72429中DEmiRNA表達熱圖;F:GSE89330中DElncRNA表達熱圖。Fig.1 The screen and differently expression genes in DEGs, DElncRNA, and DEmiRNAA: In the DEGs volcano map, the red dot represents the screened up-regulated DEGs, and the blue dot represents the screened down-regulated DEGs; B: MiRNA volcano map, red dot represents the screened up-regulated demirna, and blue dot represents the screened down-regulated demirna; C: In the volcano diagram of delncrna, the red dot represents the screened up-regulated delncrna, and the blue dot represents the screened down-regulated delncrna; D: Heat map of DEGs expression in gse74837; E: Heat map of demirna expression in gse72429; F: Heat map of delncrna expression in gse89330.

        2.2 GO功能與KEGG信號通路富集分析

        根據(jù)GO分析和KEGG分析,以P<0.05,F(xiàn)DR<0.05為篩選條件,并按照計數(shù)值從大到小排列,將BP、CC與MF類別中排名在前10的富集結(jié)果用柱狀圖表示,將KEGG分析結(jié)果用氣泡圖表示(圖2)。分析發(fā)現(xiàn),在生物學(xué)途徑上,DEGs主要富集在炎癥反應(yīng)和血管生成和骨骼系統(tǒng)發(fā)育中,促進MSCs成骨分化。在細胞成分中,DEGs大量富集在細胞膜和胞外體以及細胞外間隙。這提示DEGs表達分泌蛋白到胞外介導(dǎo)MSCs成骨分化。在分子作用上,生長因子活化、肝素結(jié)合等與細胞內(nèi)外代謝、細胞生長和凋亡相關(guān)途徑均被富集(圖2A)。在KEGG分析中,發(fā)現(xiàn)DEGs主要富集在礦物質(zhì)吸收、TNF信號通路、malaria等通路中(圖2B)。

        圖2 DEGs GO富集分析與KEGG分析A:DEGs的GO富集分析;B:DEGs的KEGG分析。Fig.2 The GO enrichment analysis and KEGG analysis of DEGsA: Go enrichment analysis of DEGs; B: KEGG analysis of DEGs

        2.3 內(nèi)源性競爭性lncRNA-miRNA-mRNA互作用網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建和分析

        將篩選得到的DERNA進行比對和匹配,最終得到內(nèi)源性競爭性lncRNA-miRNA-mRNA互作用網(wǎng)

        絡(luò),并通過logFC值判斷上下調(diào),得到可視化網(wǎng)絡(luò)(圖3)。LncRNA SNAI3-AS1、TEX41、NR2F1-AS1和下游潛在靶點miRNA hsa-miR-1207-5p連接,DANCR和下游hsa-miR-1275連接,ARHGAP22-IT1和hsa-miR-224-5p連接,MEG8、TPT1-AS1、SNHG5和hsa-miR-335-3p,SNHG1和hsa-miR-1915-3p連接,LINC01503和hsa-miR-629-5p連接,LINC00472和hsa-miR-22-3p連接,調(diào)節(jié)下游DGEs表達。

        圖3 內(nèi)源性競爭性lncRNA-miRNA-mRNA互作用網(wǎng)絡(luò)Fig.3 LncRNA-miRNA-mRNA network based on ceRNAs theory注:圖中綠色方形代表lncRNA,綠色菱形代表miRNA,圓形代表DEGs,紅色代表上調(diào)DEGs,綠色代表下調(diào)DEGs,顏色越深,∣logFC∣值越大。

        2.4 蛋白互作網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建及集簇模塊篩選

        通過STRING和Cytoscape軟件分析與繪制,得出PPI網(wǎng)絡(luò)(圖4A)。紅色點代表上調(diào)DEGs,綠色代表下調(diào)DEGs,顏色越深,∣logFC∣值越高。通過MCODE(Molecular Complex Detection,版本1.4.2),設(shè)置參數(shù)為degree cutoff=2,node score cutoff=0.2,k-core=2,max.depth=100,score>4,得到兩個集簇模塊,模塊1包含14個節(jié)點(node),75條連線(edge),score=11.538(圖4B);模塊2包含6個節(jié)點(node),15條連線(edge),score=6(圖4C)。富集分析結(jié)果顯示,模塊1中DEGs主要富集在白細胞血管內(nèi)皮粘附(leukocyte adhesion to vascular endothelial cell)和中性粒細胞趨化(neutrophil chemotaxis)中(表1)。KEGG分析提示其主要富集于Malaria通路和類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis)相關(guān)通路中。模塊2中,DEGs主要富集在血管直徑的正向調(diào)節(jié)(positive regulation of blood vessel diameter)中,KEGG分析中,主要富集在炎癥介質(zhì)對TRP通道的調(diào)節(jié)(inflammatory mediator regulation of TRP channels)通路中。

        表1 蛋白-蛋白互作網(wǎng)絡(luò)集簇DEGs的GO分析和KEGG分析Table 1 GO enrichment analysis and KEGG analysis in PPI network and significant clusters

        圖4 PPI網(wǎng)絡(luò)及集簇模塊分析A:PPI網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建,紅色圓形代表上調(diào)的表達,綠色代表下調(diào)的表達,灰色線條代表相互連接;B:集簇模塊(score=11.538),包含14個節(jié)點(node),75條連線(edge);C:集簇模塊(score=6),包含6個節(jié)點(node),15條連線(edge)Fig.4 PPI network and significant clusters analysisA: PPI network construction, red circle represents up-regulated expression, green represents down-regulated expression, and gray line represents interconnection; B: Cluster module (score=11.538), including 14 nodes and 75 edges; C: Cluster module (score=6), including 6 nodes and 15 edges.

