劉 曉, 蘭 圖, 劉芳靜, 蹇京宴, 甘榆訊
自貢市第一人民醫(yī)院 眼科,四川 自貢 643000
糖尿病性視網(wǎng)膜病變(diabetic retinopathy,DR)是糖尿病主要的微血管并發(fā)癥之一,其病變基礎(chǔ)是人視網(wǎng)膜內(nèi)皮細(xì)胞(human retinal endothelial cells,hRECs)功能障礙[1]。在高糖(high glucose,HG)作用下,hRECs啟動(dòng)氧化應(yīng)激,產(chǎn)生大量活性氧簇(reactive oxygen species,ROS);而硫氧還蛋白相互作用蛋白(thioredoxin interacting protein,TXNIP)可抑制硫氧還蛋白的抗氧化功能,導(dǎo)致HG作用下的hRECs產(chǎn)生ROS積累和氧化應(yīng)激損傷[2]。TXNIP是細(xì)胞氧化應(yīng)激和含NLR家族Pyrin域蛋白3(NLR family pyrin domain containing protein 3,NLRP3)炎癥小體之間的橋梁[3]。NLRP3炎癥小體是細(xì)胞內(nèi)固有免疫蛋白,被認(rèn)為是病原體和損傷相關(guān)分子模式的傳感器。而葡萄糖異常被認(rèn)為是無(wú)菌炎癥反應(yīng)的重要觸發(fā)因素,這種炎癥反應(yīng)主要由NLRP3炎癥小體介導(dǎo)[4]。因此,ROS/TXNIP/NLRP3通路可能是治療因HG引起的微血管病變的有效作用靶點(diǎn)。維生素D(vitamin D,VD)是一種可溶于脂肪的甾體類(lèi)藥物,其活性代謝產(chǎn)物1,25-(OH)2D3與內(nèi)源性細(xì)胞因子類(lèi)似,可參與多種信號(hào)通路的調(diào)節(jié),包括抑制凋亡、抗氧化、抗炎、免疫調(diào)節(jié)等[5]。蘇嬌等[6]研究發(fā)現(xiàn),血清1,25-(OH)2D3水平降低是2型糖尿病患者DR的獨(dú)立預(yù)測(cè)因子。本研究旨在探討VD3在介導(dǎo)HG誘導(dǎo)的hRECs凋亡及NLRP3炎癥小體活性中的作用,并分析ROS/TXNIP/NLRP3通路在VD3抑制hRECs凋亡過(guò)程中的作用?,F(xiàn)報(bào)道如下。
1.1 細(xì)胞 hRECs(貨號(hào):ACBRI 181)由美國(guó)Kirkland細(xì)胞實(shí)驗(yàn)室提供。
1.2 主要試劑與儀器 Lonza EGM-2 BulletKit內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)基購(gòu)自瑞士Lonza公司;N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;Ultrapure RNA提取試劑盒、HiFi-MMLV cDNA合成試劑盒、SYBR Green Master Mix試劑盒購(gòu)自北京CWBIO公司。CCK-8試劑盒、ROS檢測(cè)試劑盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)檢測(cè)試劑盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)檢測(cè)試劑盒、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)檢測(cè)試劑盒、白細(xì)胞介素1β(interleukin 1β,IL-1β)、白細(xì)胞介素18(interleukin 18,IL-18)試劑盒購(gòu)自南京建成生物研究所;Annexin V-異硫氰酸熒光素(fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)/碘化丙啶(propidium iodide,PI)流式細(xì)胞檢測(cè)試劑盒、BD FACS Canto Ⅱ流式細(xì)胞儀購(gòu)自美國(guó)BD公司;蛋白定量試劑盒購(gòu)自美國(guó)Pierce;LipofectamineTM 2000轉(zhuǎn)染質(zhì)粒購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司;小鼠抗人NLRP3多克隆抗體、兔抗人凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白包含caspase結(jié)構(gòu)域(apoptosis-associated speck-like protein,ASC)單克隆抗體、兔抗人半胱天冬氨酸酶1前體(pro-caspase-1)多克隆抗體、cleaved caspase-1多克隆抗體、大鼠抗人TXNIP多克隆抗體購(gòu)自美國(guó)Adipogen公司;免疫印跡二抗免疫球蛋白G(immunoglobulin G,IgG)購(gòu)自Abcam公司。SpectraMax M4多功能酶標(biāo)儀購(gòu)自美谷分子儀器(上海)有限公司。
1.3 研究方法
