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        釀酒酵母TAP42基因在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)中的作用

        2021-11-19 03:07:22崔新剛孫雅欣崔曉靜鄧雁文孫恩浩王俊芳崔紅晶
        生物技術(shù)通報(bào) 2021年10期
        關(guān)鍵詞:細(xì)胞壁酵母菌酵母

        崔新剛 孫雅欣 崔曉靜 鄧雁文 孫恩浩 王俊芳 崔紅晶,

        (1. 牡丹江醫(yī)學(xué)院,牡丹江 157011;2. 廣東醫(yī)科大學(xué)醫(yī)學(xué)分子診斷重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,東莞 523808;3. 廣東醫(yī)科大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院,東莞 523808;4. 廣東醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,東莞 523808)

        當(dāng)釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)細(xì)胞處于生長(zhǎng)、發(fā)育或外環(huán)境干擾細(xì)胞壁完整性的時(shí)候,細(xì)胞壁以高度調(diào)控和極化的方式被重構(gòu),這一過(guò)程主要被細(xì)胞壁完整性(cell wall integrity,CWI)信號(hào)通路所調(diào)控[1]。細(xì)胞表面感應(yīng)因子Wsc1-3p、Mid2p和Mtl1p把應(yīng)激信號(hào)傳導(dǎo)給小G蛋白(Rho1p),進(jìn)一步激活絲裂原活化蛋白激酶(the mitogen-activated protein kinase,MAPK)/Slt2p信號(hào)級(jí)聯(lián)反應(yīng),誘導(dǎo)CWI信號(hào)通路,上調(diào)靶基因轉(zhuǎn)錄,調(diào)控細(xì)胞壁重構(gòu)[1]。與經(jīng)典CWI信號(hào)通路相平行,Mpt5p和Ssd1p兩條信號(hào)通路也參與調(diào)控細(xì)胞壁生物合成相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄或轉(zhuǎn)錄后加工。因此,在釀酒酵母細(xì)胞中有3條信號(hào)通路協(xié)同調(diào)控細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和細(xì)胞的完整性[2-3]。

        釀酒酵母Tap42p(type 2A associated protein-42kD)位于保守性壽命調(diào)控通路TOR(target of rapamycin)的下游,作為必需蛋白Tap42p參與抑制或激活蛋白磷酸酶的調(diào)控過(guò)程,且直接或間接受TOR調(diào)控轉(zhuǎn)錄[4]。已有研究報(bào)道細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中Ssd1p可恢復(fù)TAP42基因缺失菌株在高溫生長(zhǎng)條件下的生長(zhǎng)活力,提示TAP42可能參與細(xì)胞壁完整性的調(diào)控[5],但其在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)中的具體作用仍未知。本實(shí)驗(yàn)觀察TAP42基因?qū)湍讣?xì)胞分裂增殖能力的影響,研究TAP42基因在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)作用,進(jìn)一步探討Tap42p參與調(diào)控細(xì)胞壁完整性信號(hào)通路的可能機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 試劑 Easy Taq DNA聚合酶(貨號(hào):AP111)、HiFi DNA聚合酶(貨號(hào):AP131)和DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)購(gòu)自北京全式金生物技術(shù)有限公司;酵母提取物(貨號(hào):LP0021)和胰蛋白胨(貨號(hào):LP0042)購(gòu)自生工生物工程(上海)股份有限公司;SD培養(yǎng)基(貨號(hào):630411)購(gòu)自Clontech公司;熒光增白劑(貨號(hào):18909)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司,按照說(shuō)明書(shū)分別配制成10 μg/mL的工作液。

        1.1.2 酵母和載體 釀酒酵母BY4743(MATa/α his3Δ1/his3Δ1 leu2Δ0/leu2Δ0 LYS2/lys2Δ0 met15Δ0/MET15 ura3Δ0/ura3Δ0)和載體 pRS306 為實(shí)驗(yàn)室保存。載體為低拷貝穿梭載體,在大腸桿菌中具有氨芐青霉素抗性,分別帶有Ura營(yíng)養(yǎng)篩選標(biāo)簽。引物由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成(表1)。