        2.5 關(guān)鍵基因篩選

        使用cytoHubba(版本0.1)進行篩選,獲得了10個關(guān)鍵基因(hub gene)(圖5A),顏色越深,代表ranked score排名越靠前。10個hub gene分別為IL6、CXCL12、CXCL8、CCL2、HGF、LEP、VCAM1、CXCL1、SAA1、FOS。對這10個hub gene進行GO分析,發(fā)現(xiàn)其主要富集在趨化因子活化、白細胞血管粘附和單核細胞趨化中(圖5B、5D)。KEGG分析顯示hub gene主要以Malaria相關(guān)通路和白血球粘附血管內(nèi)皮相關(guān)通路為主(圖5C)。

        圖5 基于degree方法在PPI網(wǎng)絡(luò)中的前10個關(guān)鍵基因A:關(guān)鍵基因篩選及互作網(wǎng)絡(luò),顏色越深,代表ranked score排名越靠前;B:關(guān)鍵基因GO富集分析及法分類;C:KEGG富集分析及分類;D:關(guān)鍵基因GO富集直條圖,縱坐標(biāo)代表GO通路,橫坐標(biāo)代表富集的基因數(shù)目。Fig.5 Top 10 hub genes in PPI network ranked by Degree methodA: Key gene screening and interaction network, the darker the color, the higher the ranking of ranked score; B: Go enrichment analysis and classification of key genes; C: KEGG enrichment analysis and classification; D: Go enrichment bar graph of key genes, the ordinate represents go pathway, and the abscissa represents the number of enriched genes.

        3 討論

        lncRNA和miRNA可以調(diào)節(jié)成骨分化中多種信號通路增強或抑制成骨分化能力[18-19]。本研究對GSE89330、GSE72429、GSE74837三組數(shù)據(jù)的分析和篩選,得到了lncRNA-miRNA-mRNA互作網(wǎng)絡(luò)。Fang等[20]發(fā)現(xiàn),DANCR可以通過調(diào)節(jié)滑膜液源性MSCs的miR-1275/MMP-13軸,誘導(dǎo)軟骨形成。Chao等[21]通過對激素性股骨頭壞死的患者miR-1207-5p的分析發(fā)現(xiàn),患者miR-1207-5p水平顯著升高,可能靶向抑制VEGF表達,抑制骨再生。本實驗結(jié)果中同樣獲得了DANCR、miR-1207-5p、miR-1275等RNA的差異表達。這些潛在靶點可以為分子層面研究提供更多的理論依據(jù)。

        通過對DGEs的GO分析及KEGG分析,發(fā)現(xiàn)DEGs富集在炎癥反應(yīng)、血管生成和骨骼系統(tǒng)發(fā)育中。在KEGG分析中,發(fā)現(xiàn)DEGs主要富集在礦物質(zhì)吸收、TNF信號通路、malaria等通路中。在構(gòu)建PPI互作網(wǎng)絡(luò)后,通過集簇篩選和hub gene篩選得到最密集集簇和關(guān)鍵基因。通過再次GO分析和KEGG分析,將富集的范圍縮小,得到最終的富集通路結(jié)果。關(guān)鍵基因主要富集在白細胞系帶或滾動(GO:0050901)、白細胞血管內(nèi)皮粘附(GO:0061756)及趨化因子活化(GO:0008009)等免疫相關(guān)通路中。成骨細胞可以產(chǎn)生免疫相關(guān)性蛋白和趨化因子,誘導(dǎo)B細胞的成熟。趨化因子CXCL12被證明在此過程中被上調(diào),體內(nèi)實驗已經(jīng)證明給予CXCL12后可以促進MSCs的聚集[22-24]。在本實驗中,篩選出的關(guān)鍵基因中,CXCL12被證明顯著下調(diào),證明大量的趨化因子CXCL12靶向作用在MSCs細胞上。

        綜上,本研究通過構(gòu)建lncRNA-miRNA-mRNA的互作網(wǎng)絡(luò),顯示了SNHG1/miR-1915-3p/CXCL12、LINC00472/miR-22-3p/HSD11B1、LINC01503/miR-629-3p/ZBTB16、DANCR/miR-1275/MMP7等具有潛在靶向的通路。分析獲得的相關(guān)差異基因IL6、CXCL12、CXCL8、CCL2、HGF、LEP、VCAM1、CXCL1、SAA1、FOS和ncRNA均在成骨分化中具有較高的組織特異性和功能特異性。

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