1.3.1 細(xì)胞培養(yǎng)與分組 將hRECS培養(yǎng)在EGM-2 BulletKit內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)基中,含10%胎牛血清、100 U/ml青霉素+100 μg/ml鏈霉素,細(xì)胞培養(yǎng)環(huán)境為37℃、5% CO2。P3~P7代細(xì)胞被用于本研究。取饑餓培養(yǎng)24 h后的hRECs分為正常濃度(normal glucose,NG)組、高滲組、HG組、HG+陰性對(duì)照(negative control,NC)組、HG+小干擾RNA靶向的硫氧還蛋白相互作用蛋白(small interfering RNA targeting TNXNIP,siTXNIP)組、VD3+HG組、VD3+HG+NC組、VD3+HG+TXNIP組、NAC+HG組。NG組采用含有5.0 mmol/L D-葡萄糖的培養(yǎng)基培養(yǎng);高滲組采用含有50.0 mmol/L甘露醇的培養(yǎng)基培養(yǎng);其余7組用含有50.0 mmol/L D-葡萄糖的培養(yǎng)基培養(yǎng)。其中,HG+NC組、VD3+HG+NC組轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照無(wú)序序列(pcDNA3.1-scramble);HG+siTXNIP組轉(zhuǎn)染pcDNA3.1-siTXNIP;VD3+HG+TXNIP組轉(zhuǎn)染pcDNA3.1-TXNIP質(zhì)粒;VD3+HG組、VD3+HG+NC組、VD3+HG+TXNIP組在培養(yǎng)基中加入50.0 nmol/L濃度的VD3;NAC+HG組加入ROS清除劑NAC,濃度為10.0 mmol/L。各組hRECs均培養(yǎng)48 h。
1.3.2 質(zhì)粒構(gòu)建與轉(zhuǎn)染 無(wú)序siRNA正義序列為5′-GAA CUG AUG ACA GGG AGG CTT-3′,反義序列為5′-GAA GAA GUC GUG CUG CCU UTT-3′;TXNIP siRNA正義序列為5′-UGG UCA CGU CGA AAU GAA UTT-3′,反義序列為5′-TTG ACA CGU GCU CCC UAC GUG-3′。通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)法擴(kuò)增正常hRECs的cDNA,獲得TXNIP全長(zhǎng)編碼區(qū),然后,亞克隆到pcDNA3.1載體上。轉(zhuǎn)染方法:將hRECs細(xì)胞培養(yǎng)至80%融合,用LipofectamineTM 2000轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染4 μg pcDNA3.1-siTXNIP或pcDNA3.1-TXNIP質(zhì)粒。用pcDNA3.1-scramble質(zhì)粒作為陰性對(duì)照。培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞。
1.3.3 細(xì)胞增殖情況 采用CCK-8法檢測(cè)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期hRECs接種于96孔板上(2×104個(gè)/ml,100 μl/孔),分別于NG環(huán)境與HG環(huán)境下經(jīng)不同濃度(5.0、10.0、20.0、50.0、100.0 mmol/L)VD3處理48 h后,每孔加入10 μl的CCK-8溶液,輕微混勻,繼續(xù)孵育2 h后,用SpectraMax M4多功能酶標(biāo)儀于450 nm波長(zhǎng)下測(cè)光密度值(optical density,OD)。
1.3.4 細(xì)胞RNA提取與RT-PCR法檢測(cè)TXNIP mRNA表達(dá) 收集細(xì)胞,用Ultrapure RNA提取試劑盒提取細(xì)胞總RNA。利用HiFi-MMLV cDNA合成試劑盒將2 μg總RNA合成cDNA。應(yīng)用StepOnePlus Real-Time PCR生物系統(tǒng),采用SYBR Green Master Mix試劑盒進(jìn)行qRT-PCR,擴(kuò)增4.4 μl cDNA片段,總體積為20.0 μl。95℃下進(jìn)行30 min初始變性步驟,然后,進(jìn)行40個(gè)循環(huán)(95℃變性30 s,60℃退火10 s)。通過(guò)熔融曲線(xiàn)分析確定擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性。通過(guò)連續(xù)稀釋已知數(shù)量的相應(yīng)基因模板,生成每個(gè)基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。采用2-ΔΔCt法計(jì)算TXNIP mRNA的相對(duì)表達(dá)量。目的基因的擴(kuò)增被歸一化為肌動(dòng)蛋白(β-Actin)表達(dá)。TXNIP引物:正向?yàn)?′-TTG GGT GGC ATG CAA GGT AT-3′;反向?yàn)?′-GCA GTG CAA ACA GAC TTC GG-3′,534 bp;β-Actin引物:正向?yàn)?′-TCC TGC GTC TGG ACC TGG-3′;反向?yàn)?′-TGA TGT CAC GGA CGA TTT CC-3′,114 bp。
