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        5-Aza-dC對牛成肌細(xì)胞MyoD1啟動子甲基化及mRNA表達(dá)的影響

        2021-09-27 09:03:22田念念宋林錦許厚強(qiáng)
        畜牧獸醫(yī)學(xué)報 2021年9期
        關(guān)鍵詞:檢測

        李 雄,田念念,宋林錦,陳 晨,許厚強(qiáng)*

        (1.貴州大學(xué) 高原山地動物遺傳育種與繁殖教育部重點實驗室/貴州省動物遺傳育種與繁殖重點實驗室,貴陽 550025;2.貴州大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院,貴陽 550025)

        表觀遺傳調(diào)控多發(fā)生在相互作用水平上,在該水平上的研究可深入了解表觀遺傳學(xué)對生物學(xué)過程的促進(jìn)作用。大量研究表明,表觀遺傳學(xué)是指基因的核苷酸序列不發(fā)生改變,而基因功能發(fā)生穩(wěn)定的、可遺傳的變化,主要包括非編碼RNA調(diào)控[1]、DNA甲基化[2]、染色質(zhì)重塑[3]、組蛋白修飾[4]等。DNA甲基化(DNA methylation)是指在DNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的作用下,活性甲基化合物(如S-腺苷基甲硫氨酸)將甲基催化轉(zhuǎn)移到基因組CpG二核苷酸的胞嘧啶5’碳位共價鍵結(jié)合一個甲基基團(tuán),導(dǎo)致染色體結(jié)構(gòu)、DNA構(gòu)象、DNA穩(wěn)定性等發(fā)生變化,從而控制基因表達(dá)[5]。對DNA甲基化研究主要集中于主動甲基化和去甲基化方面,DNA高甲基化能夠減弱或者沉默基因的表達(dá),而去甲基化時則能使基因活化或重新表達(dá)[6]。5-Aza-dC是目前用得較多的去甲基化方法之一,其對研究DNA甲基化對表觀遺傳的影響及特異性基因的表達(dá)和調(diào)控機(jī)理有著重要的作用。5-Aza-dC是一種胞唾陡類似物,常用名為地西他濱甲基化酶抑制劑,是目前已知的較為有效的一種去甲基化制劑[7]。5-Aza-dC大多應(yīng)用于醫(yī)學(xué)方面,如Greville等[8]發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC處理后,從化療敏感/非轉(zhuǎn)移細(xì)胞系中分泌的n-聚糖的分支和唾液化增加。這些變化與卵巢癌細(xì)胞系中MGAT5和ST3GAL4轉(zhuǎn)錄本mRNA表達(dá)水平升高有關(guān)。Xie等[9]研究發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC能有效抑制DNMTs的表達(dá)和活性,逆轉(zhuǎn)MnSOD和GSTT1的表達(dá)。所以,通過藥物、試劑等對相關(guān)基因去甲基化探究其表達(dá)影響,也是從側(cè)面研究甲基化機(jī)制的一種方法。

        近年來,大量研究表明,DNA甲基化所引起的表觀遺傳對于動物的生長發(fā)育有重要影響,并篩選與生長相關(guān)的甲基化位點作為分子標(biāo)記[10]。肌肉組織是動物機(jī)體的重要組成部分,而DNA甲基化也能調(diào)控肌肉的發(fā)育過程[11]。Li等[12]研究了3個品種豬不同部位骨骼肌,發(fā)現(xiàn)品種間、性別間存在DNA甲基化的相似性和特異性,并鑒定了差異甲基化區(qū)域。李秀金等[13]通過對五指山和長白豬DNA甲基化和轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的聯(lián)合分析證實,DNA去甲基化酶Tet1在豬胚胎成肌細(xì)胞和C2C12細(xì)胞中通過Myogenin啟動子去甲基化,上調(diào)Myogenin表達(dá),從而促進(jìn)成肌細(xì)胞的分化。萬火福等[14]用比色法測定不同品種肌肉組織DNA甲基化水平,發(fā)現(xiàn)DNA甲基化水平在不同品種及不同組織中會呈現(xiàn)一種動態(tài)變化,且高水平的DNA甲基化可能促進(jìn)霞煙雞腿肌組織的發(fā)育。綜上表明,不同畜禽肌肉發(fā)育過程中的甲基化模式具有一定特異性,不同家畜中甲基化狀態(tài)會產(chǎn)生特定變化,這種甲基化狀態(tài)變化能夠通過調(diào)控不同階段相關(guān)基因的表達(dá),從而保證肌肉發(fā)育正常進(jìn)行。

