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        高通量生物信息學(xué)分析對(duì)經(jīng)皮冠狀動(dòng)脈介入術(shù)后支架內(nèi)再狹窄過程核心發(fā)病基因以及通路的預(yù)測①

        2021-09-25 03:19:38王維鐵
        中國免疫學(xué)雜志 2021年16期
        關(guān)鍵詞:溶酶體差異基因信息學(xué)

        蔡 睿 王維鐵

        (吉林大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,長春130021)

        2017年中國疾病負(fù)擔(dān)研究報(bào)告顯示缺血性心臟病是我國排名第二位的導(dǎo)致人群壽命損失的疾病,死亡率大約為123.9/10萬,占總死亡人數(shù)的16.7%[1]。目前經(jīng)皮冠狀動(dòng)脈介入(percutaneous coronary intervention,PCI)是治療缺血性心臟病的一種主要手段,但是PCI術(shù)后支架內(nèi)再狹窄(instent restenosis,ISR)成為了影響遠(yuǎn)期生存率的一種主要并發(fā)癥[2]。有研究指出,新生內(nèi)膜增生是ISR發(fā)生的主要病理改變[3],但針對(duì)支架內(nèi)新生內(nèi)膜增生治療并未達(dá)到預(yù)期的效果[4]。因此ISR分子發(fā)病機(jī)制及基因靶向治療需要繼續(xù)探索。本研究通過基因測序及高通量生物信息學(xué)分析的方法對(duì)PCI術(shù)后ISR的機(jī)制進(jìn)行研究,以期尋找到ISR發(fā)病的核心基因及分子通路,為后續(xù)的血清學(xué)診療標(biāo)志物及藥物治療靶點(diǎn)提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 基因測序?qū)ο笈c分組 GEO數(shù)據(jù)庫搜索與PCI術(shù)后ISR相關(guān)的基因測序結(jié)果,選取GSE46560為研究對(duì)象(11例印度人樣本)。其中6例PCI術(shù)后ISR患者作為研究組,5例PCI術(shù)后支架內(nèi)未狹窄的患者作為對(duì)照組。其中研究組男性5例,女性1例,平均年齡為(60.33±16.10)歲。對(duì)照組男性4例,女性1例,平均年齡為(60.40±10.53)歲。Trizol法提取全部患者空腹外周血RNA,然后檢測RNA的質(zhì)量和純度,其中純度的檢測標(biāo)準(zhǔn)為1.8≤260/280≤2.1。將符合標(biāo)準(zhǔn)的RNA進(jìn)行基因測序,測序結(jié)果詳見GEO數(shù) 據(jù) 庫(GSE46560,https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE46560)。

        1.2 高通量生物信息分析方法 對(duì)基因測序的原始數(shù)據(jù)采用R語言及l(fā)imma數(shù)據(jù)包進(jìn)行均一化校準(zhǔn),刪除差異表達(dá)量過大或者過小的基因。其后應(yīng)用GEO2R計(jì)算模塊篩選差異基因。對(duì)篩選的差異基因應(yīng)用GraphPad Prism 7繪制火山圖進(jìn)行可視化處理,其后應(yīng)用基因熱圖在TBtools軟件進(jìn)行聚類分析。將全部差異基因應(yīng)用DAVID在線軟件進(jìn)行基因符號(hào)轉(zhuǎn)換及KEGG信號(hào)通路的預(yù)測。全部差異表達(dá)基因符號(hào)輸入蛋白互作網(wǎng)絡(luò)(PPI)在線分析軟件,進(jìn)行基因互作關(guān)系預(yù)測,并將預(yù)測結(jié)果輸入Cyto‐scape軟件進(jìn)行可視化處理。對(duì)全部差異基因間的互作關(guān)系進(jìn)一步生物信息學(xué)分析,應(yīng)用cytohubba軟件(Cytoscape內(nèi)置應(yīng)用)預(yù)測核心發(fā)病基因,對(duì)排名前10位的發(fā)病基因再次進(jìn)行聚類分析,根據(jù)Degree評(píng)分篩選出分?jǐn)?shù)最高的基因。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 所有原始數(shù)據(jù)用R語言軟件進(jìn)行分析。差異基因篩選標(biāo)準(zhǔn)位差異倍數(shù)≥2以及P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。KEGG信號(hào)通路富集基因最少為2且P<0.05。PPI篩選標(biāo)準(zhǔn)為基因間聯(lián)系>0.4。

        2 結(jié)果

        2.1 基因測序原始數(shù)據(jù)矯正 對(duì)總共49395個(gè)編碼基因進(jìn)行檢測,原始數(shù)據(jù)結(jié)果均一性較差(圖1A)。隨后應(yīng)用R語言及l(fā)imma包進(jìn)行數(shù)據(jù)均一化處理,篩除離散度較大的數(shù)據(jù),校準(zhǔn)后的數(shù)據(jù)均一性較好(圖1B)。