1.3.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況 收集NG組、高滲組、HG組、VD3+HG組細(xì)胞各104個(gè),用500 μl結(jié)合緩沖液重懸。加入5 μl的Annexin V-FITC和5 μl的PI在4℃黑暗條件下孵育15 min后,用流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞增殖情況,并計(jì)算Q2和Q3象限細(xì)胞凋亡率之和。
1.3.6 免疫熒光法檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)ROS含量 以2′,7′-二氯二氫熒光素乙酸酯(2′,7′-dichlorofluorescin diacetate,DCFH-DA)熒光探針檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)ROS水平。收集NG組、高滲組、HG組、VD3+HG組、NAC+HG組細(xì)胞爬片,用4%多聚甲醛固定后,滴加10 μmol/L DCFH-DA熒光探針37℃避光培養(yǎng)30 min,用熒光顯微鏡攝取圖像并用Image-pro plus 6.0軟件進(jìn)行量化。
1.3.7 酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)檢測(cè)氧化應(yīng)激及炎癥反應(yīng)相關(guān)指標(biāo) 將NG組、高滲組、HG組、VD3+HG組、NAC+HG組細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,收集上清液,采用蛋白定量試劑盒定量蛋白濃度。采用酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)試劑盒測(cè)定細(xì)胞上清液中SOD活性及MDA、GSH-Px、IL-1β、IL-18含量。
1.3.8 蛋白印跡法檢測(cè)蛋白相對(duì)表達(dá)量 細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,收集細(xì)胞,加入細(xì)胞裂解緩沖液裂解5 min。采用BCA試劑盒檢測(cè)蛋白濃度。在Tris/甘氨酸/SDS緩沖液中,用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白(30~30 mg),并在聚偏二氟乙烯膜上進(jìn)行電印跡。在含5%脫脂牛奶的Tween-20磷酸鹽緩沖鹽水中封閉1~2 h后,用初級(jí)抗體在4℃的溫度下過(guò)夜孵育。隨后將膜與辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標(biāo)記的山羊抗鼠或山羊抗兔IgG次級(jí)抗體孵育1 h,使用ECL蛋白質(zhì)印跡檢測(cè)試劑對(duì)蛋白條帶進(jìn)行顯色,對(duì)蛋白條帶進(jìn)行灰度掃描分析并以β-tubulin為內(nèi)參計(jì)算蛋白的相對(duì)表達(dá)量。主要抗體包括NLRP3(1∶1 000)、ASC(1∶1 500)、pro-caspase-1(1∶2 000)、cleaved caspase-1(1∶2 000)、TXNIP(1∶1 500)。
1.3.9 免疫共沉淀法檢測(cè)TXNIP和NLRP3的相互作用 收集NG組、HG組、VD3+HG組、NAC+HG組蛋白,加入抗TXNIP或NLRP3的抗體,4℃孵育2 h。再加入蛋白A/G磁珠孵育過(guò)夜。10 000 r/min高速離心1 min,棄上清。洗滌后進(jìn)行蛋白印跡法檢測(cè)。
2.1 VD3對(duì)hRECs細(xì)胞存活率的影響 經(jīng)不同濃度(5.0、10.0、20.0、50.0、100.0 mmol·L-1)VD3處理48 h后,NG環(huán)境下hRECs細(xì)胞存活率均>95%,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。HG環(huán)境下,隨著VD3濃度的升高,hRECs細(xì)胞存活率逐漸升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。當(dāng)VD3濃度≥50.0 mmol/L時(shí),HG環(huán)境下hRECs細(xì)胞存活率>80%,但VD3濃度為50.0、100.0 mmol/L時(shí),HG環(huán)境下hRECs細(xì)胞存活率比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表1。因此,選擇50.0 mmol/L濃度的VD3用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