        動物肌肉發(fā)育是一個極其復(fù)雜的過程,動物體內(nèi)相關(guān)基因的甲基化狀態(tài)也呈現(xiàn)出動態(tài)變化趨勢[15]。肌分化因子(myogenic differentiation 1,MyoD1)是一種骨骼肌特異性轉(zhuǎn)錄因子,能夠識別、啟動骨骼肌特異基因的轉(zhuǎn)錄,具有誘導(dǎo)成纖維細(xì)胞和其他非骨骼肌細(xì)胞分化為骨骼肌細(xì)胞的能力[16]。近年來,MyoD1甲基化在豬[17]、羊[18]、雞[19]等家畜上主要通過對肌肉進(jìn)行全基因組甲基化檢測其甲基化水平;沈蘭等[20]發(fā)現(xiàn),MyoD1的甲基化譜可能有助于預(yù)測接受標(biāo)準(zhǔn)化學(xué)放射治療的浸潤性宮頸癌患者的反應(yīng)。目前,MyoD1甲基化對牛骨骼肌細(xì)胞發(fā)育影響的研究報道較少。本試驗以關(guān)嶺牛為研究對象,利用甲基化酶抑制劑(5-Aza-dC)處理牛成肌細(xì)胞,研究MyoD1啟動子區(qū)甲基化水平及其對成肌細(xì)胞生長發(fā)育和增殖的影響,為關(guān)嶺牛的改良提供理論參考。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料

        牛成肌細(xì)胞來源于貴州大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院動物種質(zhì)資源庫。

        1.2 主要試劑

        DMEM/F12培養(yǎng)基、胎牛血清、TRIzol 試劑購于Gibco公司;5-Aza-dC(5-氮雜-2′-脫氧胞苷)、細(xì)胞凋亡檢測試劑盒、細(xì)胞周期試劑盒均購自美國Sigma公司;2×Es Taq Master Mix、DM 2000 Marker、丙三醇、無水乙醇、DEPC 水購自康為世紀(jì)生物科技有限公司;SYBR-Green染料(SYBR Green PCR Master Mix)購自Bio-Rad公司;二甲基亞砜購于Hyclone 公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和CCK8試劑盒購自MCE公司;一抗(Desmin)購自鼎國生物技術(shù)有限責(zé)任公司;二抗購自Jackson immuno research。

        1.3 試驗方法

        1.3.1 細(xì)胞復(fù)蘇及鑒定 取出凍存的細(xì)胞,復(fù)蘇后轉(zhuǎn)入含15%胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基中。置于CO2培養(yǎng)箱(培養(yǎng)條件5% CO2、飽和濕度、37 ℃)中繼續(xù)培養(yǎng),讓其長到對數(shù)生長期。將培養(yǎng)的細(xì)胞接種于6孔細(xì)胞培養(yǎng)板上,待其生長至85%左右,進(jìn)行細(xì)胞鑒定;試驗參考間接免疫熒光(indirect immunofluorescence,IIF)的方法執(zhí)行。

        1.3.2 CCK8檢測不同濃度5-Aza-dC對成肌細(xì)胞增殖凋亡的影響 細(xì)胞復(fù)蘇后,當(dāng)細(xì)胞長到85%以上進(jìn)行分瓶,當(dāng)關(guān)嶺牛成肌細(xì)胞處于對數(shù)生長期時,用0.25%胰蛋白酶消化約4 min,并進(jìn)行計數(shù),以每孔5×103個接種于96孔板內(nèi)(每孔加入100 μL)。置于CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)12 h;12 h后加入添加了不同濃度5-Aza-dC的培養(yǎng)基,濃度分別為0.05、0.1、0.2、0.3 μmol·L-1以及空白組(0 μmol·L-1),每組設(shè)3個 重復(fù),分別處理0、24和48 h。在每個孔內(nèi)加入10 μL CKK-8試劑,酶標(biāo)儀(450 nm)檢測吸光密度(OD);確定在本實驗室條件下對細(xì)胞生長影響最小的5-Aza-dC最適濃度,并以此濃度進(jìn)行后續(xù)試驗。

