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        松果菊苷抑制博來(lái)霉素誘導(dǎo)的肺上皮細(xì)胞損傷及炎癥反應(yīng)*

        2021-12-06 05:16:54崔艷紅李克芳劉培培曲偉偉
        中國(guó)病理生理雜志 2021年11期
        關(guān)鍵詞:細(xì)胞質(zhì)細(xì)胞核氧化應(yīng)激

        崔艷紅, 李克芳, 金 博, 彭 飛, 劉培培, 曲偉偉, 門 翔, 趙 江

        (南陽(yáng)市中心醫(yī)院呼吸與危重癥醫(yī)學(xué)科二病區(qū),河南南陽(yáng)473000)

        博來(lái)霉素(bleomycin,BLM)是一種抗腫瘤藥物,主要用于淋巴瘤、鱗狀細(xì)胞癌和睪丸腫瘤的治療。而BLM 的臨床應(yīng)用常由于肺泡炎的發(fā)生而受到限制,且這種肺炎有可能發(fā)展為間質(zhì)性肺纖維化[1]。在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中,已觀察到BLM 處理能導(dǎo)致肺組織中炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),且肺組織中促炎因子、活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)和反應(yīng)性含氮物質(zhì)升高,甚至?xí)?dǎo)致肺纖維化的發(fā)生[2-3]。因此,抑制BLM 誘導(dǎo)的肺泡炎的發(fā)生對(duì)BLM化療應(yīng)用尤為關(guān)鍵。

        松果菊苷(echinacoside,ECH)是從管花肉蓯蓉中提取的一種苯乙醇苷類化合物。以往的研究[4-5]表明,ECH 對(duì)多種實(shí)體瘤細(xì)胞具有抑制增殖和促進(jìn)凋亡的作用。近年來(lái)的研究[6-7]顯示,ECH 還具有抗衰老、抗炎和抗氧化的藥理作用。然而,目前ECH 對(duì)BLM 導(dǎo)致的肺上皮細(xì)胞損傷和炎癥反應(yīng)的作用尚未明確。因此,本研究采用體外細(xì)胞模型法,初步觀察ECH 處理對(duì)BLM 刺激肺上皮細(xì)胞的凋亡、炎癥因子水平和氧化應(yīng)激的影響,并檢測(cè)與氧化應(yīng)激和炎癥相關(guān)的蛋白核因子E2 相關(guān)因子2(nuclear factor E2-related factor 2,Nrf-2)、核因子 κB(nuclear factor-κB,NF-κB)p65 和環(huán)氧合酶-2(cyclooxygenase-2,COX-2)的表達(dá)水平。

        材料和方法

        1 實(shí)驗(yàn)材料

        人Ⅱ型肺泡上皮細(xì)胞HEPApiC(上海佰曄生物科技中心細(xì)胞庫(kù));胎牛血清(PAA);DMEM 培養(yǎng)液(Gibco);BLM 和ECH(北京邁瑞達(dá)科技有限公司);Hoechst 33258 試劑、Annexin V-FITC/PI 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒和CCK-8 試劑盒(江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司);腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)、白細(xì)胞介素 6(interleukin-6,IL-6)和 IL-1β ELISA 試劑盒(南京森貝伽生物科技有限公司);丙二醛(malondialdehyde,MDA)、ROS 和超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)檢測(cè)試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司);抗 Nrf-2、NF-κB p65 和COX-2 抗體(Stanta Cruz);抗 GAPDH 和 Lamin B1 抗體及HRP 標(biāo)記的Ⅱ抗(武漢博士德生物工程有限公司)。