        表1 本實(shí)驗(yàn)所用引物序列Table 1 Nucleotide sequence of primers used in this study

        1.2 方法

        1.2.1 TAP42基因缺失菌株的構(gòu)建與驗(yàn)證 構(gòu)建方法參照文獻(xiàn)進(jìn)行[6]。以載體pRS306為模板,TAP42-F和TAP42-R為引物,PCR擴(kuò)增TAP42基因破壞元件。采用醋酸鋰方法將破壞元件轉(zhuǎn)化進(jìn)野生型酵母細(xì)胞(BY4743),經(jīng)Ura營(yíng)養(yǎng)型缺陷培養(yǎng)基篩選。PCR鑒定陽(yáng)性克隆基因組DNA,鑒定引物分別為T(mén)AP42基因開(kāi)放閱讀框外側(cè)引物(V-TAP42-F/V-TAP42-R),TAP42基因開(kāi)放閱讀框內(nèi)部鑒定引物(TAP42-int-F/TAP42-int-R)以及營(yíng)養(yǎng)篩選標(biāo)簽URA3基因內(nèi)部引物和TAP42基因開(kāi)放閱讀框外側(cè)引物(URA-int-F/V-TAP42-R),采用Easy Taq DNA聚合酶,反應(yīng)體系和反應(yīng)條件參照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

        1.2.2 生長(zhǎng)曲線 實(shí)驗(yàn)方法參照文獻(xiàn)進(jìn)行[7-8]。制備300 μL 含酵母細(xì)胞的葡萄糖蛋白胨酵母膏(yeast extract peptone dextrose,YPD)新鮮培養(yǎng)物(含10 μg/mL熒 光 增 白 劑(calcofluorwhite stain,CFW),A600值約為0.04,30℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)24 h;每間隔2 h 全自動(dòng)生長(zhǎng)曲線分析儀(Bioscreen C MB system,F(xiàn)inland)測(cè)定標(biāo)本A600值。根據(jù)吸光度值,計(jì)算酵母菌株的細(xì)胞分裂增殖活性,并繪制生長(zhǎng)曲線圖。3次獨(dú)立重復(fù)實(shí)驗(yàn)。

        1.2.3 點(diǎn)板實(shí)驗(yàn) 取等量的酵母菌株新鮮培養(yǎng)物(A600值約為0.25),無(wú)菌水倍比稀釋?zhuān)?∶10),取3.5 μL稀釋培養(yǎng)物滴入實(shí)驗(yàn)組YPD培養(yǎng)平板(含10 μg/mL CFW)[9]。倒置 30℃培養(yǎng),從第 2天起每隔12 h觀察菌落形態(tài),并拍照。3次獨(dú)立重復(fù)實(shí)驗(yàn)。

        1.2.4 定量RT-PCR 將酵母菌株培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,收集1 mL酵母菌株新鮮培養(yǎng)物(A600值約為2.5),提取酵母細(xì)胞總RNA、制備cDNA,以及實(shí)時(shí)定量PCR方法均參照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。定量PCR實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以酵母PRP8基因?yàn)閰⒈?,根?jù)2-ΔΔCT法計(jì)算細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中效應(yīng)基因的轉(zhuǎn)錄水平。

        1.2.5 統(tǒng)計(jì)分析 采用SPSSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件。兩組間的比較采用t檢驗(yàn);以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,P<0.01為差異有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 TAP42基因缺失菌株的鑒定

        破壞元件轉(zhuǎn)化野生型酵母細(xì)胞(BY4743),PCR驗(yàn)證陽(yáng)性克隆酵母細(xì)胞基因組DNA,結(jié)果顯示:引物V-TAP42-F和V-TAP42-R所擴(kuò)增片段大小為1 678 bp;引物TAP42-int-F和TAP42-int-R所擴(kuò)增片段為164 bp;引物URA-int-F和V-TAP42-R所擴(kuò)增片段為712 bp,結(jié)果與預(yù)期大小一致(圖1)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,TAP42基因缺失菌株(BY4743 tap42Δ)構(gòu)建成功。

        圖1 TAP42基因缺失酵母菌株的驗(yàn)證圖Fig. 1 Agarose gel electrophoresis of PCR products on verifying the TAP42 deletion strain

        2.2 TAP42基因缺失菌株的分裂增殖能力

        通過(guò)點(diǎn)板實(shí)驗(yàn)和全自動(dòng)生長(zhǎng)曲線分析儀檢測(cè)酵母細(xì)胞增殖能力,研究TAP42基因缺失對(duì)酵母細(xì)胞分裂增殖能力的影響。結(jié)果顯示:與BY4743菌株比較,tap42Δ菌株形成的較小克隆,細(xì)胞增殖活力較差(圖2-A);與BY4743菌株平均約12 h達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期比較,tap42Δ菌株平均約18 h達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,細(xì)胞增殖活力較差,提示缺失TAP42基因抑制酵母細(xì)胞分裂增殖能力(圖2-B)。以上結(jié)果說(shuō)明缺失TAP42基因減弱酵母細(xì)胞的分裂增殖能力。