        1.4 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡

        將對數(shù)生長期細(xì)胞接種于6孔板內(nèi),標(biāo)記處理組和空白組置于CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)12 h,用含有5-Aza-dC的DMEM/F12(“1.3.2”獲得5-Aza-dC最適濃度)培養(yǎng)基換液,培養(yǎng)48 h,用3 mL PBS溶液輕輕潤洗培養(yǎng)板內(nèi)細(xì)胞;加入1 mL 0.25%不含EDTA 的胰酶消化;將細(xì)胞輕輕重懸于所保留的培養(yǎng)基中,密度大約為1×106個·mL-1,1 000 r·min-1離心6 min,棄去上清液,PBS洗滌2次,加入冰預(yù)冷的70%的乙醇固定,4 ℃,3 h;離心棄去固定液,3.5 mL PBS重懸5 min;將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到干凈的離心管內(nèi),加入2 μL PI,5 μL Annexin V-FITC,室溫避光反應(yīng)15 min;室溫1 000 r·min-1離心5 min,去除上清;將細(xì)胞用0.5 mL Propidium Iodide預(yù)冷緩沖液,用流式細(xì)胞儀檢測分析。

        1.5 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞周期

        5-Aza-dC處理細(xì)胞48 h后,用預(yù)冷PBS洗2次,加入1 mL 0.25%不含EDTA的胰酶消化,1 300 r·min-1離心6 min,獲取細(xì)胞沉淀,棄上清,重懸細(xì)胞,迅速打入3.5 mL 70%預(yù)冷的乙醇中,吹打均勻,4 ℃儲存過夜;離心乙醇固定過的細(xì)胞,棄上清;洗滌細(xì)胞3次以去除殘留的乙醇;加入100 μL RNase A重懸細(xì)胞,37 ℃水浴30 min,加入500 μL PI染色液,4 ℃避光反應(yīng)30 min;應(yīng)用流式細(xì)胞儀檢測。

        1.6 qRT-PCR檢測MyoD1、DNMT1及相關(guān)基因mRNA表達(dá)

        1.6.1 RNA提取及第一條cDNA的合成 5-Aza-dC處理細(xì)胞48 h后,處理組和空白組的細(xì)胞用Trizol提取總RNA。將RNA定量至2 ng,根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行反應(yīng)合成cDNA,反應(yīng)產(chǎn)物置于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.6.2 引物的設(shè)計與合成 根據(jù)NCBI公布的牛MyoD1(NM_001040478.2)、DNMT1(NM_182651.2)、Caspase-9(NM_001205504.2)、Bax(NM_173894.1)、Bcl(CX950904.1)、CyclinA2(NM_001075123.1)、CyclinB1(BC116011.1)、CyclinD(XM_024991034.1)以及內(nèi)參基因GAPDH(NM_001034034.2)。利用Primer Premier 5.0軟件進(jìn)行定量引物設(shè)計,最后由重慶擎科生物有限公司合成,引物序列見表1。

        表1 引物序列信息

        1.6.3 qRT-PCR 檢測MyoD1、DNMT1及相關(guān)基因表達(dá) 以處理組和空白組cDNA為模板分別擴(kuò)增MyoD1以及相關(guān)基因,采用SYBR Green 熒光染料法在實時熒光定量PCR儀上進(jìn)行定量反應(yīng)。根據(jù)伯樂公司Bio-rad iTaq Univer SYBR(1725121)熒光定量qPCR mix試劑盒制作上機(jī) PCR 混池,混池體系為10 μL:ULtraSYBR Mixture(High ROX)5 μL,上、下游引物各1 μL,cDNA 模板0.7 μL,ddH2O 2.3 μL。反應(yīng)條件:95 ℃ 1 min;95 ℃ 10 s;58 ℃ 30 s,40 個循環(huán)后,進(jìn)行熔解曲線分析;以每5 s 上升0.5 ℃的速率從65 ℃升高到95 ℃,熒光信號在循環(huán)結(jié)束時檢測,每個樣品做3 個生物學(xué)重復(fù)。

        1.7 高通量檢測MyoD1啟動子區(qū)甲基化

        依據(jù)原始提供的牛MyoD1啟動子區(qū)區(qū)域進(jìn)行引物設(shè)計(表2),選取檢測位置區(qū)域(NC_037342.1)將樣品送往重慶擎科生物科技有限公司進(jìn)行高通量測序。

        表2 甲基化測序引物序列

        1.8 統(tǒng)計分析

        運用Excel 2010軟件對各組織中目的基因和內(nèi)參基因mRNA表達(dá)量進(jìn)行處理,運用2-ΔΔCt法計算。采用獨立樣本t檢驗和單因素方差分析進(jìn)行數(shù)據(jù)處理(SPSS 21.0),多重比較采用Duncan’s多重極差檢驗法,運用Graphpad6 作圖,P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。