        2 方法

        2.1 細(xì)胞培養(yǎng) HEPApiC 細(xì)胞加入含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液中,置于37 ℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞約90%鋪滿時(shí)按1∶3 的比例傳代,每3 d傳代換液一次。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        2.2 CCK-8 實(shí)驗(yàn)篩選BLM 和ECH 的最佳處理濃度 將HEPApiC 細(xì)胞制成5×107/L 的細(xì)胞懸液,并接種100 μL細(xì)胞懸液于96孔板中,然后分別用0、1、2.5、5 和 10 mg/L 的 BLM 處理培養(yǎng) 48 h,然后根據(jù)試劑盒說(shuō)明書,分別加入10 μL CCK-8 試劑,并在37 ℃下孵育2 h,用酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm 波長(zhǎng)處的吸光度(A)值,以評(píng)估BLM 的最優(yōu)實(shí)驗(yàn)濃度。然后,將細(xì)胞分別采用 0、5、25、125 和625 mg/L 的 ECH 處理 48 h,再次用CCK-8 法檢測(cè)細(xì)胞活力,以篩選無(wú)細(xì)胞毒性的ECH 濃度范圍。最后,將細(xì)胞用最佳濃度的BLM預(yù)處理30 min,再分別用篩選的無(wú)細(xì)胞毒性的濃度范圍的ECH 分別處理48 h,再次用CCK-8 檢測(cè)細(xì)胞活力,以篩選最佳的ECH實(shí)驗(yàn)濃度。

        2.3 細(xì)胞分組 根據(jù)CCK-8 實(shí)驗(yàn)篩選的BLM 和ECH 濃度,分別將細(xì)胞分為空白對(duì)照(control)組、BLM 處理(BLM)組(最佳實(shí)驗(yàn)濃度的BLM 處理細(xì)胞48 h)和BLM+ECH 組(最佳實(shí)驗(yàn)濃度的BLM 預(yù)處理細(xì)胞30 min,再用最佳實(shí)驗(yàn)濃度的ECH處理48 h)。

        2.4 Hoechst 33258 染色法觀察細(xì)胞凋亡形態(tài) 分別收集各組細(xì)胞,在室溫避光環(huán)境中用Hoechst 33258染色15 min,在顯微鏡下觀察細(xì)胞凋亡形態(tài)。

        2.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率 用不含EDTA的胰酶消化各組細(xì)胞,1 207.4×g離心5 min,收集細(xì)胞,再用PBS重懸2遍,加入結(jié)合緩沖液后,轉(zhuǎn)移至暗室,分別加入Annexin V-FITC 試劑和PI試劑混勻,并孵育15 min,然后用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。

        2.6 ELISA 法檢測(cè)各組細(xì)胞的 TNF-α、IL-6 和 IL-1β水平 收集已處理的各組細(xì)胞的培養(yǎng)基,置于冰盒上保存。然后根據(jù)ELISA 試劑盒步驟,先將各樣品孔用各試劑盒中的抗體包被,然后在抗體包被的樣品孔中加入10 μL 對(duì)應(yīng)各組的培養(yǎng)基,再加入40 μL稀釋液,封板膜封住反應(yīng)孔,放入37 ℃水浴鍋溫浴30 min,棄去液體,洗滌液洗滌5 次,加 50 μL 酶標(biāo)試劑,溫浴30 min,洗滌5 次后,各孔加入顯色液A、B各50 μL,37 ℃避光15 min;加入 50 μL 終止液,并在15 min內(nèi)用酶標(biāo)儀在450 nm 波長(zhǎng)處測(cè)量各孔的吸光度(A)值。繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算各組TNF-α、IL-6 和IL-1β的含量變化。