        圖1 基因芯片原始數(shù)據(jù)分析Fig.1 Analysis of microarray raw data

        2.2 GEO2R篩選均一化處理后的數(shù)據(jù) 其中差異上調(diào)表達(dá)的基因96個(gè),差異下調(diào)表達(dá)的基因184個(gè),對(duì)全部基因進(jìn)行可視化后的火山圖見圖2A。將差異表達(dá)的基因進(jìn)行聚類分析,結(jié)果顯示差異基因數(shù)據(jù)源間具有相似性(圖2B)。

        圖2 差異基因聚類分析Fig.2 Cluster analysis of differential genes

        2.3 差異表達(dá)基因信號(hào)通路分析 為了方便差異基因的生物信息學(xué)分析,使用DAVID在線數(shù)據(jù)庫將全部差異基因成功轉(zhuǎn)換為基因符號(hào)。將280個(gè)差異表達(dá)的基因符號(hào)進(jìn)行KEGG信號(hào)通路聚類分析,發(fā)現(xiàn)hsa04142:溶酶體為富集程度最高的信號(hào)通路(圖2C、表1)。

        表1 KEGG信號(hào)通路聚類分析(±s,n=280)Tab.1 Clustering analysis of KEGG signaling pathway(±s,n=280)

        表1 KEGG信號(hào)通路聚類分析(±s,n=280)Tab.1 Clustering analysis of KEGG signaling pathway(±s,n=280)

        Term hsa04142:Lysosome hsa05152:Tuberculosis hsa04145:Phagosome hsa04380:Osteoclast differentiation hsa05322:Systemic lupus erythematosus hsa04650:Natural killer cell mediated cytotoxicity Count 9109887%0.0230.0250.0230.0200.0200.018P value 0.00360.01120.01260.01900.02100.0410 Genes LAMP2,CLTA,CTSZ,LAPTM4A,AP1G1,CTSC,ATP6V0D1,ATP6V0B,AP3B1 BID,LAMP2,IL10RB,TLR1,PPP3R1,HLA-DPB1,F(xiàn)CGR3A,ATP6V0D1,F(xiàn)CGR3B,ATP6V0B LAMP2,NCF2,TUBB2A,ATP6V1B2,HLA-DPB1,F(xiàn)CGR3A,ATP6V0D1,F(xiàn)CGR3B,ATP6V0B IL1R1,LILRA2,NCF2,LILRA5,PPP3R1,F(xiàn)CGR3A,SIRPA,F(xiàn)CGR3B HLA-DPB1,F(xiàn)CGR3A,HIST1H3F,F(xiàn)CGR3B,HIST1H3G,H2AFB3,H2AFB2,H2AFB1 BID,CD48,TNFRSF10B,PPP3R1,PAK1,F(xiàn)CGR3A,F(xiàn)CGR3B

        2.4 核心發(fā)病基因預(yù)測 將280個(gè)差異表達(dá)的基因輸入STRING在線軟件進(jìn)行PPI互作網(wǎng)絡(luò)分析,結(jié)果顯示共有262個(gè)基因之間具有相互聯(lián)系,聯(lián)系線為344條,平 均 評(píng) 分 為2.63,PPI富 集P值 為9.84e?05。將PPI互作關(guān)系信息應(yīng)用Cytoscape進(jìn)行可視化處理。進(jìn)一步計(jì)算全部PPI信息數(shù)據(jù)后,cy‐tohubba顯示排名前10為的發(fā)病基因?yàn)镠CK(14分)、STAT5A(11分)、CAT(11分)、CXCR1(10分)、ARRB2(10分)、CD300A(10分)、MCM2(9分)、OPRL1(9分)、TLR1(9分)、PINK1(8分),見圖3A。對(duì)10個(gè)發(fā)病基因進(jìn)行聚類分析后顯示差異基因數(shù)據(jù)源間具有相似性(圖3B)。綜上分析,HCK為PCI術(shù)后ISR發(fā)病核心基因。

        圖3 核心發(fā)病基因預(yù)測Fig.3 Prediction of hub genes

        3 討論

        PCI已經(jīng)成為治療缺血性心臟病的一種主要手段[2]。臨床實(shí)踐證明藥物洗脫支架(DES)能夠明顯減少裸金屬支架的ISR發(fā)生率[5],因此DES被迅速和廣泛地應(yīng)用于PCI治療。然而DES晚期ISR仍然是一個(gè)嚴(yán)重的問題,其發(fā)生率約為3%~20%[6]。ISR的發(fā)生與支架類型、位置、患者合并癥及病變復(fù)雜性(即病變長度、血管大小和分叉病變)等均相關(guān)[7]。其主要由侵襲性內(nèi)膜增生和新動(dòng)脈粥樣硬化形成引起[3]。有研究針對(duì)內(nèi)膜增生進(jìn)行干預(yù),但結(jié)果不令人滿意。因此對(duì)于ISR形成的分子機(jī)制及相關(guān)信號(hào)通路仍需進(jìn)一步探索。