表1 NG環(huán)境、HG環(huán)境下hRECs細(xì)胞經(jīng)不同濃度VD3處理后的存活率
2.2 VD3對(duì)HG誘導(dǎo)hRECs細(xì)胞凋亡的作用 經(jīng)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,HG組hRECs細(xì)胞凋亡率為(38.65%±4.79%)、VD3+HG組hRECs細(xì)胞凋亡率為(17.50%±3.69%),均顯著高于NG組的(2.70%±0.78%)、高滲組的(3.65%±0.84%),但VD3+HG組hRECs細(xì)胞凋亡率顯著低于HG組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖1。
圖1 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)hRECs細(xì)胞凋亡情況(a.NG組;b.高滲組;c.HG組;d.VD3+HG組)
2.3 VD3抑制HG誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞ROS生成 免疫熒光染色法檢測(cè)結(jié)果顯示,與NG組、高滲組比較,HG組細(xì)胞ROS熒光表達(dá)量升高;與HG組比較,VD3+HG組、NAC+HG組細(xì)胞ROS熒光表達(dá)量降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。VD3+HG組與NAC+HG組細(xì)胞ROS熒光表達(dá)量比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)圖2。
圖2 免疫熒光染色法檢測(cè)ROS熒光表達(dá)情況(400倍;a.NG組;b.高滲組;c.HG組;d.VD3+HG組;e.NAC+HG組)
2.4 VD3抑制HG誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞氧化應(yīng)激反應(yīng)及炎癥因子分泌 HG組細(xì)胞培養(yǎng)上清中SOD、GSH-Px含量顯著低于NG組、高滲組,MDA、IL-1β、IL-18含量顯著高于NG組、高滲組;VD3+HG組、NAC+HG組細(xì)胞培養(yǎng)上清中SOD、GSH-Px含量顯著高于HG組, MDA、IL-1β、IL-18含量顯著低于HG組;NAC+HG組細(xì)胞培養(yǎng)上清中GSH-Px含量高于VD3+HG組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。VD3+HG組、NAC+HG組細(xì)胞培養(yǎng)上清中SOD、MDA、IL-1β、IL-18含量比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表2。
表2 hRECs細(xì)胞氧化應(yīng)激因子及炎癥因子水平比較
2.5 VD3抑制HG誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞NLRP3炎癥小體激活 經(jīng)蛋白印跡法檢測(cè),HG組細(xì)胞NLRP3、ASC、pro-caspase-1蛋白表達(dá)量高于NG組、高滲組;VD3+HG組細(xì)胞NLRP3、ASC、pro-caspase-1蛋白表達(dá)量低于HG組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖3。
圖3 蛋白印跡法檢測(cè)NLRP3炎癥小體相關(guān)蛋白表達(dá)量
2.6 TXNIP參與調(diào)節(jié)VD3對(duì)NLRP3炎癥小體激活的抑制 與HG組、HG+NC組比較,HG+siTXNIP組、VD3+HG組細(xì)胞NLRP3、ASC、pro-caspase-1蛋白表達(dá)量降低;與VD3+HG組、VD3+HG+NC組比較,VD3+HG+TXNIP組細(xì)胞NLRP3、ASC、pro-caspase-1蛋白表達(dá)量升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖4。
圖4 蛋白印跡法檢測(cè)TXNIP蛋白與NLRP3炎癥小體相關(guān)蛋白表達(dá)量
2.7 免疫共沉淀法檢測(cè)TXNIP與NLRP3蛋白相互作用 與NG組比較,HG環(huán)境下TXNIP和NLRP3蛋白間相互作用增加,而VD3+HG組則抑制這種相互作用。見(jiàn)圖5。
圖5 免疫共沉淀法檢測(cè)TXNIP與NLRP3蛋白表達(dá)(IB:免疫印跡;IP:免疫共沉淀)