        2.7 試劑盒法檢測(cè)各組細(xì)胞的氧化應(yīng)激水平 分別按照試劑盒法檢測(cè)各組MDA、ROS 和SOD 水平。對(duì)于MDA 含量的檢測(cè),先用RIPA 裂解各組細(xì)胞,并收集裂解液;然后用BCA 法檢測(cè)裂解液中的蛋白濃度后,取各組裂解液與MDA 檢測(cè)工作液混勻后沸水浴15 min,待冷卻至室溫后,536.6 ×g離心5 min,收集上清液,并分別取100 μL 上清液加入96 孔板,用酶標(biāo)儀檢測(cè)530 nm波長(zhǎng)處吸光度值;最后,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算各組樣品上清液中MDA 含量,并用裂解液中單位質(zhì)量蛋白的含量將細(xì)胞中MDA 的含量標(biāo)準(zhǔn)化。對(duì)于ROS 水平的檢測(cè),在37 ℃下,分別用10 μmol/L 的 DCFH-DA 避光孵育各組細(xì)胞 20 min,然后用熒光顯微鏡觀察,并用自帶軟件統(tǒng)計(jì)各組熒光值。對(duì)于SOD 活性的檢測(cè),先用SOD 制備液充分裂解細(xì)胞,并在4 ℃下用190 000×g離心5 min收集上清液,并用BCA 法檢測(cè)上清液中蛋白濃度;然后根據(jù)試劑盒提供方法分為樣品孔、空白對(duì)照孔1 和空白對(duì)照孔2,并分別加入SOD 檢測(cè)工作液和反應(yīng)啟動(dòng)液,37 ℃孵育30 min,然后用酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm 波長(zhǎng)處吸光度值;最后根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線和上清液中蛋白濃度計(jì)算SOD的活性。

        2.8 Western blot 法檢測(cè)蛋白的相對(duì)表達(dá)量 分別用細(xì)胞質(zhì)/細(xì)胞核分離試劑盒和RIPA 萃取各組細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)蛋白、細(xì)胞核蛋白和總蛋白。然后利用BCA 法將各組蛋白樣品定量至相同濃度后,各組樣品分別取 40 μg 蛋白進(jìn)行 Western blot 電泳/電轉(zhuǎn)程序。將電轉(zhuǎn)后的蛋白用5%脫脂牛奶封閉后,室溫孵育 1∶1 000 的稀釋比例的Ⅰ抗(Nrf-2、NF-κB p65 和COX-2)2 h,TBST 洗滌 3 次后室溫孵育相應(yīng)的 HRP標(biāo)記的Ⅱ抗1 h,TBST 洗滌3 次,加入顯影液并進(jìn)行顯影;然后分別按上述方法孵育內(nèi)參照。以Lamin B1 為細(xì)胞核蛋白內(nèi)參照,以GAPDH 為細(xì)胞質(zhì)蛋白和總蛋白內(nèi)參照,用ImageJ 軟件量化蛋白相對(duì)表達(dá)量。

        3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        結(jié)果均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,并采用SPSS 17. 0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。采用單因素方差分析事后Bonferroni校正法進(jìn)行多組間均數(shù)的兩兩比較。當(dāng)P<0.05 時(shí),差異被認(rèn)為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1 ECH能逆轉(zhuǎn)BLM誘導(dǎo)的HEPApiC活性降低

        圖 1A 顯 示 ,BLM 濃 度 為 5 和 10 mg/L 時(shí) HEPApiC 活性顯著降低(P<0.05,P<0.01),且在10 mg/L時(shí)細(xì)胞活性降低最為顯著,故后續(xù)選擇BLM 的實(shí)驗(yàn)濃度為10 mg/L。圖1B顯示,0~125 mg/L濃度范圍的ECH 對(duì) HEPApiC 無(wú)細(xì)胞毒性;且 25 和 125 mg/L 的ECH 均能部分抑制BLM 誘導(dǎo)的HEPApiC 活性降低(P<0.05,P<0.01),但ECH 在125 mg/L 時(shí)效果最為顯著(圖1C),故后續(xù)選擇ECH 的實(shí)驗(yàn)濃度為125 mg/L。

        2 ECH可減少BLM誘導(dǎo)的HEPApiC凋亡

        Hoechst 33258 染色結(jié)果(圖2A)顯示,對(duì)照組細(xì)胞核正常,BLM 組HEPApiC 出現(xiàn)細(xì)胞核固縮和凋亡小體(熒光碎片);BLM+ECH 組細(xì)胞的凋亡小體減少。流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果(圖2B、2C)顯示,相較于對(duì)照組,BLM組細(xì)胞凋亡比例顯著增加(P<0.01);給予ECH 后,由BLM 誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.01)。