        2 結(jié) 果

        2.1 間接免疫熒光細(xì)胞鑒定

        如圖1所示,Desmin抗體發(fā)生特異性結(jié)合,呈陽性反應(yīng)顯紅色,細(xì)胞核在DAPI的染色下呈藍(lán)色,Merge后能完全重合,表明培養(yǎng)的細(xì)胞為成肌細(xì)胞。

        A.DAPI核染;B.Desmin染色;C.合圖Merge;D.DAPI核染對照;E.不加Desmin一抗對照染色

        2.2 CCK8檢測不同濃度5-Aza-dC對成肌細(xì)胞增殖的影響

        本試驗在成肌細(xì)胞中添加不同濃度的甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC后,用CCK8檢測0、24、48 h成肌細(xì)胞增殖情況。表3可以看出,與對照組相比,成肌細(xì)胞中添加0.05或0.1 μmol·L-15-Aza-dC時細(xì)胞存活率呈上升趨勢,但是隨著濃度增加細(xì)胞存活率逐漸下降,其中0.3 μmol·L-15-Aza-dC濃度下細(xì)胞存活率極顯著下降(P<0.01);處理24 h后,0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理細(xì)胞的存活率呈顯著上升(P<0.05),在0.1 μmol·L-1存活率最高。處理48 h后,細(xì)胞存活趨勢與24 h相同,但是同24 h相比提高不明顯。表明0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理組適合用于后續(xù)試驗。

        表3 不同濃度5-Aza-dC對細(xì)胞存活率的影響

        2.3 流式細(xì)胞儀檢測成肌細(xì)胞凋亡

        從圖2可知,0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理的細(xì)胞凋亡率較空白組極顯著增加(P<0.01)。為進(jìn)一步檢測甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC是否與Bcl、Bax、Caspase-9等細(xì)胞凋亡因子有關(guān),通過qRT-PCR檢測,0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理的細(xì)胞能夠極顯著的降低細(xì)胞抗凋亡因子Bcl的表達(dá)(P<0.01),極顯著的提高促凋亡因子Bax表達(dá)(P<0.01),顯著提高促凋亡因子Caspase-9的表達(dá)(P<0.05)。

        A.空白組細(xì)胞凋亡;B.試驗組細(xì)胞凋亡;C.細(xì)胞凋亡率;D.細(xì)胞凋亡因子mRNA的表達(dá)。Q1.機(jī)械性損傷細(xì)胞;Q2.晚期凋亡細(xì)胞;Q3.正常細(xì)胞;Q4.早期凋亡細(xì)胞

        2.4 流式細(xì)胞儀檢測成肌細(xì)胞周期

        通過流式細(xì)胞儀檢測0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理的細(xì)胞及空白組細(xì)胞,結(jié)果顯示(圖3),0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理組G0/G1期細(xì)胞比例較高于空白組,但差異不顯著(P>0.05),S期及G2/M期細(xì)胞低于空白組,差異也不顯著(P>0.05)。為進(jìn)一步檢測甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC對細(xì)胞周期相關(guān)因子CyclinB1、CyclinA2、CyclinD 表達(dá)的影響,通過qRT-PCR檢測相關(guān)細(xì)胞因子的表達(dá),發(fā)現(xiàn)5-Aza-dC顯著的提高了周期因子CyclinA2的表達(dá)(P<0.05),對細(xì)胞因子CyclinB1、CyclinD的表達(dá)影響不顯著(P>0.05)。

        A.空白組細(xì)胞周期;B.試驗組細(xì)胞周期;C.細(xì)胞周期不同時期比例;D 細(xì)胞周期因子mRNA的表達(dá)

        2.5 qRT-PCR 檢測MyoD1、DNMT1 mRNA相對表達(dá)量

        2.5.1 PCR擴(kuò)增結(jié)果 由圖4可知,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物條帶清晰,沒有拖帶和二聚體,片段大小符合試驗預(yù)期。

        A.關(guān)嶺牛MyoD1基因熒光引物電泳圖;B.關(guān)嶺牛DNMT1基因熒光引物電泳圖。M.DNA相對分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)