        二代測序的迅猛發(fā)展使得基因測序變得廉價(jià)、便捷,但二代測序過程中也會(huì)產(chǎn)生許多離散度較大的數(shù)據(jù),如何能夠識(shí)別無用的數(shù)據(jù),迅速鎖定核心發(fā)病基因是目前測序后研究的重點(diǎn)[8-9]。而生物信息學(xué)通過計(jì)算機(jī)軟件分析及計(jì)算可以實(shí)現(xiàn)大數(shù)據(jù)矯正及核心發(fā)病基因、核心發(fā)病通路的鎖定。本研究通過對(duì)ISR患者及PCI術(shù)后支架內(nèi)未狹窄的患者進(jìn)行基因測序發(fā)現(xiàn),原始數(shù)據(jù)離散度較大。分析原因可能與入組患者年齡偏大,機(jī)體各臟器衰老有關(guān),因此會(huì)出現(xiàn)許多與冠心病及ISR不相關(guān)的基因數(shù)據(jù)。此種情況一方面可以從基因校準(zhǔn)前看出,另一方面,即使進(jìn)行了基因數(shù)據(jù)均一化處理,聚類出溶酶體相關(guān)信號(hào)通路可能是ISR發(fā)病過程中的關(guān)鍵信號(hào)通路,但仍然會(huì)出現(xiàn)一些與冠心病無明顯關(guān)聯(lián)的基因及信號(hào)通路的富集。因此在應(yīng)用R語言對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行矯正后,進(jìn)一步對(duì)全部差異表達(dá)的基因進(jìn)行PPI網(wǎng)絡(luò)分析,再次剔除18個(gè)可能和ISR無關(guān)的差異表達(dá)的基因。應(yīng)用cytohubba從基因間的拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)、基因點(diǎn)間的互作關(guān)系、關(guān)系的密切聯(lián)系等多維度進(jìn)行計(jì)算后,最終鎖定HCK為ISR的核心發(fā)病基因。

        HCK在調(diào)節(jié)先天免疫反應(yīng)、吞噬、細(xì)胞存活和增殖、細(xì)胞黏附和遷移方面發(fā)揮重要作用[10]。此外HCK也被描述為巨噬細(xì)胞吞噬功能的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子[11]。雖然目前ISR具體的發(fā)病機(jī)制不明,但是HCK參與的免疫、吞噬、炎癥及細(xì)胞增殖和遷移似乎都能造成新生內(nèi)膜的形成。其中HCK已被證明是中性粒細(xì)胞趨化因子信號(hào)的負(fù)調(diào)節(jié)因子,其低表達(dá)可促進(jìn)局部炎癥反應(yīng)的形成,進(jìn)而激活內(nèi)皮細(xì)胞增殖信號(hào),很有可能導(dǎo)致支架內(nèi)局部炎癥反應(yīng)的過度激活,進(jìn)而導(dǎo)致內(nèi)皮增殖引起ISR[12]。而HCK的形成過程似乎也和溶酶體密切相關(guān),從而參與細(xì)胞吞噬過程。在巨噬細(xì)胞吞噬體的成熟過程中,位于囊泡結(jié)構(gòu)上的HCK在晚期內(nèi)質(zhì)體蛋白Lamp-1的作用下被募集到吞噬體膜上,通過對(duì)包含HCK的囊泡進(jìn)行膜蛋白的檢測發(fā)現(xiàn)其陽性表達(dá)CD63而陰性表達(dá)M6PR,提示HCK存在于溶酶體囊泡中,并介導(dǎo)溶酶體的吞噬作用[13]。而溶酶體相關(guān)通路是本文通過KEGG篩選出的對(duì)差異表達(dá)基因富集最為明顯的信號(hào)通路,其在冠狀動(dòng)脈粥樣斑塊的形成過程中起關(guān)鍵作用。既往研究指出冠心病和溶酶體酸脂酶活力低下有關(guān),此酶是將膽固醇酯和甘油三酯水解成游離膽固醇、甘油和游離脂肪酸的關(guān)鍵溶酶體酶,可防止脂質(zhì)在各種組織和細(xì)胞中積聚[14]。而酶體酶又可通過降解IL-1、IL-8、TNF-α來調(diào)控炎癥以及免疫反應(yīng)[15]。

        綜上,本文通過對(duì)ISR患者基因測序及生物信息學(xué)分析,鎖定HCK為PCI術(shù)后ISR發(fā)生的關(guān)鍵基因,而溶酶體介導(dǎo)的相關(guān)通路為ISR發(fā)病過程中關(guān)鍵的信號(hào)通路改變。這是首次通過生物信息學(xué)分析的方法推測出來的ISR核心發(fā)病基因和關(guān)鍵信號(hào)通路,針對(duì)HCK及溶酶體通路的干預(yù)可能成為未來ISR的基因靶向治療及血清學(xué)診斷標(biāo)志物。

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