        3 ECH可降低BLM誘導(dǎo)的HEPApiC的炎癥水平

        圖 3 顯示,相較于對(duì)照組,BLM 組 HEPApiC 細(xì)胞的 IL-6、IL-1β 和 TNF-α 分泌水平顯著增加(P<0.01);給予 ECH 后,BLM 誘導(dǎo)的上述促炎因子的水平均顯著降低(P<0.01)。

        4 ECH 可降低BLM 誘導(dǎo)的HEPApiC 的氧化應(yīng)激水平

        圖 4 顯示,相較于對(duì)照組,BLM 組 HEPApiC 細(xì)胞中ROS 和MDA 水平顯著增加(P<0.01),SOD 活性顯著降低(P<0.01);與BLM 組比較,BLM+ECH 組HEPApiC 細(xì)胞中ROS 和MDA 水平顯著降低(P<0.01),SOD活性顯著增加(P<0.01)。

        5 ECH 對(duì) BLM 誘導(dǎo)的 Nrf-2/NF-κB/COX-2 信號(hào)通路的影響

        Figure 1. Screening of BLM and ECH concentrations. A:effects of different concentrations of BLM on viability in HEPApiCs;B:effects of different concentrations of ECH on viability in HEPApiCs;C:effect of ECH on BLM-induced viability. Mean±SD.n=4.*P<0.05,**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs BLM group.圖1 BLM和ECH實(shí)驗(yàn)濃度的篩選

        圖 5 顯示,相較于對(duì)照組,BLM 組 HEPApiC 細(xì)胞中細(xì)胞核 NF-κB p65、細(xì)胞核 Nrf-2 及 COX-2 蛋白的表達(dá)均顯著增加(P<0.01),細(xì)胞質(zhì)NF-κB p65 和細(xì)胞質(zhì)Nrf-2蛋白的表達(dá)顯著降低(P<0.01);與BLM組比較,BLM+ECH 組 HEPApiC 細(xì)胞中細(xì)胞核 NF-κB p65、細(xì)胞質(zhì)Nrf-2 以及COX-2 蛋白的表達(dá)均顯著降低(P<0.05,P<0.01),細(xì)胞質(zhì) NF-κB p65 和細(xì)胞核Nrf-2蛋白表達(dá)顯著增加(P<0.01)。

        討 論

        BLM 是常用的抗腫瘤藥物。然而,有研究[1-3,8]顯示,BLM 在氧分子和鐵離子存在下可產(chǎn)生活性氧自由基,活性氧不僅可引起急性損傷性肺泡炎,還可破壞肺泡上皮細(xì)胞中的DNA 空間結(jié)構(gòu),誘發(fā)脂質(zhì)過(guò)氧化和細(xì)胞凋亡,損傷肺功能。因此,逆轉(zhuǎn)BLM化療造成的肺損傷對(duì)BLM 的化療效果具有重大的意義。本研究采用BLM 刺激HEPApiC 以模擬體外環(huán)境BLM 誘導(dǎo)的肺泡炎,結(jié)果顯示,ECH 能抑制 BLM 誘導(dǎo)的HEPApiC凋亡、促炎因子和氧化應(yīng)激水平,提示ECH可能具有改善BLM誘導(dǎo)的肺泡炎的潛力。