        2.5.2 Real-time PCR 檢測結(jié)果擴(kuò)增曲線和峰圖 由圖5、圖6、圖7可知設(shè)計的引物通過實時熒光定量PCR檢測,擴(kuò)增曲線拐點清晰,熔解曲線均為單峰,無雜峰,引物特異性好。

        A.MyoD1擴(kuò)增曲線;B.MyoD1熔解峰

        A.DNMT1擴(kuò)增曲線;B.DNMT1熔解峰

        A.GAPDH擴(kuò)增曲線;B.GAPDH熔解峰

        2.5.3MyoD1、DNMT1基因表達(dá)分析 由圖8可知,空白組中MyoD1的mMRNA的表達(dá)量極顯著低于試驗組的表達(dá)量(P<0.01),DNMT1的表達(dá)量也極顯著低于試驗組(P<0.01)。

        A.MyoD1相對表達(dá)量;B.DNMT1相對表達(dá)量

        2.6 MyoD1啟動子區(qū)甲基化檢測

        由表4可知,處理48 h后,空白組的MyoD1啟動子區(qū)CpG甲基化率為28.0%,CHG甲基化率為2.0%,CHH甲基化率為1.9%,試驗組的MyoD1啟動子區(qū)CpG甲基化率為19.8%,CHG甲基化率為1.3%,CHH甲基化率為1.8%。并且0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理的試驗組極顯著的降低了MyoD1啟動子區(qū)的甲基化率(P<0.01,圖9)。

        表4 5mC 位點覆蓋統(tǒng)計

        圖9 MyoD1基因啟動子甲基化率

        3 討 論

        DNA甲基化作為一種相對穩(wěn)定的修飾狀態(tài),在DNA甲基轉(zhuǎn)移酶的作用下,可隨DNA的復(fù)制過程遺傳給新生的子代DNA,是一種重要的表觀遺傳機(jī)制[21]。DNA甲基化通過DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNA methylthansferase,DNMT)來實現(xiàn),并分為2類,即維持DNA甲基化轉(zhuǎn)移酶(DNMT1)和從頭甲基化酶[22-24]。隨著對DNA甲基化的繼續(xù)深入研究,發(fā)現(xiàn)一些可以抑制甲基化酶的藥物,甲基化酶抑制劑是一種嘧啶核苷類似物,可以致使多種抑癌基因重新激活恢復(fù)功能,重新發(fā)揮抗腫瘤的作用,以及誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,抑制腫瘤細(xì)胞的生長,因而有其廣闊的臨床應(yīng)用前景,應(yīng)用較廣泛的是甲基化抑制劑5-氮雜-2甲基脫氧胞苷(5-Aza-dC)。利用藥物手段調(diào)節(jié)DNA甲基化水平可以幫助了解基因甲基化對其的影響。

        細(xì)胞凋亡是細(xì)胞的一種基本生物學(xué)現(xiàn)象,在多細(xì)胞生物去除冗余或異常細(xì)胞中起著必要的作用,在生物體進(jìn)化、內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定以及多個系統(tǒng)發(fā)育中起著重要作用[25-27]。Kiianitsa等[28]發(fā)現(xiàn),PARP1在5-Aza-dC處理的人成纖維細(xì)胞中形成共價DNA加合物并可以誘導(dǎo)凋亡,阻斷DNA復(fù)制。Shire等[29]發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC恢復(fù)了SULF1陰性細(xì)胞系中SULF1 mRNA的表達(dá),與此相關(guān)的是硫酸酯酶活性的增加和促進(jìn)肝癌細(xì)胞凋亡。李瑾[30]研究發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC通過影響DNA甲基化水平,引起細(xì)胞周期阻滯,使細(xì)胞發(fā)生凋亡從而具有抗腫瘤作用。