DR是一種糖尿病相關(guān)的并發(fā)癥,其特征是視網(wǎng)膜微血管不可逆轉(zhuǎn)的惡化,導(dǎo)致嚴(yán)重的視網(wǎng)膜損傷和視力下降[7]。目前,DR的治療嚴(yán)重依賴(lài)于控制高血糖。然而,由于代謝記憶效應(yīng),盡管許多糖尿病患者嚴(yán)格控制血糖,仍會(huì)發(fā)展成視網(wǎng)膜病變[8]。因此,需要通過(guò)對(duì)DR的病理和生理機(jī)制深入了解,探索新的治療途徑。VD3除在鈣吸收和骨代謝方面的作用外,還被證明具有自分泌或旁分泌的免疫調(diào)節(jié)作用[9]。王曉紅等[10]研究報(bào)道,VD3缺乏與DR的發(fā)生和進(jìn)展有關(guān),排除年齡、性別等混雜因素的影響后,VD3是2型糖尿病患者視網(wǎng)膜病變的重要保護(hù)因素。本研究通過(guò)建立HG誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞模型證實(shí),VD3對(duì)DR有顯著的保護(hù)作用,可減少HG誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞凋亡;TXNIP/NLRP3通路是由于HG誘導(dǎo)ROS大量產(chǎn)生而被激活,VD3可通過(guò)降低細(xì)胞內(nèi)ROS水平,阻斷TXNIP/NLRP3信號(hào)通路激活,并抑制細(xì)胞炎癥因子IL-1β、IL-18等分泌,對(duì)HG環(huán)境下的hRECs發(fā)揮一定的保護(hù)作用。這可能是VD3減輕視網(wǎng)膜炎癥,保護(hù)視網(wǎng)膜免受高血糖引起的功能障礙的主要分子機(jī)制。
DR是一種涉及視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷和細(xì)胞過(guò)度凋亡的慢性炎癥性疾病[11]。有研究報(bào)道,IL-1β在DR發(fā)展中起重要作用,而IL-1β的分泌是受稱(chēng)為“炎癥體”的蛋白質(zhì)復(fù)合體調(diào)節(jié)[12]。NLRP3炎性小體復(fù)合體包含轉(zhuǎn)錄因子NLRP3、ASC、pro-caspase-1。NLRP3可介導(dǎo)caspase-1的激活,導(dǎo)致pro-IL-1β和pro-IL-18分裂成活性形式[13]。Loukovaara等[14]研究證實(shí),氧化應(yīng)激可上調(diào)NLRP3炎癥小體表達(dá),并參與DR的發(fā)病過(guò)程。Liu等[15]研究證實(shí),過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體α激動(dòng)劑非諾貝特通過(guò)上調(diào)核因子促紅細(xì)胞生成素2相關(guān)因子2信號(hào)通路和下調(diào)NLRP3炎癥小體激活,進(jìn)而改善DR。Trotta等[16]研究證實(shí),3-羥基丁酸通過(guò)激活視網(wǎng)膜羥基羧酸受體2受體減少內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,阻斷NLRP3炎癥小體合成,抑制糖尿病視網(wǎng)膜損傷。上述研究可說(shuō)明NLRP3炎癥體是DR的重要治療靶點(diǎn)。本研究證實(shí),HG環(huán)境下可通過(guò)誘導(dǎo)細(xì)胞產(chǎn)生大量ROS,激活hRECs細(xì)胞NLRP3炎癥小體,促使IL-1β、IL-18等炎癥因子合成泌增加,進(jìn)而導(dǎo)致hRECs細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激損傷和凋亡,而HG環(huán)境誘導(dǎo)NLRP3炎癥小體的激活可被VD3所抑制。
TXNIP最初被認(rèn)為是一種與硫氧還蛋白(thioredoxin,TRX)相互作用,降低其功能,清除ROS的蛋白質(zhì)[17]。有研究報(bào)道,TXNIP在糖尿病和其他氧化應(yīng)激患者中,通過(guò)激活NLRP3炎癥小體和釋放IL-1β促進(jìn)機(jī)體的固有免疫應(yīng)答[18]。本研究證實(shí),HG會(huì)誘導(dǎo)hRECs細(xì)胞產(chǎn)生大量ROS,這是糖尿病微血管病變的多種典型分子機(jī)制途徑中的共同上游事件。通過(guò)上調(diào)ROS敏感TXNIP蛋白表達(dá),激活NLRP3炎癥小體,導(dǎo)致hRECs細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激損傷,并生成IL-1β、IL-18等炎癥因子,促使細(xì)胞凋亡。而VD3可通過(guò)降解HG誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞ROS合成,抑制TXNIP/NLRP3通路活化。
綜上所述,VD3對(duì)于HG作用下視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷具有一定的保護(hù)作用,并抑制hRECs細(xì)胞凋亡。其作用機(jī)制是由于VD3可抑制高糖誘導(dǎo)的hRECs細(xì)胞中ROS產(chǎn)生,進(jìn)而抑制TXNIP/NLRP3炎癥通路激活。VD3在DR的治療方面有較大潛力,但需要大樣本臨床研究以及更深入的分子機(jī)制研究以證實(shí)VD3的臨床效果。
創(chuàng)傷與急危重病醫(yī)學(xué)2021年5期