        圖2 酵母細(xì)胞的分裂增殖能力Fig. 2 Cell proliferation ability of the yeast strains

        2.3 TAP42基因缺失酵母菌株的細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)抗性

        為進(jìn)一步研究tap42Δ菌株在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)中的作用,本實(shí)驗(yàn)觀察在含細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)誘導(dǎo)劑培養(yǎng)條件下的細(xì)胞克隆形成能力和生長(zhǎng)活力。結(jié)果顯示:在YPD培養(yǎng)基條件下,與BY4743菌株的克隆形成能力和細(xì)胞增殖活力比較,tap42Δ菌株的分裂增殖能力明顯減弱;在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)(含10 μg/mL CFW)條件下,與BY4743菌株的克隆大小比較,tap42Δ菌株的克隆形成能力無(wú)明顯差異(圖3-A),兩菌株的生長(zhǎng)均受到抑制,與BY4743菌株平均約20 h達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期比較,tap42Δ菌株平均約21 h達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,細(xì)胞增殖活力無(wú)明顯差異(圖3-B)。以上結(jié)果說(shuō)明缺失TAP42基因增強(qiáng)酵母細(xì)胞對(duì)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)的抵抗性。

        圖3 酵母菌株的細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)抗性Fig.3 Resistance to the cell wall stress response of the yeast strains

        2.4 細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)水平

        為研究tap42Δ菌株參與細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路的可能機(jī)制,本研究采用定量qRT-PCR檢測(cè)參與細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和完整性調(diào)控通路中轉(zhuǎn)錄因子SWI4、SWI6、MPT5和SSD1的表達(dá)水平。結(jié)果顯示:在正常生理?xiàng)l件下,與BY4743比較,tap42Δ菌株中SWI4、SWI6、MPT5和SSD1基因表達(dá)明顯升高;在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)條件下,與BY4743比較,tap42Δ菌株中SWI4基因表達(dá)上調(diào),MPT5基因表達(dá)下調(diào)(圖4)。因此,缺失TAP42能誘導(dǎo)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中轉(zhuǎn)錄因子SWI4、SWI6、MPT5和SSD1的表達(dá)水平。

        圖4 酵母菌株中 SWI4、SWI6、MPT5 和 SSD1 基因定量表達(dá)水平應(yīng)激反應(yīng)抗性Fig.4 Expression levels of SWI4, SWI6, MPT5 and SSD genes in yeast strains

        3 討論

        本研究采用一步基因置換法,基于基因同源重組的原理[10-11],在二倍體酵母細(xì)胞BY4743菌株中敲除TAP42單倍體基因,保留另一單倍體基因在酵母細(xì)胞中的活性。結(jié)果發(fā)現(xiàn),缺失TAP42基因減弱酵母細(xì)胞分裂增殖能力,提示Tap42p對(duì)酵母細(xì)胞的正常分裂增殖來(lái)說(shuō)是必需的,推測(cè)Tap42p參與酵母細(xì)胞分裂增殖能力的調(diào)控。已有文獻(xiàn)報(bào)道Tap42p以不依賴TOR功能的方式調(diào)節(jié)細(xì)胞的分裂增殖能力,進(jìn)而調(diào)控果蠅生存活力;敲除Tap42蛋白的果蠅誘導(dǎo)JNK信號(hào)通路,激活Caspase信號(hào)通路,最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡[12]。以上結(jié)果均說(shuō)明TAP42基因參與單細(xì)胞真核生物釀酒酵母和多細(xì)胞真核生物分裂增殖能力的調(diào)控。

        釀酒酵母Tap42p是TOR壽命調(diào)控信號(hào)通路中下游靶蛋白之一,TOR激酶與蛋白磷酸酶2A(protein phosphatase 2A,PP2A)、PP2A樣催化亞基Sit4和Pph21/22之間競(jìng)爭(zhēng)性調(diào)控Tap42p磷酸化或非磷酸化的活性形式[3]。因此,TOR激酶可直接或間接地調(diào)控Tap42p的功能,使其在細(xì)胞應(yīng)激反應(yīng)[5,13]、自噬作用[14-15]和生長(zhǎng)發(fā)育[16-17]等生物過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用。