        吳元等[31]用5-Aza-dc處理T24細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn),Bcl2蛋白表達(dá)降低,Bax、Cleaved Caspase-3表達(dá)上升,但不顯著。Kiianitsa等[32]發(fā)現(xiàn),在5-Aza-dC處理的人成纖維細(xì)胞中PARP1形成共價的DNA加合物并誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。而本試驗在牛成肌細(xì)胞中添加不同濃度的甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC后,用CCK8檢測0、24、48 h細(xì)胞增殖情況。結(jié)果顯示,0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理組是本試驗組中最適濃度并用于后續(xù)試驗,通過流式細(xì)胞儀對細(xì)胞凋亡和細(xì)胞周期進(jìn)行檢測,發(fā)現(xiàn)0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理組能夠極顯著促進(jìn)成肌細(xì)胞凋亡(P<0.01);對細(xì)胞凋亡因子檢測表明,該濃度極顯著地降低細(xì)胞抗凋亡因子Bcl的表達(dá)(P<0.01),極顯著地提高了促凋亡因子Bax表達(dá)(P<0.01),顯著提高了促凋亡因子Caspase-9的表達(dá)(P<0.05);這表明5-Aza-dC能夠極顯著促進(jìn)關(guān)嶺牛成肌細(xì)胞的凋亡。同時對細(xì)胞周期的檢測發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC對細(xì)胞周期的影響差異不顯著(P>0.05),為進(jìn)一步驗證5-Aza-dC對細(xì)胞周期的影響,通過qRT-PCR發(fā)現(xiàn),周期因子CyclinA2表達(dá)顯著提高(P<0.05),而細(xì)胞因子CyclinB1、CyclinD表達(dá)未發(fā)生顯著變化(P>0.05)。李鳳珍[33]研究發(fā)現(xiàn),低濃度范圍的5-Aza-dC(0.005 μmol·L-1)不會顯著的影響細(xì)胞周期。李瑾[30]研究發(fā)現(xiàn),10 μmol·L-1的5-Aza-dC處理人肺癌細(xì)胞A549 48 h后,人肺癌細(xì)胞A549細(xì)胞周期阻滯于G2/M期,且細(xì)胞內(nèi)的活性氧水平顯著升高(P<0.05)。本試驗發(fā)現(xiàn),使用0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理后,周期因子CyclinA2的表達(dá)顯著提高(P<0.05),推測可能是由于5-Aza-dC濃度偏高。細(xì)胞凋亡和細(xì)胞周期都是維持體內(nèi)細(xì)胞數(shù)量動態(tài)平衡的基本措施以及維持胚胎正常發(fā)育、機(jī)體健康的基本生物學(xué)現(xiàn)象[34-37]。本研究發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC能夠促進(jìn)細(xì)胞凋亡,但是對于細(xì)胞周期影響不明顯,對于5-Aza-dC的最適濃度和時間還要進(jìn)一步驗證。

        MyoD1基因在調(diào)節(jié)肌肉細(xì)胞的生長、代謝及促進(jìn)肌肉細(xì)胞的增殖、分化等功能上均具有的重要作用[38]。Megiorni等[39]發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC處理后的DNA去甲基化能夠上調(diào)miR-378a-3p水平,提高M(jìn)yHC基因表達(dá)量。MyoD1同是重要的肌肉發(fā)育基因,通過0.1 μmol·L-15-Aza-dC處理細(xì)胞后發(fā)現(xiàn),試驗組極顯著的降低MyoD1啟動子區(qū)的甲基化率(P<0.01)。而空白組中MyoD1的mRNA的表達(dá)量極顯著低于試驗組(P<0.01),同時也發(fā)現(xiàn),DNMT1的表達(dá)量極顯著低于試驗組(P<0.01)??赡苡捎?-Aza-dC的作用主要是在 DNA復(fù)制過程中能夠與甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMTs)結(jié)合形成共價復(fù)合物而達(dá)到去甲基化,能夠明顯抑制該酶的甲基轉(zhuǎn)移活性但是并不影響DNMTs表達(dá)。本研究結(jié)果提示,5-Aza-dC通過調(diào)節(jié)Caspase-9、Bcl、Bax和CyclinA2 mRNA表達(dá)水平影響牛成肌細(xì)胞的增殖和凋亡,并且低濃度水平5-Aza-dC(0.1 μmol·L-1)極顯著降低了MyoD1啟動子區(qū)甲基化水平。

        4 結(jié) 論

        本研究發(fā)現(xiàn),5-Aza-dC能夠通過改變Caspase-9、Bcl、Bax、CyclinA2等基因的表達(dá)來調(diào)節(jié)關(guān)嶺牛成肌細(xì)胞的增殖、凋亡。檢測發(fā)現(xiàn),0.1 μmol·L-15-Aza-dC能極顯著降低MyoD1基因啟動子區(qū)甲基化水平(P<0.01),極顯著提高其mRNA的表達(dá)量(P<0.01)。因此,低濃度水平5-Aza-dC(0.1 μmol·L-1)能有效降低成肌細(xì)胞中MyoD1啟動子區(qū)甲基化水平進(jìn)而提高M(jìn)yoD1 mRNA的表達(dá)量。所以,低濃度的5-Aza-dC能通過促進(jìn)細(xì)胞凋亡及調(diào)控關(guān)嶺牛MyoD1的甲基化水平來調(diào)控MyoD1的表達(dá);同時,MyoD1啟動子甲基化可作為遺傳標(biāo)記,為后續(xù)關(guān)嶺牛的品種改良提供理論依據(jù)。

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