        Nrf-2 是細(xì)胞內(nèi)維持氧化/還原平衡的主要轉(zhuǎn)錄因子,在正常生理狀態(tài)下,其被限制在細(xì)胞質(zhì)中且保持失活;在受到氧化刺激時(shí),Nrf-2 易位到細(xì)胞核中,并與抗氧化劑反應(yīng)元件結(jié)合而激活[9]。Nrf-2 激活可通過(guò)上調(diào)如SOD、血紅素加氧酶1和谷胱甘肽還原酶等一系列抗氧化蛋白表達(dá),從而減輕氧化應(yīng)激引起的肺損傷[10-11]。本研究結(jié)果顯示,在給予 BLM 作用后,HEPApiC 的氧化應(yīng)激水平增加,且細(xì)胞中Nrf-2入核,而加入ECH 后氧化應(yīng)激水平降低,且細(xì)胞中Nrf-2 入核進(jìn)一步增加,提示ECH 降低BLM 誘導(dǎo)的HEPApiC 氧化應(yīng)激可能與增強(qiáng)Nrf-2 核轉(zhuǎn)位有關(guān)。在正常生理狀態(tài)下,NF-κB 以非活性的形式被錨定在于細(xì)胞質(zhì)內(nèi),在外界如氧化應(yīng)激、感染和炎癥等刺激下,NF-κB從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)位于細(xì)胞核,激活NF-κB[12]。已有的研究[12-14]顯示,降低NF-κB活性可抑制機(jī)體多種組織炎癥。在本研究結(jié)果提示,ECH 減輕BLM 誘導(dǎo)的HEPApiC 炎癥反應(yīng),可能與其降低NF-κB p65核轉(zhuǎn)位有關(guān)。COX-2 是細(xì)胞炎癥反應(yīng)和凋亡的重要介導(dǎo)因子,在正常肺組織中幾乎不表達(dá)COX-2;而肺組織受到氧化應(yīng)激和致炎刺激時(shí),COX-2 異常高表達(dá),且高表達(dá)的COX-2 能加劇炎癥反應(yīng)和組織損傷[15-16]。在本研究中,COX-2 在 BLM 作用后上調(diào),而加入ECH 后的COX-2 的表達(dá)明顯降低,提示COX-2可能參與ECH 對(duì)BLM 誘導(dǎo)的HEPApiC 損傷和炎癥反應(yīng)的抑制作用。

        Figure 2. ECH reduced BLM-induced apoptosis in HEPApiCs. A:Hoechst 33258 stained images(scale bar=20 μm);B and C:apoptosis rate was detected by flow cytometry. Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs BLM group.圖2 ECH可減少BLM誘導(dǎo)的HEPApiC凋亡

        Figure 3. ECH reduced BLM-induced inflammation level in HEPApiCs. The secretion levels of IL-6(A),IL-1β(B)and TNF-α(C)in HEPApiCs of each group were detected by ELISA. Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs BLM group.圖3 ECH可降低BLM誘導(dǎo)的HEPApiC的炎癥水平

        Figure 4. ECH reduced BLM-induced oxidative stress level in HEPApiCs. A and B:results of ROS level(scale bar=20 μm);C:results of MDA level;D:results of SOD activity. Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs BLM group.圖4 ECH可降低BLM誘導(dǎo)的HEPApiC氧化應(yīng)激水平

        Figure 5. Effect of ECH on BLM-induced Nrf-2/NF-κB/COX-2 signaling pathway. A to C:the protein expression of NF-κB p65 in HEPApiCs was detected by Western blot;D to F:the protein expression of Nrf-2 in HEPApiCs was detected by Western blot;G and H:the protein expression of COX-2 in HEPApiCs was detected by Western blot. Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs BLM group.圖5 ECH對(duì)BLM誘導(dǎo)的Nrf-2/NF-κB/COX-2信號(hào)通路的影響

        綜上所述,本研究結(jié)果顯示,ECH 對(duì)BLM 誘導(dǎo)的肺上皮細(xì)胞的氧化損傷和炎癥反應(yīng)具有抑制作用,且能促進(jìn)Nrf-2 入核和下調(diào)NF-κB/COX-2 信號(hào)活性。但本研究尚存在一定的局限性,比如未進(jìn)行動(dòng)物模型的相關(guān)研究,也未對(duì)細(xì)胞進(jìn)行恢復(fù)實(shí)驗(yàn)以驗(yàn)證ECH 對(duì)BLM 誘導(dǎo)的肺上皮細(xì)胞的氧化損傷和炎癥反應(yīng)的確切機(jī)制,故ECH 抗BLM 誘導(dǎo)的肺泡炎的具有作用及其具體機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。

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