        本研究通過(guò)觀察tap42Δ菌株在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)條件下的細(xì)胞分裂增殖能力,研究Tap42蛋白在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)中的作用。結(jié)果發(fā)現(xiàn),細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)誘導(dǎo)劑處理后的BY4743和tap42Δ酵母細(xì)胞的生長(zhǎng)均受到抑制,但tap42Δ酵母細(xì)胞增殖活力與野生型酵母細(xì)胞接近,提示tap42Δ菌株對(duì)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)有一定的抗性。我們推測(cè)可能原因是單倍體TAP42基因轉(zhuǎn)錄本在調(diào)控tap42Δ菌株細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和細(xì)胞完整性方面具有重要的代償性功能;也可能與Tap42p具有兩種活性形式,協(xié)同調(diào)控細(xì)胞活性相關(guān),磷酸化Tap42p作為PP2A磷酸酶活性的抑制劑,而非磷酸化Tap42p作為其激活劑,分別通過(guò)轉(zhuǎn)錄因子Msn2/4、Gln3和Rtg1/3信號(hào)通路誘導(dǎo)核內(nèi)靶基因的上調(diào)表達(dá),參與調(diào)控細(xì)胞應(yīng)激反應(yīng)過(guò)程,進(jìn)而改善細(xì)胞應(yīng)激適應(yīng)能力[13]。本研究進(jìn)一步也發(fā)現(xiàn)缺失TAP42基因誘導(dǎo)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中轉(zhuǎn)錄因子SWI4、SWI6、MPT5和SSD1表達(dá)上調(diào),推測(cè)上調(diào)保護(hù)性CWI、Mpt5和Ssd1信號(hào)通路賦予tap42Δ菌株對(duì)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)的抵抗性,可能原因與上調(diào)的信號(hào)通路協(xié)同調(diào)控細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和細(xì)胞完整性,參與細(xì)胞壁重塑功能,抵抗細(xì)胞壁應(yīng)激損傷相關(guān)。已有研究報(bào)道SSD1基因恢復(fù)tap42Δ菌株在高溫生長(zhǎng)條件下的存活力[5],也提示上調(diào)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子的水平能改善tap42Δ菌株在熱應(yīng)激條件的存活能力,這一研究結(jié)論也佐證了本研究關(guān)于上調(diào)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)信號(hào)通路的活性賦予tap42Δ菌株對(duì)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)抗性的推測(cè)。

        酵母細(xì)胞壁是一種堅(jiān)固而富有彈性的結(jié)構(gòu),對(duì)維持細(xì)胞形狀和完整性及促進(jìn)細(xì)胞周期進(jìn)展至關(guān)重要。當(dāng)細(xì)胞內(nèi)外物理化學(xué)環(huán)境發(fā)生變換時(shí),可能誘導(dǎo)經(jīng)典細(xì)胞壁完整性(CWI)信號(hào)通路中蛋白激酶C-絲裂原活化蛋白激酶(PKC-MAPK)的激活,誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄因子Rlm1p、Swi4/6p和Skn7p的表達(dá)水平,參與下游靶基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控[2],進(jìn)一步調(diào)控β-葡聚糖和細(xì)胞壁相關(guān)成分,參與細(xì)胞壁重構(gòu),賦予細(xì)胞應(yīng)激抵抗能力[1,18]。在調(diào)控細(xì)胞壁重構(gòu)這一過(guò)程中,兩個(gè)轉(zhuǎn)錄后調(diào)控因子Mpt5p和Ssd1p,以不依賴MAPK/Slt2p方式參與細(xì)胞壁生物合成方面的調(diào)控,或通過(guò)間接機(jī)制改善細(xì)胞壁完整性[2-4]。綜上,本研究結(jié)果推測(cè)缺失TAP42基因誘導(dǎo)SWI4、SWI6、MPT5和SSD1保護(hù)性信號(hào)通路上調(diào)可能賦予菌株對(duì)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)的抵抗性,但具體的作用機(jī)制有待進(jìn)一步研究。

        4 結(jié)論

        通過(guò)構(gòu)建TAP42基因缺失酵母菌株研究其克隆形成能力和細(xì)胞分裂增殖能力,以及在細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)中的作用,結(jié)果表明缺失TAP42基因減弱酵母細(xì)胞分裂增殖能力,形成較小克隆。研究結(jié)果推測(cè)上調(diào)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)通路中轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)水平能增強(qiáng)TAP42基因缺失酵母菌株對(duì)細(xì)胞壁應(yīng)激反應(yīng)誘導(dǎo)劑的抵抗性,但具體作用和作用機(jī)制有待進(jìn)一步研究。

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